Вы здесь

Пресс-центр Информаторий · ВНИИПРХ

Анонсы и информаторий

Предстоящие мероприятия, конференции, семинары и события Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО». Следите за афишей института.

Всего записей: 179

Все годы 179 2026 3 2025 4 2024 8 2023 11 2022 31 2021 32 2020 21 2019 28 2018 22 2017 17

11 марта 2020

История формирования карпа породы "Кои"

Дементьев В.Н. Дементьев Д.В. Рыбоводство. - 2007. - N 1. - С. 20 - 25 Глядя на изумительные цвета и узоры современных Кои трудно поверить, что все они произошли от обычных карпов, населяющих сегодня озера и реки Европы и Азии. Само слово “кои” переводится с японского как “карп”. Дикие черные карпы с незапамятных времён населяли территории, прилегающие к Каспийскому морю. Считается, что впервые карпы были одомашнены в Персии. Благодаря развитию торговли и необычайной выносливости карпов вскоре они заселили огромные территории на Дальнем Востоке. Примерно 2500 лет назад карпы были завезены в Китай. Древние китайцы по достоинству оценили этих рыб. До сих пор в Китае и Японии карп является олицетворением силы и выносливости. Достоверно неизвестно, когда карп появился в Японии. Первые письменные упоминания о нем относятся к 8 веку нашей эры. Вероятнее всего, что карп был завезен в Японию китайскими завоевателями и расселился в местных реках и озерах. Позднее они стали выращивать его для употребления в пищу Очень часто карп был единственным источником протеина для крестьян, живших в труднодоступных частях страны. Одной из таких областей была провинция Ниигата. Основу населения Ниигаты составляли крестьяне, выращивавшие рис и овощи на склонах гор. Для орошения своих полей крестьяне запасали воду в специально выкопанных резервуарах. Эти резервуары идеально подходили для выращивания карпов. Постепенно крестьяне стали уделять всё больше внимания выращиванию рыбы для употребления в пищу. Карпы нерестились в начале июня, и мальки выращивались до середины октября, когда их вылавливали и засаливали, заготавливая таким образом на зиму. Взрослые карпы-производители были слишком ценны, чтобы оставлять их в замерзших прудах. Поэтому на зиму их селили в небольших прудиках, выкопанных во дворах возле домов, а зачастую и в самих домах. Весной этих карпов выпускали в большие пруды для размножения. Никто не может точно сказать, когда фермеры-рыбоводы стали замечать изменения в окраске своих карпов. Местные жители говорят, что это случилось между 1840 и 1844 годами. Вскоре после этого выращивание “цветных карпов” стало увлечением крестьян. Рыб, в окраске которых замечали отклонения, стали содержать как своих домашних животных. На одних кои появлялись участки белого цвета, на других – отдельные красные чешуйки. Хозяева скрещивали своих любимцев с подобными рыбами, принадлежавшими соседям, и хобби стало набирать обороты. В начале ХХ века местные бизнесмены, купцы, доктора и землевладельцы стали содержать цветных карпов для развлечения. Тогда же некоторые приезжие, видевшие этих редких рыб, стали разносить информацию о них за пределы Ниигаты. Токийская выставка Тайшо 1914 года впервые представила цветных кои вниманию широкой публики. Различные провинции Японии демонстрировали на этой выставке свои достижения. Рыбоводы из Ниигаты доставили сюда своих кои. С этого момента цветных карпов стали выращивать специально для продажи. Карпов стали разводить и в других местностях Японии, что дало толчок развитию и совершенствованию множества пород кои. Однако до окончания II Мировой войны кои не имели широкой известности в Западном мире. Лишь в 1947 году первые кои были завезены на Гавайи, а затем и в США. Первый импорт в Великобританию был осуществлен в 1966 году. Сегодня это хобби покорило весь земной шар. Во многих странах Азии, Европы, Америки, в ЮАР и Австралии действуют клубы и ассоциации любителей кои, проводятся выставки и шоу, соперничающие по популярности со знаменитыми автосалонами. Коммерческое разведение кои освоено в Китае, Корее, Тайване, Америке и, особенно, Израиле, чьи лучшие образцы приближаются по классу к Японским. Однако по сей день качество Кои, родившихся в Ниигате, остается непревзойдённым. (по материалам сайта koi.com.ua). <img width="500" src="/Кои.PNG" height="241"> <img width="500" src="/Кои1.PNG" height="240"> В нашей стране кои появились в середине 60-х годов прошлого века. Подарены они были делегацией японских рыбоводов ученым ВНИИПРХа (пос. Рыбное Московской обл.). Естественно, что работающие в то время во ВНИИПРХе выдающиеся генетики (Валентин Сергеевич Кирпичников и Ксения Алексеевна Головинская) не могли не заинтерисоваться этими рыбами. Тем более, что каких-либо сведений о наследовании окраски у цветного карпа в то время не было. Такое исследование впервые в мире было проведено тогда молодым аспирантом В. Я. Катасоновым (Катасонов, 1973, 1977, 1978). Микроскопические исследования эпителия кожи рыб показали, что при обычной окраске тела хорошо развиты все известные для карпа типы пигментных клеток - меланофоры (черный пигмент), ксантофоры (желтый и оранжевый пигмент) и гуанофоры (обуславливают блеск чешуи). У оранжевых рыб меланофоры отсутствуют, у голубых слабо развиты или отсутствуют ксантофоры, у белых нет ни меланофоров, ни ксантофоров(Катасонов, 1977). В работах Вячеслава Яковлевича был объяснен характер наследовани основных типов окраски: доминантной – т.н. «рисунок» (рис.2); и рецессивных – оранжевой (рис. 3) и белой (рис. 4) (Катасонов, 1978) Ввиду отсутствия в то время практической значимости декоративного рыбоводства работы по разведению и селекции кои были фактически остановлены. До начала 90-х годов небольшие коллекции цветных карпов содержались в ряде рыбхозов СССР, скрещиваясь в себе и теряя декоративную ценность. Но с середины 90-х годов и по сей день интерес к кои медленно, но верно растет. Во ВНИИПРХе возобновлены работы по генетике окраски кои. Проведен анализ характера наследования новых типов окраски: темная подстилающая (рис. 5), черная мозаичная (рис. 6), «металлик» (рис. 8), «вуалевая форма» (рис. 9). Формируется рынок декоративной прудовой рыбы. Объем продаж ежегодно растет. На сегодняшний день кои достаточно серьезно занимается целый ряд рыбоводных хозяйств России. В Московской области это Всероссийский НИИ пресноводного рыбного хозяйства и НЦ «Селекцентр» (Дмитровский р-н, пос. Рыбное), рыбхоз при Электрогорской ГРЭС, в Тульской области Черепетский рыбхоз (г. Суворов). Кроме того, достаточно много любителей пытаются наладить производство кои. Многие фирмы, импортирующие аквариумную рыбу, завозят и кои. Несомненно, это направление рыбоводства будет активно развиваться. СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ Материалы сайта koi.com.ua Катасонов В.Я. Исследование окраски у гибридов обычного и декоративного (японского) карпа. Сообщение I. Наследование доминантных типов окраски // Генетика. 1973. Т. 9. № 8. С. 59-69. Катасонов В.Я. Исследование генов окраски у карпа (Cyprinus carpio L) и их использование для создания генетически маркированных промышленных линий. - Автореферат диссертации на соискание ученой степени канд. биол. наук. Л., 1977. - 22 с. Катасонов В.Я. Исследование окраски у гибридов обычного и декоративного (японского) карпа. Сообщение III. Наследование голубого и оранжевого типов окраски – ж. "Генетика " 1978, т XIY, № 12, с. 2184-2191. Катасонов В.Я., Дементьев В.Н., Климов А.В. Генетика окраски декоративного карпа: Уточнение наследования белой окраски. // Генетика. 1999. Т. 35. № 10. С. 1407-1409. Катасонов В.Я., Дементьев В.Н., Климов А.В Генетика окраски декоративного карпа: Наследование ”подстилающей тёмной” окраски. Генетика. 2001. Т. . Генетика. 2001. Т. 37. № 10. С. 1438-1440 Дементьев В.Н., Катасонов В.Я. Наследование металлического окраса у декоративного карпа кои// Аквакультура и интегрированные технологии: проблемы и возможности/ Материалы Межд. Науч.-практ. Конф., посвященной 60-летию Московской рыбоводно-мелиорат. Опытной ст. и 25-летию ее реорганизации в ГНУ ВНИИР. 11-13 апреля 2005 г., Москва. – М.: ВНИИР, 2005. – Т.2.– С. 119-121. <img width="500" alt="[node:title]" src="/к%20статье%20кои%201.jpg" height="375" style="width: 500px; height: 375px;" title="[node:title]"> <img width="500" alt="[node:title]" src="/к%20статье%20кои%203.jpg" height="375" style="width: 500px; height: 375px;" title="[node:title]"> Карп с признаком «рисунок» (внизу) Оранжевый кои <img width="400" alt="[node:title]" src="/к%20статье%20кои%204.jpg" height="182" style="font-size: 13.008px; width: 356px; height: 162px;" title="[node:title]"> <img alt="[node:title]" src="/sites/default/files/images/announcement/20/03/k_state_koi_2.jpg" data-cke-saved-src="/sites/default/files/images/announcement/20/03/k_state_koi_2.jpg" title="[node:title]" style="width: 216px; height: 162px;"> <img width="448" alt="[node:title]" src="/к%20статье%20кои%205.jpg" height="182" style="width: 400px; height: 162px;" title="[node:title]"> Темная подстилающая окраска Белый кои Черная мозаичная окраска <img width="500" alt="[node:title]" src="/к%20статье%20кои%207.jpg" height="343" style="width: 500px; height: 343px;" title="[node:title]"> <img width="500" alt="[node:title]" src="/к%20статье%20кои%206.jpg" height="375" style="width: 457px; height: 343px;" title="[node:title]"> «Металлик» (вверху) и белый кои Вуалевая форма кои <hr> Подготовил: Дементьев Виктор Николаевич, заведующий лабораторией генетики и селекции рыб Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

14 февраля 2020

Влияние антропогенной деятельности на содержание ТМ в среде обитания и организме рыб

На сегодняшний день проблема экологического состояния окружающей среды имеет глобальный характер. Природные богатства и их компоненты в большинстве регионов России находится в критическом состоянии. Развитие антропогенной деятельности существенно влияет на показатели состава водных ресурсов. Зачастую опасность заключается в тяжелых металлах, попадающих в воду вместе с отходами и сточными водами. Они несут опасность для экосистемы в целом. Со временем тяжелые металлы не растворяются, а меняют свою изначальную форму, продолжая присутствовать даже после устранения источника загрязнения. Тяжелые металлы относятся к токсическим загрязнителям химического происхождения, опасность обусловлена особенностями распространения их по трофической цепи. Избыточное поступление тяжелых металлов в водоем из внешней среды влияет на гидробионты, водоем становится потенциально опасным. В настоящее время следует обратить внимание на загрязнение водных объектов, так как чрезмерная производственная деятельность способна истощать водные ресурсы и делать их непригодными к употреблению. <img width="648" height="240" src="/upload/iblock/444/123.jpg"> <hr> Источник: Здрок А.В., начальник Отдела экологической токсикологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

20 декабря 2019

Методы экспресс-диагностики заболеваний рыб

Неконтролируемое распространение болезней приносит значительный экономический ущерб рыбоводным предприятиям. Предупреждение заболеваемости и гибели рыб, а также правильная организация лечебно-профилактических мероприятий допустимы лишь в том случае, когда идентифицированы возбудители и поставлен верный диагноз. При любом подозрении на возникновение болезни проводят комплексную диагностику. На основе клинических признаков, сбора анамнеза и эпизоотологических данных и патологоанатомического вскрытия ставится только предварительный диагноз, для подтверждения которого проводят дополнительные лабораторные исследования. Поэтому окончательный диагноз становится известен только после проведения комплексной диагностики хозяйства. Для быстрой и эффективной диагностики эпизоотической ситуации на хозяйстве и своевременного лечения возникшей болезни стали использоваться диагностические тест-системы, позволяющими в течение нескольких часов установить патоген и рекомендовать профилактически-лечебные мероприятия, чтобы минимизировать потери рыбопродукции. К экспресс-диагностике предъявляются особые требования: - короткие сроки получения результатов; - высокая специфичность и высокая чувствительность для надлежащей достоверности результатов; - проведение анализа только при использовании нативного материала (без выделения искомого микроорганизма в чистой культуре); - информативность, высокая и быстрая степень производительности и воспроизводимость анализа; - простота; - доступность; - дешевизна. Использование конкретного экспресс-метода зависит от многих условий, однако, в большинстве случаев, комплексное использование проведенных параллельно друг от друга 2-3 методов анализа будет более информативным и достоверным при правильной интерпретации полученных результатов. Существует несколько перспективных направлений развития экспресс-индикации патогенных агентов в медицине в целом, и они по сей день ускоренно развиваются и расширяются, но в ихтиопатологии зачастую используются лишь некоторые из них, например, иммуноферментное направление, физико-химическое направление, рецепторное и генетическое направления, а также комплексное направление. Самые распространенные методы экспресс-диагностики в ихтиопатологических исследованиях в нашей стране – использование полимеразной цепной реакции (ПЦР) и иммуноферментного анализа (ИФА), а также применение с выбранным методом тест-систем. Для проведения обоих методов также применяют диагностические тест-системы, в которые входит набор готовых реактивов, для упрощения оперативного выявления возбудителей в биологическом материале. Тест-системы просты в использовании, не требуют длительной пробоподготовки, реакция определения проходит в короткие сроки, достоверность результатов при этом в пределах 90-100%. Однако не для всех микроорганизмов, бактерий и вирусов разработаны диагностические системы. Как следствие, перед научным сообществом, в том числе и ихтиопатологическим, стоит несколько задач, требующих решений в данном вопросе: 1) разработка методов, ускоряющих и удешевляющих известные направления исследований, повышающих идентификацию инфекционных патогенов и микроорганизмов; 2) простота, чувствительность и эффективность, превышающая данные характеристики в использующихся методах анализа; 3) широкое внедрение всех видов диагностических систем анализа, в том числе их разработка для большинства микроорганизмов, бактерий и вирусов; 4) разработка новых современных методов регистрации и учета результатов. <a class="colorbox colorbox-insert " href="http://www.vniiprh.ru/sites/default/files/images/announcement/19/12/img_1003-10-12-19-11-31.jpg" title="Методы экспресс-диагностики заболеваний рыб"><img alt="[node:title]" src="/sites/default/files/images/announcement/19/12/img_1003-10-12-19-11-31.jpg" class="colorbox colorbox-insert " style="width: 500px; height: 375px;" title="Методы экспресс-диагностики заболеваний рыб"></a> <a class="colorbox colorbox-insert " href="http://www.vniiprh.ru/sites/default/files/images/announcement/19/12/img_1194-09-12-19-04-11.jpg" title="Методы экспресс-диагностики заболеваний рыб"><img alt="[node:title]" src="/sites/default/files/images/announcement/19/12/img_1194-09-12-19-04-11.jpg" class="colorbox colorbox-insert " style="width: 500px; height: 375px;" title="Методы экспресс-диагностики заболеваний рыб"></a> Больная рыба (инфекционное заболевание) Оборудование для проведении иммуно-ферментного анализа (ИФА) <hr> Источник: Антонина Вишторская, специалист лаборатории ихтиопатологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

9 декабря 2019

Гидробиологические исследования водных объектов рыбохозяйственного значения

Наблюдения за гидробиологическим режимом водных объектов, расположенных в Московской, Тульской, Тамбовской, Смоленской, Брянской, Липецкой, Курской и Тверской областях проведены в вегетационный период 2019г. на девяти водохранилищах и четырёх реках. На исследуемые водоёмы было организовано 24 экспедиционных выездов с целью отбора гидробиологических проб. Количество собранного гидробиологического материала составило 987 проб. Из них- 189 фитопланктона; 399- зоопланктона и 399- зообентоса. Отбор материала и его обработка проведены принятыми в гидробиологической практике методами. Пробы отбирали по разработанным для каждого водного объекта карта - схемам, охватывающим прибрежную и открытую акваторию водоёмом. В динамике численности и биомассы фито- и зоопланктона отмечено их увеличение от весны к лету с последующим снижением осенью. Доминирующими группами фитопланктона являются диатомовые, протококковые, синезелёные, эвгленовые и вольвоксовые водоросли. В составе зоопланктона весной доминируют коловратки, в летне- осенний период представители копеподито- кладоцерного комплекса: из ветвистоусых ракообразных, как правило, дафнии, босмины, лептодора; из веслоногих- науплии копеподит и циклопы. Макрозообентос характеризуется присутствием в его составе личинок хирономид, личинок и куколок других водных насекомых, ручейников, моллюсков (двустворчатых и брюхоногих), нематод, пиявок. По уровню развития кормовых организмов и их доступности рыбе определяется кормность водоёмов, оценивается приёмная ёмкость с целью наиболее полного использования трофического потенциала за счёт направленного формирования ихтиофауны и более полной утилизации кормовых ресурсов, неиспользуемых аборигенной ихтиофауной. <img width="840" src="/sites/default/files/images/announcement/19/12/dsc_0012_2.jpg" height="560"> <hr> Источник: Группа гидробиологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

15 ноября 2019

Родник

Родник (источник, ключ, криница) - водный источник, бьющий, текущий из глубины земли; естественный выход подземных вод на земную поверхность. Химический состав воды источников разнообразен; он определяется, главным образом, составом разгружающихся подземных вод и общими гидрогеологическими условиями района. Зачастую мы можем услышать, что родниковая вода очень полезна, так как она «живая», а также «экологически чистая». Тем не менее, увидев в лесу родник, не спешите пить из него! Воды родников отличаются от скважин или колодцев тем, что выходят на поверхность естественным путем. Есть мнение, что родниковая вода обладает «целебными» свойствами и способна избавить организм человека от многих недугов и заболеваний. Однако необходимо помнить, что по химическому составу каждый источник индивидуален и может содержать разные химические соединения. Вода, проходящая через пласты земных пород, помимо фильтрации, насыщается органическими веществами, минералами и микроорганизмами, поэтому она может быть опасна для здоровья человека. Химический состав воды из источника зависит от глубины залегания питающих водоносных горизонтов. Поэтому возникает риск попадания нитратов, нитритов, пестицидов и гербицидов с расположенных рядом сельскохозяйственных угодий. Промышленные предприятия, свалки, расположенные по близости, тоже оказывают негативное воздействие на качество воды источника, в виде поступления тяжёлых металлов. Так как родниковая вода контактирует с почвой, имеется высокая вероятность заражения её микроорганизмами, в следствии которые могут навредить уязвимым группам населения: пожилым людям и детям. Поэтому родниковую воду рекомендуется кипятить перед употреблением. <img alt="[node:title]" src="/sites/default/files/images/announcement/19/11/informatoriy_15.11.2019.png" style="width: 800px; height: 533px;" title="[node:title]"> <hr> Источник: Здрок А.В., начальник Отдела экологической токсикологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

5 ноября 2019

Структура высшего образования в России

Несмотря на то, что двухуровневая система высшего образования (бакалавриат + магистратура) официально принята в России с 2009 года, а фактически в ряде вузов существует с середины 1990-х, она до сих пор вызывает массу вопросов и недопониманий. <img alt="[node:title]" src="/sites/default/files/images/announcement/19/10/grafik_aspirantury.jpg" style="width: 1000px; height: 560px;" title="[node:title]" /> Введение двухуровневой системы связано с присоединением России в сентябре 2003 года к Болонскому процессу, который сегодня объединяет 48 стран. Но в ряде профильных вузов сохранилась и традиционная, пятилетняя программа подготовки специалистов. Это те вузы, которые смогли доказать, что за 4 года бакалавриата невозможно подготовить квалифицированного специалиста. Параллельное существование двух разных системы высшего образования часто порождает вопросы: чем отличается бакалавр от специалиста? а специалист от магистра? что считать вторым высшим образованием, а что — первым? Бакалавр — это недоучившийся специалист? Нередко можно услышать вопрос, кто лучше — бакалавр или специалист. Распространено мнение о том, что бакалавр — это недоучившийся специалист. Часто, основываясь на сроке обучения, полагают, что бакалавриат не является законченным высшим образованием. И даже при приеме на работу могут предпочесть кандидата с дипломом специалиста человеку с дипломом бакалавра. Но это заблуждение. Квалификация бакалавра свидетельствует о получении базового высшего образования. Диплом бакалавра наравне с дипломом специалиста дает возможность заниматься профессиональной деятельностью и получить должность, для которой требуется высшее образование. Разница в обучении заключается в том, что бакалавр все 4 года изучает предметы широкого профиля по выбранному направлению, специалист же с третьего года обучения выбирает какой-нибудь профиль (специализацию), который и будет отражен в его дипломе. Если бакалавр захочет получить более углубленное и узкопрофильное образование, если в дальнейшем он хочет связать свою жизнь с наукой или выше продвинуться по карьерной лестнице, он может продолжить учиться в магистратуре — на бюджетной основе и с правом на отсрочку от призыва в армию. С дипломом специалиста стать магистром можно только на платной основе — это будет считаться получением второго высшего. Однако специалист специалисту рознь. Так называемый «дипломированный специалист» может поступить в магистратуру на бюджет — для него это не будет считаться вторым высшим образованием (п. 15 ст. 108 закона «Об образовании»). Как различить корочки специалиста и дипломированного специалиста? Все, кто поступал в вуз до 1 января 2011 года, считаются «дипломированными специалистами». В графе диплома «Квалификация (степень)» у них написано: «Физик», «Математик», «Историк» и т. д. Специалисты же в соответствующей графе имеют запись «Специалист». В настоящее время вузы ведут подготовку только по программам подготовки специалистов, после окончания которой поступить в магистратуру можно только на платной основе. Диплом бакалавра, так же как и диплом магистра, признается во многих странах, где принята аналогичная двухуровневая система. Зато специалист может сразу поступить в аспирантуру, а также заняться научной или преподавательской деятельностью в вузе — бакалавру такие права не даны. Магистр против специалиста Магистр, как и специалист может заниматься научной деятельностью, преподавать в вузах, а также продолжить обучение в аспирантуре. В чем же тогда разница между специалистом и магистром? Первая и самая главная заключается в том, что магистров готовят к дальнейшей научно-исследовательской работе, а специалистов — к профессиональной деятельности. Магистры получают более глубокие профессиональные знания и навыки, дающие им преимущества перед специалистами. Для получения диплома специалиста требуется меньше времени и усилий: поступив в вуз один раз, через 5 лет выпускники получают заветную корочку. В магистратуру на бюджет принимают на конкурсной основе уже после окончания бакалавриата. Для поступления в магистратуру требуется сдать комплексный междисциплинарный экзамен. Магистратуры по выбранному направлению подготовки есть не в каждом вузе, но с дипломом бакалавра можно поступить в магистратуру другого вуза — здесь нет ограничений. Можно даже сменить направление, если вдруг понял, что интересы изменились. Чтобы получить диплом магистра, требуется уже как минимум 6 лет: не менее 4 лет бакалавриата плюс 2 года магистратуры. К слову, о дипломах. Несмотря на то, что обучение и специалиста (с третьего года), и магистра предусматривает специализацию, предполагается, что они должны различаться присвоенной квалификацией. Например, если в дипломе специалиста будет указана широкая квалификация «Психолог», то в дипломе магистра — более узкая специализация: «Психологическое консультирование в образовании», «Семейный консультант и психоаналитик», «Клиническая психология». Специалист получит квалификацию «Физика», а магистр — «Ядерные физика и технологии», «Техническая физика», «Радиофизика», «Электромеханика» и т. п. Хотя на деле можно встретить магистра с широкой квалификацией, такой как «Педагогическое образование», «История», «Экономика». Это лишний раз свидетельствует о том, что критерии присвоения степеней еще до конца не разработаны. Аспирантура — третья ступень высшего образования Реформирование образовательной системы затронуло и последующие ступени образования. Если еще недавно аспирантура считалась послевузовским образованием, то вступивший в силу 1 января 2013 года закон «Об образовании» сделал аспирантуру третьей ступенью высшего образования, которая реализует программу подготовки научно-педагогических кадров. Раньше аспирант был нацелен на защиту кандидатской диссертации и получение степени кандидата наук. Теперь же времени на подготовку диссертации в аспирантуре отведено гораздо меньше за счет введения обязательных учебных занятий. Единых для всех вузов и научных институтов требований к поступлению в аспирантуру больше нет. То, какие экзамены сдают поступающие в аспирантуру, решают сами учебные заведения: если раньше их было три, то с 2017 года их может быть и меньше. Вузы самостоятельно определяют не только количество и перечень экзаменов, но и шкалу оценивания и проходной балл. Дополнительные баллы можно получить за личные достижения: патенты, публикации, участие в научных мероприятиях и конкурсах. Эти баллы складываются с баллами, полученными на экзаменах, либо могут учитываться вместо них. То есть вступительный экзамен может быть заменен конкурсом портфолио. В 2017 году также впервые выданы дипломы об окончании аспирантуры, которые свидетельствуют об «освоении программы подготовки научно-педагогических кадров» по определенному направлению и о присвоении квалификации «Исследователь. Преподаватель-исследователь». Что касается докторантуры, то с 2013 года она полностью стала формой подготовки научных кадров, а не послевузовской подготовки. Итак, реформирование системы высшего образования России привело к параллельному существованию двух систем: традиционной пятилетней подготовки квалифицированных специалистов и двухуровневой, по европейскому образцу, состоящей из бакалавриата и магистратуры. Также заметно изменились функции аспирантуры, которая теперь встроена в общую систему высшего образования и направлена на подготовку научно-педагогических кадров. Меньше всего реформа затронула докторантуру, которая в целом сохранила свои функции. <img alt="[node:title]" height="600" src="/sites/default/files/images/announcement/19/10/informatoriy_05.11.2019_1.jpg" title="[node:title]" width="1024" /> <hr /> Источник: Бобрикова Марини Андреевна, руководитель группы аспирантуры Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

24 октября 2019

Морфологические особенности различных групп лейкоцитов рыб

Лейкоциты (leucocytus), или белые кровяные клетки, в свежей крови бесцветны, что отличает их от окрашенных эритроцитов. Число их составляет в среднем 20 тыс./мкл, т.е. в 50 раз меньше, чем эритроцитов. Лейкоциты в кровяном русле способны к активным движениям, могут переходить через стенку сосудов в соединительную ткань органов, где они выполняют основные защитные функции. По морфологическим признакам лейкоциты подразделяются на агранулоциты (agranulocytus) в цитоплазме, которых не просматриваются гранулы (зернистость) и гранулоциты (granulocytus) или зернистые лейкоциты Рассматривая форменные элементы крови, мы остановимся лишь на типичных лейкоцитах, которые чаще всего отмечаются у рыб. Однако следует отметить, что в периферическом русле циркулируют и другие структурные элементы крови на различных стадиях развития. Лимфоциты являются одними из многочисленных клеток белой крови. Это клетки с плотным округлым или бухтообразным ядром красно-фиолетового цвета и узким базофильным (синим) слоем цитоплазмы, нередко образующим выросты (псевдоподии). Лимфоциты по морфологии подразделяют на малые, средние и большие в зависимости от размера и соотношения ядра и цитоплазмы. Наиболее многочисленные малые, у которых резко-базофильная цитоплазма узким кольцом окружает красно-фиолетовое ядро. Цитоплазма может быть едва заметной, иногда клетки кажутся голоядерными. Часть лимфоцитов в крови обновляется в пределах трех недель, а часть – в пределах года. По функциональной значимости лимфоциты крови рыб неоднородны. В настоящее время среди лимфоидных клеток у рыб различают 2 класса (популяции): Т- и В-клетки, являющихся общими с другими позвоночными животными. Периферические В-лимфоциты выполняют функции образования антител. Т-лимфоциты подразделяются на субпопуляции с цитоксической, хелперной и супрессионной активностью. Однако лимфоидный комплекс рыб требует дополнительного изучения. Плазматические клетки (или цитотоксические клетки) рыб с широким слоем резко базофильной цитоплазмы напоминают большие лимфоциты. Они участвуют в иммунологических реакциях и синтезе антител. Чаще всего в периферической крови плазматические клетки отмечаются при заболеваниях. Моноциты – крупные клетки (11-14 мкм) с ядром овальной или бобовидной формы розового цвета. Хроматин в ядре образует грубые тяжи. Серо-голубая цитоплазма занимает большую часть клетки и нередко содержит вакуоли, в которых наблюдается фагоцитированный материал (бактерии, продукты распада клеток и тканей). Моноциты являются активными фагоцитами в крови, обладают большой миграционной способностью. При воспалительных реакциях они в большом количестве мигрируют из кровяного русла в очаг воспаления, где трансформируются в макрофаги. Срок жизни моноцитов в периферической крови – 60 дней. Нейтрофилы – это крупные клетки их размеры достигают от 11,4 до 14,8 мкм у осетровых и от 10,5 до 15,2 мкм у костистых рыб. Цитоплазма имеет видимую пылевидную зернистость. Форма ядра зависит от стадии зрелости клетки: миелоциты имеют овальное или округлое ядро, метамиелоциты – бобовидное, палочкоядерные – удлиненное в виде палочки, сегментоядерные – рассеченное на два, три или больше частей ядро. Последние две группы нейтрофилов относятся к зрелым клеткам и выполняют фагоцитарную функцию в организме. Псевдобазофилы – клетки, размер которых колеблется от 11,3 до 14,5 мкм, имеют красно-фиолетовое ядро плотной структуры и гранулы в цитоплазме, которые окрашиваются в темно-синий цвет, иногда почти черные в виде хлопьев. Базофилы – это самая малочисленная категория лейкоцитов. Основной отличительной чертой этих клеток от псевдобазофилов являются красно-фиолетовые зерна, расположенные на светлом фоне цитоплазмы. Они встречаются у рыб редко. Основная функция псевдобазофилов и базофилов в организме - участие в аллергических реакциях, так как гранулы, содержащиеся в цитоплазме богаты гистамином, который является основным медиатором реакций – гиперчувствительности. Они также оказывают влияние на процесс свертываемости крови (в гранулах содержится гепарин) активизируя его. Срок жизни базофилов и псевдобазофилов не установлен. Псевдоэозинофилы – клетки (средние размеры 10,9 – 12,5 мкм) с крупным округлым или овальным красно-фиолетовым ядром, в цитоплазме гранулы окрашены в светло-оранжевый цвет игольчатой формы. В периферической крови они встречаются не постоянно, их процент возрастает при некоторых патологиях. У форели, лосося, осетра и канального сома они не обнаружены. Эозинофилы – клетки (размеры колеблются от 11,4 до 15,5 мкм) с плотным красно-фиолетовым ядром, часто разделенным на сегменты, цитоплазма заполнена крупными оранжевыми гранулами у осетровых и зеленовато-оранжевого цвета у костистых рыб. Постоянно встречаются у осетровых рыб. Редко отмечаются у форели и карпа. Эти клетки обладают фагоцитарной активностью (фагоцитарный индекс ниже, чем у моноцитов и нейтрофилов) и участвуют в замедлении аллергических реакций. Процентное соотношение основных видов лейкоцитов называется лейкоцитарной формулой. Определение общего количества лейкоцитов и их процентного соотношения весьма важны для оценки здоровья рыб, качества выпускаемой молоди и постановки диагноза при некоторых заболеваниях. При резком увеличение числа лейкоцитов наблюдается лейкоцитоз, резком уменьшении – лейкопения. Лейкоцитоз отмечается при различных воспалительных процессах, лейкопения – при дисфункциях органов гемопоэза и в предмортальном состоянии рыб. Большое значение для характеристики состояния организма имеет дифференциальный подсчет лейкоцитов (выведение лейкоцитарной формулы). Для этой цели можно использовать специальный лабораторный счетчик, в память которого загружаются найденные лейкоциты по группам. <a class="colorbox colorbox-insert" href="http://www.vniiprh.ru/sites/default/files/images/announcement/19/09/1111111.jpg" title="Морфологические особенности различных групп лейкоцитов рыб"><img alt="[node:title]" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/19/09/1111111.jpg" style="width: 500px; height: 351px;" title="Морфологические особенности различных групп лейкоцитов рыб" /></a> Фото. Лабораторный счетчик для дифференциального подсчета клеток крови <a class="colorbox colorbox-insert" href="http://www.vniiprh.ru/sites/default/files/images/announcement/19/09/3333333.jpg" title="Морфологические особенности различных групп лейкоцитов рыб"><img alt="[node:title]" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/19/09/3333333.jpg" style="width: 500px; height: 520px;" title="Морфологические особенности различных групп лейкоцитов рыб" /></a> Картина клеток крови осетровых рыб (по Ивановой Н.И., 1983) 1 - гемоцитобласт; 2 - миелобласт; 3 - эритробласт; 4 - базофильный нормобласт; 5 - полихроматофильный нормобласт; 6 - эритроцит; 7 - тромбоциты; 8 - промиелоцит; 9 - нейтрофильный миелоцит; 10 - нейтрофильный метамиелоцит; 11 - палочкоядерный нейтрофил; 12 - сегментоядерный нейтрофил; 13 - эозинофильный миелоцит; 14 - эозинофильный метамиелоцит; 15 - палочкоядерный эозинофил; 16 - сегментоядерный эозинофил; 17 - монобласт; 18 - моноцит; 19 - лимфобласт; 20 – лимфоцит. <a class="colorbox colorbox-insert" href="http://www.vniiprh.ru/sites/default/files/images/announcement/19/09/3333333.jpg" title="Морфологические особенности различных групп лейкоцитов рыб"><img alt="[node:title]" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/19/09/2222222.jpg" style="width: 500px; height: 536px;" title="Морфологические особенности различных групп лейкоцитов рыб" /></a> Картина крови костистых рыб (по Ивановой Н.И., 1983). 1 - гемоцитобласт; 2 - миелобласт; 3 - эритробласт; 4 - базофильные нормобласты; 5 -полихроматофильные нормобласты; 6 - эритроциты; 7 - митотическое деление эритроцитов серебряного карася; 8 - скопление тромбоцитов; 9 - промиелоцит; 10 - нейтрофилы крови сельди; 11 - нейтрофилы крови серебряного карася; 12 - нейтрофилы крови судака; 13 -нейтрофилы крови сома; 14 - нейтрофилы крови рыбца; 15 - нейтрофилы крови леща; 16-нейтрофилы крови линя; 17 - псевдоэозинофилы крови судака; 18 - псевдоэозинофилы крови рыбца; 19 - псевдоэозинофильный миелоцит крови толстолобика; 20 - палочкоядерные псевдоэозинофилы крови сома; 21 - сегментоядерные псевдоэозинофилы крови толсто-лобика; 22 - псевдобазофилы крови леща; 23 - клеточные элементы с бесцветными блестя¬щими гранулами; 24 - клеточные элементы с вакуолизированной цитоплазмой; 25 - моноцитоидные элементы; 26 – лимфоциты. <hr /> Источники: Головина Н.А., Романова Н.Н. Лабораторный практикум по физиологии рыб: Учебное пособие. – СПб.: Издательство «Лань», 2019. – 136 с. Иванова Н.Т. Атлас клеток крови рыб / Н.Т. Иванова. – М.: Легкая и пищевая пром-ть, 1983. – 184 с. Иванова Н.Т. Некоторые аспекты к основам ихтиогематологии / Н.Т. Иванова. – Ростов н/Д: из-во РГПУ, 2002. – 54 с. Методические указания по проведению гематологического обследования рыб // Сборник инструкций по борьбе с болезнями рыб. Часть 2. М.: отдел маркетинга АМБ-агро, 1999. – С. 69-97. Подготовила: Н.Н. Романова, зав. лабораторией ихтиопатологии, к.б.н., доцент Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

14 октября 2019

Гематологический анализ рыб

Тесная функциональная взаимосвязь крови с жизнедеятельностью организма позволяет выявить в ней изменения, связанные с сезоном года и уровнем обменных процессов в различные периоды жизни рыб, состоянием организма во время болезни, нарушений в кормлении, ухудшений условий выращивания, стрессов и других, влияющих на рыбу факторов абиотического, биотического и антропогенного характера. В связи с этим, анализ крови является одним из надежных и оперативных методов при контроле за физиологическим состоянием гидробионтов. В настоящее время в ихтиогематологии для оценки физиологического состояния организма принято определять следующие основные показатели: - содержание гемоглобина, - гематокритная величина, - количество эритроцитов, - содержание гемоглобина в одном эритроците, - средний объем эритроцитов, - скорость оседания эритроцитов, - количество лейкоцитов, - лейкоцитарную формулу, - содержание сахара (глюкозы) в крови, - содержание общего белка в сыворотке крови и некоторые другие показатели. Первые шесть показателей характеризуют эритроцитарную картину так называемую красную кровь. Определение количества лейкоцитов и лейкоцитарная формула позволяют оценить изменения в «белой крови». Последние два показателя (содержание сахара (глюкозы) в крови и общего белка в сыворотке) дают представление о биохимическом обмене, протекающем в организме.<img alt="[node:title]" src="/sites/default/files/images/announcement/19/09/1111.jpg" style="font-family: georgia, serif; font-size: 16px; width: 400px; height: 300px; float: right;" title="[node:title]" />Размеры и количество эритроцитов в крови находятся в тесной зависимости от активности рыбы и условий её обитания. Виды, ведущие пелагический образ жизни и совершающие большие кормовые и нерестовые миграции, содержат в среднем в 1 мкл крови от 1,5 до 2,5 млн. эритроцитов (сельдь, форель). У ската с малоподвижным придонным образом жизни количество этих клеток не превышает 150 тыс./мкл, у карпа – обита теля небольших водоемов-прудов колеблется от 1,2 до 2 млн./мкл, а у донных осетровых видов находится в пределах 980-1000 тыс./мкл. Эритроциты являются носителями дыхательного пигмента - гемоглобина. Главная их функция – дыхательная, а также они активно регулируют кислотно-щелочное равновесии, адсорбируют токсины и антитела и принимают участие в ряде ферментативных процессов. Центральное место в гематологических исследованиях занимает гемоглобин. Основная функция этого белка крови – транспортная, т.е. доставка кислорода к тканям с дыхательной поверхности и удаление углекислого газа во внешнюю среду. Кроме того, гемоглобин играет важную роль в регуляции кислотно-щелочного равновесия и участвует в поддержании коллоидно-осмотического давления крови. Количество гемоглобина в организме рыб имеет важное диагностическое значение. Снижение этого показателя отмечается при голодании (например, в конце зимовки), анемиях различной природы (алиментарной, или вызванной большой кровопотерей в результате механического воздействия), заболеваниях, хронических токсикозах и ухудшении условий содержания (снижения кислорода, загрязненность воды и т.д.). <img alt="[node:title]" src="/sites/default/files/images/announcement/19/09/2.png" style="width: 500px; height: 368px;" title="[node:title]" /> Фото. Фотоэлектроколориметр – прибор для определения оптической плотности растворов при измерении уровня гемоглобина цианметгемоглобиновый метод Одним из информативных биохимических показателей крови является содержание глюкозы (сахара). Глюкоза, всасываясь в кишечнике, поступает в кровяное русло, оттуда в печень, где частично откладывается в виде гликогена, частично же переходит опять в кровь и потребляется тканями. Ее содержание в крови рыб поддерживается на постоянном уровне при помощи ряда специальных физиологических механизмов. Уровень глюкозы можно рассматривать как индикатор стресс-реакции рыб. Гипергликемия (повышение содержания сахара в крови) отмечается при хендлинге (рыбоводных манипуляциях с рыбой), испуге, температурном шоке, транспортировке и т.д. Количество сахара в крови изменяется под воздействием нарушения углеводного обмена, что у рыб может быть связано с питанием несбалансированными или высокоуглеводистыми кормами. При хранении образцов крови концентрация глюкозы снижается вследствие гликолиза, поэтому анализ крови проводят в день взятия. Определение глюкозы в крови проводят экспресс-методом с помощью диагностических тест полосок - глюкостиксов. <img alt="[node:title]" src="/sites/default/files/images/announcement/19/09/3_3.jpg" style="width: 500px; height: 324px;" title="[node:title]" /> Фото. Глюкометр Использование современных приборных методов определения показателей крови позволяет оценить физиологическое состояние рыбы оперативно и быстро. Продолжение публикаций материала будет 23.10.2019 г. <hr /> Источники: Головина Н.А., Романова Н.Н. Лабораторный практикум по физиологии рыб: Учебное пособие. – СПб.: Издательство «Лань», 2019. – 136 с. Иванова Н.Т. Атлас клеток крови рыб / Н.Т. Иванова. – М.: Легкая и пищевая пром-ть, 1983. – 184 с. Иванова Н.Т. Некоторые аспекты к основам ихтиогематологии / Н.Т. Иванова. – Ростов н/Д: из-во РГПУ, 2002. – 54 с. Методические указания по проведению гематологического обследования рыб // Сборник инструкций по борьбе с болезнями рыб. Часть 2. М.: отдел маркетинга АМБ-агро, 1999. – С. 69-97. Подготовила: Н.Н. Романова, зав. лабораторией ихтиопатологии, к.б.н., доцент Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

3 октября 2019

Кровь рыб

Кровь (sanguis, haima) является циркулирующей по кровеносным сосудам жидкой тканью, состоящей из двух основных компонентов: плазмы и взвешенных в ней форменных элементов – эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов (кровяных пластинок). <img alt="[node:title]" src="/sites/default/files/images/announcement/19/09/1.jpg" style="width: 400px; height: 317px;" title="[node:title]" /> <img alt="[node:title]" src="/sites/default/files/images/announcement/19/09/2.jpg" style="width: 400px; height: 317px;" title="[node:title]" /> <img alt="[node:title]" src="/sites/default/files/images/announcement/19/09/3_-_kopiya.jpg" style="font-size: 13.008px; width: 400px; height: 301px;" title="[node:title]" /> <img alt="[node:title]" src="/sites/default/files/images/announcement/19/09/4_-_kopiya.jpg" style="font-size: 13.008px; width: 400px; height: 301px;" title="[node:title]" /> Клетки крови рыб. Основными функциями крови являются дыхательная (перенос кислорода во все органы и углекислоты из органов); трофическая (доставка органам питательных веществ); защитная (обеспечение гуморального и клеточного иммунитета, свертывание крови при травмах); выделительная (удаление и транспортировка в почки продуктов обмена веществ); гомеостатическая (поддержание постоянства внутренней среды организма). Через кровь (и лимфу) транспортируются гормоны, а также и другие биологически активные вещества. Все это определяет важную роль крови в организме. Потеря более 30% крови приводит к смерти. Рыбы имеют замкнутую кровеносную систему. Общее количество крови в организме у рыб варьируется в зависимости от видовой принадлежности, возраста, условий жизни и физиологического состояния. Например, у костистых рыб количество крови составляет в среднем 2-3 % массы их тела. У малоподвижных видов рыб крови не более 2 %, у активных – до 5 %. Кровь рыб имеет ярко-красный цвет, маслянистую на ощупь консистенцию, солоноватый вкус, специфический запах рыбьего жира. В среднем для рыб плотность крови составляет 1,035 г/см3 (1,032-1,051). Кровь свертывается за 20-840 сек. С помощью анализа гематологических показателей, возможно, определить физиологическое состояние рыбы, а при интенсивно развивающейся аквакультуре оценка здоровья выращиваемых объектов имеет немаловажное значение. Кровь можно отбирать из сердца, жаберной вены, хвостовой вены или каудального канала. Способы взятия крови зависят от размера рыб и необходимого для анализов количества крови. <img alt="[node:title]" src="/sites/default/files/images/announcement/19/09/5_-_kopiya.jpg" style="width: 500px; height: 579px;" title="[node:title]" /> Взятие крови у молоди осетра из хвостовой вены Продолжение публикаций материала будет 14.10.2019 г. <hr /> Источники: Головина Н.А., Романова Н.Н. Лабораторный практикум по физиологии рыб: Учебное пособие. – СПб.: Издательство «Лань», 2019. – 136 с. Иванова Н.Т. Атлас клеток крови рыб / Н.Т. Иванова. – М.: Легкая и пищевая пром-ть, 1983. – 184 с. Иванова Н.Т. Некоторые аспекты к основам ихтиогематологии / Н.Т. Иванова. – Ростов н/Д: из-во РГПУ, 2002. – 54 с. Методические указания по проведению гематологического обследования рыб // Сборник инструкций по борьбе с болезнями рыб. Часть 2. М.: отдел маркетинга АМБ-агро, 1999. – С. 69-97. Подготовила: Н.Н. Романова, зав. лабораторией ихтиопатологии, к.б.н., доцент Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

23 сентября 2019

О целесообразности специального предзимнего кормления самок осетровых рыб в индустриальных условиях

Введение Осетровые рыбы на протяжении многих десятилетий остаются объектом многочисленныхисследований. Технологии прижизненного получения икры от осетровых рыб и многократного использования производителей давно нашли широкое применение [Бурцев, 1969 а, б;Подушка, 1986; Бурцев и др., 1999; Мельченков и др., 2010; Филиппова и др., 2015]. Тем не менее, в индустриальном рыбоводстве и особенно при содержании осетровых рыб в установках с замкнутым циклом водоснабжения (далее — УЗВ), сохраняют актуальность вопросы качества получаемой икры как используемой для целей репродукции, так и икры пищевого назначения. Эти вопросы обусловлены сильнейшим влиянием, которое оказывают на рыб индустриальные условия. По нашим данным [Сафронов и др., 2007, 2016], сроки первого созревания производителей осетровых в условиях УЗВ по сравнению с тепловодными и прудовыми хозяйствами в V, VI зонах рыбоводства сокращаются на 40%, а межнерестовый интервал на 50%. Помимо сокращения сроков созревания, технологии аквакультуры осетровых способствовали исчезновению чёткой сезонной приуроченности нереста. Если в природной среде обитания нерестовый сезон проходит весной и не превышает 1–1,5 месяцев, то в условиях аквакультуры готовые к нересту производители встречаются с октября по апрель [Кривцов, Козовкова, 2002; Мельченков и др., 2010]. В условиях УЗВ процесс созревания половых продуктов у производителей осетровых носит круглогодичный характер [Сафронов и др., 2016]. Столь значимые изменения сроков и сезонности созревания производителей осетровых рыб в индустриальных условиях становятся возможными за счёт поддержания благоприятного температурного и кислородного режимов содержания рыб, а также постоянной обеспеченности достаточно калорийной пищей и интенсивного кормления. В рыбоводной практике для кормления производителей осетровых рыб, в большинстве случаев, используют концентрированные однотипные комбикорма, содержащие до 50–52% белка. Преимущественное использование имеют корма импортного производства, а также отечественные комбикорма типа лососёвых либо пастообразные, производимые из разнообразного местного сырья. Нередко высокобелковые и богатые жирами комбикорма вызывают дистрофию, неблагоприятные сдвиги в составе крови, патологические изменения скелета, ожирение внутренних органов, а также необратимые изменения в воспроизводительной системе осетровых рыб [Кривцов, Козовкова, 1977]. По данным В.Ф. Кривцова [2002] созревание самок осетровых зачастую тормозится при их ожирении, которое может быть обусловлено чрезмерным кормлением на определённых этапах выращивания. Кроме того, у рыб, достигших половой зрелости в подобных условиях, часто имеет место десинхронизация и нарушение половых циклов, наблюдается снижение оплодотворяемости яйцеклеток и нарушение процесса развития икры, в результате чего увеличиваются частота и варианты уродств, а так же отмечается массовая гибель предличинок [Загребина, 2007; Сафронов и др., 2007 и др.]. Наиболее остро вопросы качества питания и его режима встают в индустриальных хозяйствах на основе УЗВ с их сложностями в поддержании оптимальных условий гидрохимического и температурного режимов. По нашему мнению, традиционная практика содержания и кормления в данном случае, не учитывает специфики пищевых потребностей производителей осетровых рыб, обусловленных сезонными особенностями их метаболизма и, в частности, генеративного обмена. Между тем, в эволюционно сложившейся адаптации воспроизводительной системы осетровых рыб, обитающих в географических условиях России, генеративный обмен тесно связан с сезонной динамикой естественного температурного режима и, соответственно, режима и качества питания [Айзенштадт, 1977; Детлаф и др., 1981]. Осенью в природных условиях при понижении температуры активность питания осетровых рыб снижается, также сокращается количество доступной им пищи и меняется её качественный состав. На этом этапе рыбам требуются хорошо сбалансированные пищевые источники с пониженным содержанием белка, богатые энергией, а также незаменимыми и биологически активными факторами питания, а, кроме того, иное, чем в ростовой период, соотношение белка и энергии. При дальнейшем понижении температуры у производителей наблюдаются резкое торможение и последующая остановка роста при практически полном зимнем прекращении питания. В то же время при осеннем похолодании и далее во время зимы в организме рыб происходит перераспределение накопленных запасов в пользу половых желёз и развивающихся яйцеклеток. Этот период наиболее активного трофоплазматического роста ооцитов. Нерест осетровых рыб проходит после голодной зимовки при достаточно низких температурах. С этих позиций именно проблема состава и питательности репродукционных кормов для осетровых рыб является наименее разработанной и наиболее сложной. Существующее положение обусловлено не только их видовым разнообразием и длительностью созревания, но и скудостью отечественной экспериментальной базы для проведения подобных исследований и, в частности, дефицитом производителей, требуемых для проведения подобных работ. Технология кормления по этим же причинам разработана недостаточно. Сюда можно отнести систему нормирования и режимы кормления, в частности, сроки его начала и окончания, а также длительность технологических пауз в период повышенных летних или пониженных зимних температур. Всё это дало основание полагать, что назрела необходимость пересмотра технологии преднерестового содержания производителей осетровых рыб (прежде всего самок) в условиях индустриальных хозяйств перед искусственной зимовкой и последующим нерестом. Идея этой работы состояла в создании для самок более благоприятных условий, чем обычно практикуется в хозяйствах индустриального типа в подобной ситуации [Мельченков и др., 2010]. Их сущность — замена голодания в период снижающихся температур, предшествующих зимовке, ограниченным питанием специализированными комбикормами. Таким образом, предполагалась имитация осеннего питания, которая должна была способствовать нормализации обмена веществ в период трофоплазматического роста ооцитов, проходящего в природных условиях в преддверии наступления зимы и последующей зимовки. Методы и материалы В целях решения поставленной задачи в лаборатории физиологии и кормления рыб ВНИИПРХ на основе разработок, выполненных ранее для карповых рыб [Щербина, Гамыгин, 2006; Щербина и др., 2016], была создана рецептура репродукционных комбикормов для самок осетровых рыб серии «Осетровые Репродукционные, специализированные для Самок» (далее — ОРС). По сравнению с обычными репродукционными комбикормами эти корма предусмотрены только для использования в период технологического снижения температуры воды при содержании производителей перед зимовкой и последующим нерестом. Существенной особенностью экспериментальных кормов этой серии явилось заметное снижение содержания в них белка и частично липидов. Были испытаны несколько модификаций корма. Отличия между ними были связаны с изменениями состава компонентов. Так же в экспериментах использовали голландский коммерческий комбикорм осетровой рецептуры Coppens Repro (далее — Repro). Химический состав использованных комбикормов приведён в табл. 1. <img alt="Таблица 1" src="/sites/default/files/images/announcement/19/09/bezymyannyy.png" style="width: 984px; height: 307px;" title="Таблица 1" /> <img alt="Таблица 2" height="466" src="/sites/default/files/images/announcement/19/09/bezymyannyy_2.png" title="Таблица 2" width="967" /> Экспериментальные работы с производителями были начаты в 2015 г. в условиях аквариального комплекса ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО», где в период 2015–2017 гг. было проведено три серии опытов. Использовали самок аксайской породы бестера F3 (возвратный гибрид белуга × стерлядь × стерлядь) — относительно некрупного представителя осетровых рыб. Опыты с рыбами малого размера были важны и интересны для нас ещё по той причине, что проведение экспериментов с крупными экземплярами всегда осложнялось множеством серьёзных трудностей, главной из которых, была необходимость иметь в наличии большое количество самок, однотипно физиологически подготовленных к нересту. В то же время в условиях аквариального комплекса ВНИРО имелась возможность формирования требуемых групп самок в течение всего года. Результаты, полученные на самках бестера, в 2016–2017 гг. были дополнены исследованиями на более крупных представителях осетровых, а именно на самках сибирского осетра. Эти опыты проводили в условиях промышленного Алексинского осетрового завода, расположенного в Тульской области. Общие сведения о схеме и условиях проведения экспериментов в аквариальных и производственных условиях представлены в табл. 2. В связи с тем, что при проведении опытов использовали производителей двух видов осетровых, имеющих существенные различия по массе, а также ряд методических различий, связанных, в основном, с производственными условиями, статья разделена на 2 части, в которых отражена специфика опытов. Результаты и обсуждение Опыты с самками бестера В опытах использовали самок, близких по массе, находившихся на IV стадии зрелости гонад. Готовность самок к нересту определяли по шкале зрелости половых желёз В.В. Трусова [1964] с применением метода биопсии и неинвазивного экспресс-метода УЗИ‑диагностики [Казанский и др., 1978; Чебанов, Галич, 2010]. Рыб отбирали по результатам определения диаметра ооцитов и расчёта коэффициента поляризации ядра ооцита (КП). Согласно используемой технологии, рыбы, коэффициент поляризации ооцитов которых составляет менее 18 %, считаются подготовленными к искусственной зимовке и нересту. Следует отметить, что на момент начала экспериментов коэффициенты поляризации ооцитов в экспериментальных вариантах были несколько выше, чем в контрольных для обеспечения синхронизации зимовки и нереста обеих групп. Это обстоятельство обусловлено необходимостью более длительной подготовки экспериментальных групп к зимовке за счёт кормления. Попытки выровнять группы по коэффициенту поляризации приводили либо к перезреванию самок в группе с предзимним кормлением, либо к отставанию в развитии ооцитов у самок контрольной группы из-за большого значения коэффициента поляризации. Для оценки репродуктивного качества самок использовали изменения значений коэффициента поляризации ооцитов, количество икринок в 1 г икры, рабочую плодовитость, оплодотворяемость икры, оценивали также долю развивающихся эмбрионов и наличие или отсутствие у них уродств. Рыб содержали в двух системах УЗВ, состоящих из бассейнов, объёмом 3 м3, при плотности посадки 12 кг/м3. Наблюдения за гидрохимическим режимом, в частности, содержанием в воде нитритов и аммонийного азота показали, что все гидрохимические параметры находились в оптимальном диапазоне и не превышали ПДК [Нормативы качества…, 2011]. С первого дня экспериментов группы подопытных производителей переводили на кормление специализированными кормами серии ОРС на фоне ступенчатого снижения температуры воды. Нормы кормления также снижали в соответствии с температурой воды и активностью рыб. Затем при температуре воды ниже 7 °C, когда рыбы прекращали питаться, начинался этап зимовки. Продолжительность периода предзимнего кормления составляла 35 суток. Нормы кормления, опробованные в опыте, приведены в табл. 3. Кормление рыб контрольных групп с первого дня экспериментов прекращали. Их перевод на зимовку (снижение температуры) проводили в соответствии с обычной технологией в течение 14 дней. Продолжительность зимовки подопытных и контрольных групп составляла 55 суток. На рис. 1 отражены изменения температурного режима содержания экспериментальных и контрольных групп, а также продолжительность и рационы кормления самок, получавших корма. Основные показатели, характеризующие состояние самок, полученную от них икру и потомство в экспериментальных и контрольных группах, приведены в табл. 4. Анализируя данные табл. 4, можно видеть, что масса самок за период опытов практически не изменилась. Сохранение её на неизменном уровне у рыб, не получавших корма, с одной стороны, свидетельствует об отсутствии явных признаков голодания, с другой — оно вполне может затушевываться накоплением в тканях воды, что нормально для периода голодания. Соответствующих химических определений тканей производителей мы не проводили, т. к. они не входили в задачи работы. В то же время питание рыб комбикормами отразилось (что естественно, и чего мы добивались) на состоянии зрелости ооцитов. У самок из подопытных групп всех трёх серий экспериментов диаметр ооцитов увеличился в среднем на 23 %, в контрольных группах — на 12 %. Особый интерес представляют данные об изменениях коэффициентов поляризации ооцитов (КП). После кормления и зимовки у питавшихся самок они снизились более заметно по сравнению с контролем, составив, в среднем, 6,8 и 8,8 %, соответственно. Следует отметить, что в начале опыта коэффициенты поляризации ооцитов у самок из экспериментальных групп были почти в два раза выше, чем в контрольных группах (в среднем 20,2 и 12,9 %, соответственно). Согласно литературным данным [Чебанов, Галич, 2011] оптимальные значения этого показателя находятся в диапазоне 5–10 %. Несмотря на то, что повеличине КП самки из подопытных и контрольных групп находились в оптимальном диапазоне, более низкие значения коэффициентов у питавшихся самок свидетельствовали об их лучшей подготовке к нересту. Подтверждением этого положительного эффекта во всех сериях опытов явилось бóльшее количество самок, отнерестившихся в группах, получавших корм перед зимовкой. <img alt="Таблица 3" src="/sites/default/files/images/announcement/19/09/bezymyannyy_3.png" style="width: 984px; height: 206px;" title="Таблица 3" /> <img alt="Рисунок 1" src="/sites/default/files/images/announcement/19/09/bezymyannyy_4.png" style="width: 984px; height: 498px;" title="Рисунок 1" /> <img alt="Таблица 4" src="/sites/default/files/images/announcement/19/09/bezymyannyy_8.png" style="width: 984px; height: 804px;" title="Таблица 4" /> Оценка показателей плодовитости и качества полученной икры (табл. 4) также подтвердили выявленную тенденцию. Причём, на показатель плодовитости самок влияние предзимнего кормления оказалось более существенным. У самок, получавших корм, плодовитость была выше на 27 %. Это при том, что преднерестовая масса самок экспериментальной и контрольной групп была сходной. Следует отметить, что процесс кормления оказал положительное влияние и на оплодотворяемость икры. Во всех сериях опытов у рыб, получавших корм, она была выше, по сравнению с самками контрольной группы, в среднем на 28 %. Несомненный интерес для практического рыбоводства представляют данные по развитию эмбрионов. По трём сериям опытов приодинаковых условиях инкубации, доля развивающихся эмбрионов была на 42 % выше в икре, полученной от самок с предзимним кормлением. Следует отметить, что во второй и в третьей сериях как в контрольном, так и в опытном вариантах были зафиксированы отклонения в развитии эмбрионов. Эти отклонения выражались в нарушениях развития головного и хвостового отделов личинок. В то же время согласно литературным данным [Детлаф и др., 1981] аномальное развитие зародышей может быть обусловлено не только недостаточно благоприятными условиями инкубации и низким качеством икры, но и быть результатом проникновения в яйца избыточного количества сперматозоидов — так называемой «полиспермии» икры, что вполне возможно при использованном полусухом способе оплодотворения. Тем не менее, в икре, полученной от питавшихся в предзимний период самок, доля эмбрионов с аномалиями в развитии (в среднем по двум сериям экспериментов) была ниже на 40 %. Принимая во внимание сходные условия содержания рыб во всех трёх сериях, а так же очень близкие (почти одинаковые) значения массы рыб во всех периодах эксперимента, для большей наглядности мы усреднили результаты всех серий опытов и представили их по отношению к аналогичным показателям контрольных вариантов. При этом усреднённые значения показателей контрольного варианта были приняты за 100 % (рис. 2). Данные, представленные на рис. 2, более рельефно демонстрируют эффект предзимнего кормления. Увеличение диаметра ооцитов у питавшихся в этот период самок, наряду с выраженным снижением значений коэффициента поляризации, свидетельствует о более значимом накоплении в них питательных веществ и повышении качества процессов созревания ооцитов на завершающих стадиях гаметогенеза. Следствием этого явилось увеличение доли отнерестившихся самок и количества получаемой от них икры. Положительная динамика изменения продукционных характеристик самок составила от 10 (количество отнерестившихся самок) до 40 % (развитие эмбрионов), что позволило заметно повысить продуктивность системы выращивания в целом. Особо следует отметить положительное влияние предзимнего кормления на количество и качество потомства. Это позволяет рекомендовать использование данного технологического элемента в системах УЗВ как при получении посадочного материала для товарных хозяйств, так и в организациях по получению молоди осетровых, предназначенной для пополнения природных популяций. Опыты с самками сибирского осетра Опыты с крупными рыбами — самками сибирского осетра были проведены сотрудниками ВНИИПРХ в течение 2016 и 2017 гг. Основной интерес при выполнении этой части работы заключался в возможности внесения изменения в технологию многократного получения потомства у осетровых рыб [Мельченков и др., 2010], реализуемую в производственных условиях. В соответствии с технологией после нереста производителям обеспечивают активное восстановительное кормление и последующую «искусственную зимовку», которая предшествует уже новому нересту. Однако в результате нововведений производители осетровых рыб лишились одного из важных сезонных периодов — осеннего нагула при снижающейся температуре. В то же время он имеет для самок немаловажное значение в накоплении и утилизации резервов питательных веществ и энергии на последующих жизненных этапах. Это дало основание для попытки использования краткосрочной «технологической» паузы (снижения температуры воды дозимовальной) в качестве имитации, хотя бы в искажённом и сокращённом виде «осеннего нагула», что позволило бы обеспечить осеннее питание, необходимое для нормализации обмена веществ в период трофоплазматического роста ооцитов в преддверии наступления зимы и последующего нереста. Эксперименты были начаты в 2016 году на Алексинском осетровом заводе, где были предоставлены 3 одинаковых бетонных бассейна, 30 половозрелых самок и 5 самцов сибирского осетра. <img alt="Рисунок 2" src="/sites/default/files/images/announcement/19/09/bezymyannyy_5.png" style="width: 984px; height: 591px;" title="Рисунок 2" /> Первоначальная схема проведения экспериментов предполагала следующее: 2 бассейна — для испытания специализированного комбикорма ОРС‑3 и один бассейн — контроль — полное голодание рыб. Однако, возможные риски потери части рыбоводной продукции (икры) из-за изменения технологии и применения неизвестного для хозяйства корма, не позволили администрации в полной мере принять наши условия проведения опытов. В этой связи в 2016 г. по просьбе руководства хозяйства один экспериментальный вариант был заменён комбикормом Repro голландской фирмы Coppens. Условия хозяйства не могли быть отклонены ещё и потому, что, согласно прописи фирмы, корм Repro, предназначенный для кормления маточного стада, должен обеспечивать оптимальное развитие половых продуктов, высокое качество икры, а также высокую выживаемость мальков и поддержание общего здоровья рыб. Мы согласились с этими доводами потому, что в этом случае появлялась возможность сравнительного испытания коммерческого корма, богатого белком, жиром, витаминами, и экспериментального корма с пониженным содержанием основных элементов питания (табл. 1). В дальнейшем, в опытах 2017 г. использовали специализированный комбикорм ОРС‑5. Его основное отличие от ОРС‑3, применявшегося в 2016 г., состояло в исключении, возможно, токсичного сырья, каковыми являются кровяная мука, пшеничный глютен и витазар. Главная особенность корма ОРС‑5 — присутствие конопляного жмыха, оказывающего аттрактивный эффект. Кроме того, в корм было введено конопляное масло — редкий в составе растительного сырья источник высоконенасыщенных жирных кислот, в том числе незаменимой γ-линоленовой кислоты. Ранее, в 2016 г. эти добавки показали хороший аттрактивный эффект на самках бестера — рыбы очень охотно поедали корм, даже при низкой температуре воды. Методика проведения опытов и оценки состояния самок была близкой с условиями опытов ВНИРО и неизменной в течение двух лет. Имевшиеся отличия были связаны с невозможностью получения ряда показателей в производственных условиях, в частности по развитию икры, наличию уродств эмбрионов и ряду других. Самок сибирского осетра, отобранных на IV стадии зрелости с коэффициентом поляризации ооцитов в диапазоне 17–21 %, рассаживали в бассейны площадью 5 м2 и глубиной 1,5 м при плотности посадки 22 кг/м3. Самцов содержали отдельно. Перед наступлением «предзимнего» периода летнее кормление подопытных рыб прекращали. Рыб переводили на сниженный рацион (0,2 % от массы тела) экспериментальных кормов серии ОРС или корма Repro. В 2016 г. в качестве контроля была использована группа самок, кормление которой прекратили одновременно с началом снижения температуры воды. Снижение температуры воды до «зимовочной» проводили начиная с 19–18 °C шагом по одному или долям градуса (последнее через 1–2 дня) в течение 30 суток вплоть до 7–6 °C. Зимовка продолжалась 1 месяц, и далее 1 месяц температура воды поднималась до нерестовых значений. Характеристика рыбоводных показателей самок сибирского осетра после «предзимнего» кормления приведена в табл. 5. Представленные в табл. 5 данные позволяют говорить, что в первый год исследований как испытуемые, так и контрольные рыбы были относительно хорошо подготовлены к зимовке. Это выражалось в близком количестве отнерестившихся самок. Судя по диаметру ооцитов, в вариантах с кормлением более активно этот процесс шёл у самок, питавшихся кормом ОРС‑3. Об этом свидетельствуют увеличение диаметра ооцитов (около 12 % против 4 % в случае с Repro) и уровень снижения поляризации, который достиг 42 %. По этим же признакам почти с равной интенсивностью шло созревание ооцитов у контрольных голодавших рыб. В этом случае было несколько большее увеличение диаметра ооцитов (до 17 %) и снижение коэффициента их поляризации (на 50 %). В конечном итоге это нашло отражение в общем количестве полученной икры. Также следует отметить более высокий по сравнению с кормом Repro процент оплодотворения икры у рыб, получавших корм ОРС‑3 (на 5 % в 2016 г.) и ОРС‑5 (на 35 % в 2017 г.). <img alt="Таблица 5" src="/sites/default/files/images/announcement/19/09/bezymyannyy_6.png" style="width: 984px; height: 672px;" title="Таблица 5" /> В 2017 году по настоянию руководства хозяйства схема опытов была изменена. Был исключён контрольный вариант (без кормления), наблюдения проводили за рыбами, получавшими в одном варианте специализирован-ный корм ОРС‑5, во втором — корм Repro. Следует также отметить, что в производственных условиях не удалось отобрать необходимого количества самок со значениями коэффициентов поляризации ооцитов, аналогичными 2016 г. В этой связи, в опытах 2017 г. на начальном этапе эксперимента коэффициенты поляризации ооцитов были выше, чем у самок, использованных годом ранее. Как видно из данных, представленных в табл. 5, за период кормления диаметр ооцитов на корме ОРС‑5 увеличился незначительно — на 2,4 %, а на корме Repro — на 3,4 %. Коэффициенты поляризации ооцитов в обоих вариантах кормления не достигли 8–10 % — оптимальных для нереста значений. Следствием этого явился тот факт, что на корме ОРС‑5 удалось получить икру только от 67 % самок, а на корме Repro — от 50 %. Сравнивая результаты экспериментов двух лет, можно видеть, что во второй год исследований на корме серии ОРС увеличение диаметра икринок сократилось против предыдущего года в 5 раз, а в варианте с Repro осталось почти без изменений. При этом снижение коэффициентов поляризации уменьшилось в обоих случаях почти одинаково на 32 % (комбикорм ОРС‑5) и на 33 % (комбикорм Repro). Таким образом, влияние обоих кормов на созревание ооцитов было достаточно сходным. Отсутствие контрольного варианта (без кормления) не позволило сделать однозначного предположения о причинах торможения (по сравнению с предыдущим годом) процессов созревания ооцитов у рыб, получавших корма. Вполне возможно, что это может быть связано с несоблюдением условий зимовки. Однако, наиболее вероятной причиной, на наш взгляд, является тот факт, что в 2017 г. для опытов были отобраны самки, имевшие слишком высокий коэффициент поляризации ооцитов. Продолжительность их предзимнего кормления в течение 30 дней оказалась недостаточной для достижения оптимальных значений (18 %) для начала зимовки, и в дальнейшем 8–10 % — после зимовки перед нерестом. Таким образом, по ряду причин производственного характера, в условиях хозяйства, по сравнению с аквариальными опытами, мы получили менее заметный эффект влияния предзимнего кормления на биологические показатели самок осетра. В то же время, в производственных условиях нам представилась возможность оценить его воздействие на продукционные показатели рыб, использованных в экспериментах. В табл. 6 приведены сводные результаты за 2 года исследований, отражающие комплекс продукционных характеристик 49 самок сибирского осетра как голодавших в период подготовки к зимовке, так и получавших специализированные корма серии ОРС и коммерческий корм Repro. <img alt="Таблица 6" src="/sites/default/files/images/announcement/19/09/bezymyannyy_7.png" style="width: 984px; height: 527px;" title="Таблица 6" /> Можно видеть, что в случае сравнения питавшихся рыб с голодавшими (к сожалению, контрольный вариант только один) — питание сибирского осетра в предзимний период экспериментальным кормом ОРС‑3 привело к увеличению общей массы полученной икры (в % по отношению к массе всей группы из 10 рыб), к корму ОРС‑3 — на 25 %, а к 7, отдавшим икру, на 1 кг их массы — на 29 %. Согласно табл. 6 осеннее питание в годы испытаний 2016–2017 гг. не привело к увеличению числа самок, отдавших икру, однако её количество, полученное от питавшихся рыб, было большим почти на 30 % (из расчёта на массу рыб, отдавших икру, г/кг веса). В 2016 г. репродуктивный индекс в опыте составил 140–158 г/кг веса самок против 99 г/кг по традиционно используемой технологии зимования без кормления. В 2017 г. соответственно было получено 93–95 г/кг икры только в опыте без контроля, но с кормом Repro. Испытывавшийся одновременно в течение 2-х лет по желанию хозяйства, более концентрированный и дорогой репродукционный корм Repro со значительно бóльшим содержанием белка, дал увеличение выхода икры в сравнении с кормом ОРС‑3 от одной самки на 4 %. Однако при этом, рыбоводные качества икры (оплодотворяемость и выход личинок) оказались несколько худшими. Представленный в табл. 6 репродуктивный показатель, отражающий долю полученной икры от общей массы самок, использованных в опытах, является очень интересным с позиций оценки эффективности системы выращивания, главной целью которой является производство пищевой икры. По результатам 2016 г. он наглядно демонстрирует преимущество кормления самок в период предзимнего снижения температуры, по сравнению с голоданием. Из данных таблицы чётко видно, что за счёт кормления в группах самок, используемых для получения икры, можно обеспечить увеличение её выхода на 37–39 %. При этом различия в доле икры, полученной от самок, питавшихся высокоэнергетичным кормом Repro (48 % белка и 15 % жира) и специализированным кормом с пониженным содержанием белка и жира (соответственно, 37,5 % и 12 %) составили всего два процента. В 2017 г. по показателю доли икры, получаемой от общего количества использованных самок, корм серии ОРС показал существенное преимущество. Подводя итог, следует отметить, что в производственных условиях на сибирском осетре мы не смогли получить чётко выраженного повторения особенностей созревания ооцитов, отмеченных ранее в экспериментальных условиях на бестере. В то же время на производстве нам удалось продемонстрировать наиболее значимый для хозяйства эффект от применения этого типа кормления самок — увеличение почти до 40 % выхода икры по сравнению с самками, не получавшими корм в предзимний период. Кроме того, следует отметить необходимость более чёткого контроля коэффициента поляризации ооцитов при переводе самок с этапа «летнего» нагула на этап «предзимнего кормления» и последующую зимовку до нереста. Желательно, чтобы коэффициенты поляризации ооцитов на этих этапах не превышали 17–19, 14–16, и 8–10 %, соответственно. В случае задержек в ди

Читать

10 сентября 2019

Содержание нефтепродуктов в воде

Нефтепродукты - опасные вещества, которые в следствии негативно влияют на здоровье человека, ухудшают условия водоемов и наносят вред хозяйству. <img alt="Содержание нефтепродуктов в воде" height="446" src="/sites/default/files/images/announcement/19/08/prool.jpg" title="Содержание нефтепродуктов в воде" width="631" /> Нефтепродукты в воде находятся в растворенной, эмульгированной, сорбированной формах, а также в виде пленки на поверхности. В момент поступления основная масса нефтепродуктов сосредоточена в пленке. Затем происходит постепенное перераспределение в другие формы, при этом в растворенную форму переходят в основном низкомолекулярные ароматические углеводороды. Нефтепродукты относятся к числу наиболее распространенных загрязняющих веществ. Анализ содержания нефтепродуктов в воде, трудоемок. Так как нефтепродукты являются сложной, непостоянной по составу смесью веществ. Определить содержание нефтепродукты в воде можно только в лабораторных условиях, например методом Ик-спектрофотометрии – с помощью четыреххлористого углерода путем экстракции. Загрязнение водоемов нефтепродуктами: <ul> <li style="text-align: justify;">Аварии и разливы нефти при ее добыче;</li> <li style="text-align: justify;">Аварии и разливы нефти при транспортировке и хранении;</li> <li style="text-align: justify;">Пробоины в нефтепроводах и нефтехранилищах;</li> <li style="text-align: justify;">Недостаточная очистка сточных вод;</li> <li style="text-align: justify;">Заправка водного транспорта;</li> <li style="text-align: justify;">Выбросы двигателей внутреннего сгорания;</li> <li style="text-align: justify;">Выход на поверхность нефтеносных пород.</li> </ul> Влияние нефтепродуктов на здоровье человека Содержание нефтепродуктов в воде наносит значительный ущерб здоровью человека. При купании в водоемах, есть риск возникновения кожных заболеваний. Употребление воды, с высоким содержанием нефтепродуктов, повышает риск развития рака внутренних органов, болезней пищеварительной и эндокринной систем, заболеваний полости рта. Предельно допустимое содержание нефтепродуктов в воде Количество нефтепродуктов в питьевой воде не должно превышать 0,1 мг на литр; в рыбохозяйственных водоемах – не более 0,05 мг на литр. Методы очистки воды от нефтепродуктов Способы очистки нефтепродуктов из воды: <ul> <li style="text-align: justify;">Механическим – первичная очистка, удаляет загрязнения при помощи отстаивания и фильтрации.</li> <li style="text-align: justify;">Химическим – добавление в сточные воды реагентов.</li> <li style="text-align: justify;">Физико-химическим – очищение воды посредством коагуляции, флотации и сорбции.</li> <li style="text-align: justify;">Биологическим – разложение с помощью специальных микроорганизмов.</li> </ul> <hr /> Источник: Здрок А.В., начальник Отдела экологической токсикологии ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ") Фото: Здрок А.В., начальник Отдела экологической токсикологии ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

29 августа 2019

Гельминтофауна карповых рыб из естественных водоемов центральной зоны России

Разнообразие экологических условий в водоемах определяет численность и видовой состав обитающих в них рыб и способствует формированию их паразитофауны. В водоемах Центральной зоны РФ в составе ихтиофауны большую часть занимают карповые рыбы - лещ, плотва, густера и другие. Сложившиеся условия в водохранилищах и реках благоприятны для осуществления жизненных циклов многих гельминтов, для которых рыбы являются дополнительными или дефинитивными хозяевами. В некоторых водоемах сформированы очаги опасных гельминтозов, таких как лигулез, ихтиокотилюроз, диплостомоз, постодиплостомоз, что приводит к уменьшению рыбопродуктивности водоемов и ухудшению качества рыбной продукции. У рыб отмечается снижение неспецифической резистентности, торможение роста, а в некоторых случаях и гибель. Фундаментальные исследования паразитофауны рыб, начиная с 30-х годов прошлого века, проведены во многих водохранилищах Волжско-Каспийского бассейна, но водоемы бассейна р. Дон до настоящего времени остаются практически не обследоваными. В настоящее время сведения о фауне паразитов рыб имеют особую значимость в связи с расширением на водоемах рекреационных зон и восстановлением промышленного рыболовства. Целью данной работы являлось провести оценку гельминтофауны карповых рыб из водоемов Центральной зоны РФ. Паразитологическому анализу было подвергнуто 380 экземпляров рыб из семейства Cyprinidae. Видовой состав был представлен основными представителями этого семейства лещом, густерой, плотвой, красноперкой, карасем серебрянным, линем, уклейкой, жерехом. Материал собирался летом в 2012-2014 гг. во время проведения лова рыб из квоты, выделенной для научных целей из Белгородского и Старооскольского водохранилищ, Матырского водохранилища, реки Дон и Воронеж, Тамбовского водохранилища и реки Цна. Паразитологический анализ проводили общепринятыми в ихтиопаразитологии методами. Зараженность рыб гельминтами оценивали: по встречаемости или экстенсивности, по интенсивности инвазии средней, по амплитуде заражения и индексу обилия. В Белгородском водохранилище у карповых рыб обнаружено 13 видов гельминтов, основная их часть представлена трематодами (69%) на стадии метацеркарий (исключение составляет Asymphylodora kudanikum). Широко распространенными видами являются Diplostomum chromatophjrum (локализующиеся в хрусталиках глаз), Ichtyocotylurus erraticus (в области сердца), Postodiplostomum cuticola (под кожей) и Paracoenogonimus ovatus (в мышцах). Эпидемиологически значимый вид гельминтов Pseudoamphistomum truncatum, был обнаружен в мышцах лещей, встречаемость (Э.И.) составляла 11% при И.И. ср. 10 экз./рыбу. Плероцеркоиды цестод Ligula intestinalis и Digramma interrupta обнаружены в полости тела лещей, интенсивность инвазии составляла от 3 до 4 экз./рыбу. Одновременно при паразитировании ремнецов выявлены нематоды Philometra ovata от 2 до 5 экз./рыбу. В Старооскольском водохранилище у карповых рыб обнаружено 6 видов гельминтов. Моногенеи Diplozoon paradoxum были выявлены на жабрах у плотвы, леща и густеры, А.И.И. составляла от 8 до 16 экз./рыбу. У лещей (Э.И.=30%) в полости тела обнаружены плероцеркаркоиды L.intestinalis. Несмотря на заражение ремнецами, упитанность рыб оставалась высокой. Остальные 4 вида гельминтов представлены метацеркариями трематод. В стекловидном теле и хрусталиках были обнаружены T. clavata (у плотвы) и D.spathaceum (у карася, плотвы и леща). В мышцах у плотвы выявлены цисты P.ovatus (И.И.=10 экз./рыбу), а у лещей (Э.И.=30%) и серебряных карасей (Э.И.=20%) - P. truncatum (И.И.ср.=10 экз./рыбу). В Матырском водохранилище гельминтофауна карповых рыб представлена 9-ю видами. Также же, как и в водохранилищах Белгородской области доминирующими являются трематоды (60%). Род Diplostomum был представлен 2 видами - D. spathaceum (у плотвы, леща и линя), D. chromatophorum (у плотвы, леща, густеры и красноперки). У красноперки и плотвы, в стекловидном теле глаз обнаружены еще и метацеркарии Postodiplostomum brevicaudatum. Метацеркариями трематод P. ovatus наиболее интенсивно был заражен лещ И.И. достигала 140 экз./рыбу. Aspidogaster limacoides (класс Aspidogastrea) обнаружены в кишечниках у красноперки и плотвы (И.И.=1 экз./рыбу). Зараженность рыб цестодами в Матырском водохранилище оказалась не высокой. Выявлены всего 2 вида из этой группы паразитов - Ligula intestinalis у лещей в полости тела и Caryophyllaeus laticeps у них же в кишечнике. В реке Дон гельминтофауна карповых рыб представлена 8-ю видами. Два вида моногеней были обнаружены на жабрах - у лещей Dactylogyrus fabcatus и Paradiplozoon pavlovskii - у жереха. Временные экзопаразиты пиявки Piscicola geometra выявлены в ротовой полости у лещей. Остальные 63% гельминтов были представлены трематодами видовой состав, которых достаточно близкий во всех обследованных водоемах. Интенсивность инвазии карповых рыб гельминтами в р. Дон не высокая, что может свидетельствовать только о паразитоносительстве. Наиболее интенсивно был заражен язь мышечными трематодами P.ovatus, И.И. составляла 90 экз./рыбу. В реке Воронеж у карповых рыб обнаружено 8 видов гельминтов. Видовой состав представлен широко распространенными видами гельминтов из p.p. Diplostomum, Tylodelphys, Postodiplostomum, lchthyocotylurus, Pseudoamphistomum. Массовое заражение метацеркариями трематод Postodiplostomum cuticola было выявлено у красноперки. И.И. достигала 120 экз./рыбу, в среднем составляла 33,5 экз./рыбу при встречаемости у 86% рыб. Цисты с метацеркариями локализовались на теле, плавниках, жаберных крышках рыб. В 2014 году интенсивность инвазии P.ovatus у красноперки составила до 670 экз./рыбу, у плотвы - до 510 экз./рыбу, у густеры - до 120 экз./рыбу. В предыдущие годы (2012-2013 гг.) уровень заражения этими паразитами был значительно ниже. В Тамбовском водохранилище у карповых рыб обнаружено 17 видов паразитов. Из широко распространенных гельминтов встречались метацеркарии трематод из p.p. Diplostomum, lchtyocotylurus 3-х видов. В 2014 г. наиболее массово был заражен лещ l. erraticus, локализирующими в области в области сердца (Э.И. достигала до 90%; И.И. ср. составила 33 экз./рыбу; А.И.И. от 1 до 67 экз./рыбу, И.О.=30 экз./рыбу). Другие два аида этого вида (l.pileatus, l.variegates) , были обнаружены на серозных оболочках брюшной полости и почках у леща, серебряного карася и линя в единичных количествах. Из других видов гельминтов эпизоотическое значение в Тамбовском водохранилище имеют Ligula intestinalis и Digramma interrupta. Эти паразиты были обнаружены в полости тела у лещей (42%) от 1 до 3 экз./рыбу. В реке Цна у карповых рыб обнаружено 7 паразитов. Метацеркарии из p. Diplostomum выявлены 2-х видов: D. spathaceum D. mergi, которые локализовались в хрусталиках глаз у лещей, жереха и густеры. Около 90% обнаруженных диплостомид представлены D.spathaceum и D.mergi, которые локализовались в хрусталиках глаз у лещей, жереха и густеры. Около 90% обнаруженных диплостомид представлены D.spathaceum, который имеет эпизоотическое значение. У 90% лещей в мышцах обнаружены цисты трематод P.ovatus и P. truncatum. Эти же виды паразитов обнаружены в мышцах у густеры, а у жереха - только единично P.truncatum. У лещей обнаружены метацеркарии трематод из p. lchthyocotylurus двух видов l.pileatus и l.erraticus. Заключение. Таким образом, гельминтофауна карповых рыб из водоемов Центральной зоны РФ насчитывает 25 видов гельминтов. Большая часть гельминтов представлена трематодами (17 видов), среди которых эпизоотическое значение имеют p.p. Diplostomum (5 видов) и lchyocotylurus (3 вида). Кроме того, эпизоотическое значение в водоемах Центральной зоны РФ у карповых рыб имеют цестоды p.p. Digramma. Одновременно при паразитировании ремнецов обнаружены нематоды Philometra ovate. Во всех обследованных водоемах, за исключением Матырского водохранилища выявлен эпидемиологически значимый гельминт Pseudoamphistomum truncatum, метацеркарии, которого обнаруживали в мышцах леща, плотвы, язя и жереха. <hr /> Источник: Рыбоводство и рыбное хозяйство, 2016 г, №10. Авторы: Н.Н. Романова, к.б.н., доцент; Н.А. Головина, д.б.н., профессор; П.П. Головин, к.б.н.

Читать

Вы представитель СМИ?

Для получения комментария учёных, организации интервью или съёмок на объектах института напишите в пресс-службу — ответим в течение рабочего дня.

Запрос в пресс-центр Правила работы со СМИ