Вы здесь

Пресс-центр Информаторий · ВНИИПРХ

Анонсы и информаторий

Предстоящие мероприятия, конференции, семинары и события Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО». Следите за афишей института.

Всего записей: 179

Все годы 179 2026 3 2025 4 2024 8 2023 11 2022 31 2021 32 2020 21 2019 28 2018 22 2017 17

1 апреля 2022

Адрес изготовителя и правильная банка: в Роскачестве рассказали, как выбирать печень трески

Печень трески богата полезными жирными кислотами Омега-3, содержит большое количество витамина D, витамина А, йода и других минеральных элементов, таких как магний, железо, кальций, фосфор, калий. В России популярностью пользуется консервированная печень трески. На что важно обращать внимание, выбирая этот продукт в магазине, рассказала начальник отдела испытаний Роскачества Лилия Котельникова. «Если изготовитель находится в регионах вылова трески, а это Балтийское море – Калининград и область, Баренцево море – это Мурманск, Белое море – Архангельск и Дальний Восток, то шанс получить продукт из охлажденного сырья выше. Следует обратить внимание на надписи: «сделано в море», «сделано на корабле», «сделано из свежего сырья» – и соотнести их с местом нахождения изготовителя. Если они соответствуют, то это, скорее всего, правда, а не маркетинговая уловка. Если произведено где-то в центральной части России и написано «сделано в море» – это обман. Продукт, изготовленный, например, в Подмосковье или Ленинградской области производится из мороженого сырья. Об этом обязательно на маркировке должна быть надпись», – говорит Котельникова. Такой продукт тоже может быть хорошим при условии соблюдения условий заморозки, транспортировки, хранения сырья и дальнейшей технологии произведения консервов. Такая печень будет немного суше, однако за счет того, что печень трески – сама по себе жирный продукт, это будет не сильно заметно. При покупке отдавать предпочтение стоит жестяным банкам, а не стеклянным. «Стеклянные банки не возят на судах, – объясняет эксперт. – Обычно линии производства консервов рассчитаны на банку из жести». В составе консервированной печени трески должны быть только печень, соль, черный перец и лавровый лист. А вот визуально отличить печень трески от подделки (печени более дешевых видов рыб или молок) очень сложно. Однозначно ответить на этот вопрос может только лабораторный анализ – секвенирование. <img width="500" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/f9e/webpc-passthru%20(1).jpg" height="303"> <hr> Источник: журнал "Русская рыба"

Читать

22 марта 2022

Почему речные рыбы костлявее морских?

Считается, что речная рыба более костлявая, чем морская. Многие виды рыб, живущие в пресноводных водоемах, действительно, имеют большое количество мелких костей. С чем это связано и почему у обитателей морей другое строение скелета? Зачем рыбе много костей? У большинства речных обитателей кроме хребтовых костей есть еще множество мелких косточек, не скрепленных между собой, находятся в спинных мышцах. Они играют роль своего рода каркаса прочности. Тонкие косточки, часто имеющие форму рогатки, увеличивают эластичность, силу сокращения и выпрямления мышц. Плавание рыбы с развитым скелетом энергетически экономичнее и более быстрое. Для резкого поворота они используют плавники и широкий хвост. В реках сильное течение и развитый скелет помогает рыбам справиться с сопротивлением воды. Благодаря мощному скелету рыба также погружается более глубоко, тогда как плавательный пузырь помогает ей не идти на дно. <blockquote style="text-align: justify;"> Интересный факт: считается, что бескостная рыба более полезна. Однако это заблуждение. Более высокой пищевой ценностью обладает вся речная рыба. В ней содержатся необходимые для человеческого организма аминокислоты и витамины, а доля белка достигает 20%. А так как у обитателей морей есть только хребет, то и создается впечатление, что бескостные виды полезнее. На самом деле единственное преимущество бескостной рыбы перед костлявой заключается в простоте ее разделки. Достаточно вытащить хребет и можно не бояться подавиться косточкой во время приема пищи. Поэтому салаты, супы и прочие рыбные блюда часто готовят из бескостной рыбы. </blockquote> Распространенное заблуждение Теория, что речные рыбы костлявее морских, не подтверждается, если рассмотреть все виды. В морях обитает большое количество разной рыбы, число видов доходит до 3000. Но добывают рыбу в морях только промысловым способом. Поэтому на тарелке у потребителя оказываются лишь самые популярные виды, такие как минтай, палтус, хек, треска. Это та рыба, которая пользуется спросом из-за своих вкусовых качеств, а также простоты ее приготовления. Однако в морях обитает, например, морской конек, относящийся к роду лучеперых рыб. Его тело покрыто множеством костяных пластин. Да и морская селедка тоже достаточно костлявая. Кроме основных хребтовых костей у нее есть еще дугообразные реберные кости и много мелких косточек, расположенных вдоль хребта и с ним не соединенных. Из речной рыбы люди чаще всего употребляют в пищу карася, окуня, щуку, представителей семейства карповых. А всего в реках, прудах и озерах обитает не более 300 видов. Обычно это особи средних и мелких размеров. Они имеют множество мелких костей. Но если рассмотреть крупных речных или озерных обитателей, то чаще всего это виды с малым количеством костей, такие как сом, судак, сазан, налим. Почти нет мелких костей у угрей и речных миног. Костлявой рыбой является плотва. Это обстоятельство не сделало ее менее популярной среди рыболовов. Плотва водится почти во всех водоемах мира, а в некоторых странах изображение этой рыбки даже помещают на гербы городов. Сушеные вобла или тарань, которые являются подвидами плотвы, считаются лучшими рыбными закусками. Рыбка эта маленькая, даже самые большие особи редко достигают веса в 100 г. Миф о том, что речная рыба костлявая, а морская нет, появился из-за ограниченного потребления морских видов. Морскую рыбу люди покупают в магазинах, а на прилавках оказывается товар, который удобен в готовке. На самом деле морских обитателей много и некоторые из них имеют сложный скелет. Видов речной рыбы мало. Большинство обитателей рек и озер маленького размера, поэтому и костлявы, так как сильный скелет помогает им выжить в условиях пресного водоема и защититься от хищников. <img width="500" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/490/pchrbkstmrsk.jpg" height="281"> <hr> Источник: <a target="_blank" href="https://kipmu.ru/">Научно-популярный журнал: «Как и Почему» </a>

Читать

12 марта 2022

Можно ли определить возраст рыб?

<img width="400" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/3fe/mlovrb.jpg" height="268"> С каждым годом ученые, изучающие живых существ делают удивительные открытия. И немалая их часть приходится на водный мир Земли. Океаны и моря населены тысячами видов рыб, обладающих определенными особенностями. Представители каждого вида подводных обитателей живут разное количество времени, которое варьируется от нескольких дней до десятков лет. Но может ли человек самостоятельно определить, сколько лет прожила определенная рыба? Определение возраста по чешуе Большинство рыб покрыты чешуей. Это наружный покров тела, состоящий из костных или роговых пластин. Чешуйки формируются, растут и меняются с течением жизни своего носителя и выполняют защитную функцию. <blockquote> Интересный факт: в рыболовной промышленности чешуя считается отходным материалом, но некоторая ее часть расходуется на производство рыбной муки. Полученный порошок используют в качестве одного из компонентов при изготовлении корма для животных </blockquote> И если для рыбы чешуя является средством защиты, то для человека она представляет настоящую информационную карту, по которой можно узнать много интересного о конкретном существе, в том числе и возраст. <img width="500" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/d2a/gdklcrb.jpg" height="238"> Принцип определения возраста рыбы по чешуе довольно прост и полностью совпадает с методикой выявления этого параметра по стволу у деревьев. С каждым годом на чешуе образовываются концентрические образования, расходящиеся кругами от центра к краю. Подсчитав их количество можно определить, сколько лет пойманной рыбе. Однако в большинстве случаев потребуется положить чешуйку под микроскоп, чтобы детально рассмотреть имеющиеся круги. Другие способы определения возраста Существуют рыбы, у которых чешуя непригодна для определения возраста. Тогда ученые идут на хитрость и ищут другие способы, помогающие узнать, сколько лет прожила рыба. В этом помогает изучение других частей тела, причем у каждого вида рассматривается определенный элемент: у судака и окуня возраст определяется по жаберной крышке; у налима, ерша и корюшки по позвонкам; у стерляди и осетра по спилу первого луча грудного плавника. Эти элементы высушиваются, осветляются и проходят обработку. После этого на их поверхности можно различить кольца, характеризующие возраст рыбы. Возраст рыб определяется по годовым кольцам, расположенным на их чешуе. Если последнюю нельзя использовать для изучения, количество лет, прожитых особью, можно подсчитать по тем же кольцам на позвонке, жаберной крышке или спилу луча грудного плавника. <hr> Источник: <a target="_blank" href="https://kipmu.ru/">Научно-популярный журнал: «Как и Почему»</a>

Читать

2 марта 2022

Масленица и морские деликатесы: Что выбрать и чем полезны морепродукты?

Впереди — масленичная неделя. Самое время задуматься над тем, как разнообразить свой стол. Например, морскими деликатесами. Что выбрать и чем полезны морепродукты? Икра нерки, чавычи или горбуши отлично подходит для начинки масленичных блинов. Приятный бонус — морепродукты отлично усваиваются организмом. Еще одно украшение праздничного стола — рыба холодного и горячего копчения. Наталья Митченко, Консультант: Чавыча — королевский лосось, она очень богата омегой -3, она жирная, питательная, нежная по вкусу — бесподобная рыбка, нерка — менее жирный сорт рыбы, но не менее вкусный, кижуч, также форель. Особый способ приготовления — копчение на натуральной щепе — позволяет сохранить полезные микроэлементы. Это фосфор, кальций, йод, железо. А разнообразие сортов той самой рыбы Камчатского края удовлетворит запросы самых опытных кулинаров. <img width="500" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/363/webpc-passthru.jpg" height="333"> <hr> Источник: журнал "Русская рыба"

Читать

20 февраля 2022

Вырастить карпа массой более 1 кг за одно лето в Подмосковье. Возможно ли это?

В настоящее время товарного карпа в прудовых хозяйствах РФ выращивают за два года, иногда за три. В первый год выращивают сеголеток. Сеголетками называют рыб возрастом одного лета, сего лета. Перезимовавшие сеголетки называются годовиками. Их высаживают в нагульные пруды, где выращивают товарных двухлеток. Сейчас востребованная масса товарной рыбы 1 кг и более, поэтому рыбхозы стремятся выращивать двухлеток карпа именно такой навески. Пока ни в одном прудовом хозяйстве Российской Федерации не смогли вырастить товарных сеголеток массой близкой к 1 кг. Максимальная средняя масса сеголеток по литературным данным составляла около 600 г. Отдельные особи были около 800 г. Этого достигли в рыбхозе «Невод» Ростовской области в 2005 г. Однако дальнейшего увеличения массы сеголеток, по мнению рыбоводов хозяйства, можно было достигнуть только при значительном снижении плотности посадки личинок, а это приводит к уменьшению рыбопродуктивности и уменьшению прибыли. Следует отметить, что Ростовская область относится к 5 зоне рыбоводства. Вся территория РФ поделена в зависимости от суммы тепла на 6 рыбоводных зон. 6-ая зона самая теплая с количеством дней в году с температурой воздух выше 15 ℃ в 136-150. Первая зона – самая северная с количеством таких дней 60-75. В течение 3-х последних лет в группе комплексной интенсификации прудового рыбоводства Филиала, находящегося в пос. Рыбное Дмитровского района Московской области (1 зона рыбоводства) разрабатывали технологию двухлетнего выращивания карпа в прудах 1-2 зон рыбоводства с выходом рыбопродукции не менее 3 т/га и массой товарной рыбы не менее 1 кг. В рамках этой технологии выращивали крупный посадочный материал (сеголеток) карпа. В 2019 г. масса сеголеток составила в среднем 609 г при рыбопродуктивности 2,7 т/га. В 2020 г. лето было заметно прохладнее предыдущего и масса сеголеток была 403 г при рыбопродуктивности 1,9 т/га. В 2021 г. лето было теплое и специалисты группы смогли вырастить сеголеток средней массой 1143 г при рыбопродуктивности 1,5 т/га. Таких результатов смогли достичь в тесном сотрудничестве со специалистами лаборатории селекции и генетики рыб. Они предоставили перспективный быстрорастущий кросс Московского разбросанного карпа и волжского сазана. Данный высокопродуктивный кросс можно рекомендовать во все рыбоводные хозяйства РФ. Личинок этого кросса можно заказать в Филиале. Если кого-то заинтересовали сведения, приведенные выше, и они хотят узнать более подробно о технологии выращивания товарных сеголеток, также можно обращаться в Филиал по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ ВНИРО («ВНИИПРХ»). Информация о лабораториях Филиала и контактах представлена на сайте института. <img width="500" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/5d8/49.JPG" height="333"> <hr> Подготовил: Мустаев С.Б. руководитель группы комплексной интенсификации прудового рыбоводства Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ»)

Читать

10 февраля 2022

Санитарно-эпидемиологическая обстановка в водоемах Московской области

В 2021 г. проведен мониторинг санитарно-эпизоотического состояния водоемов Московской области – реки Москва, Озернинского, Можайского и Рузского водохранилищ. Согласно результатам бактериологической оценки качества воды, значение общего микробного числа (ОМЧ) с мая по октябрь варьировало и составляло в водоемах Московской области – от 120 до 16820 КОЕ/мл, в реке Москва – от 420 до 9180 КОЕ/мл. Микробиоценоз был представлен аэромонадами, ацинетобактерами, моракселлами, шеванеллами, бактериями группы кишечной палочки, псевдомонадами, бациллами, стафилококками, энтерококками, цитробактером, миксобактериями, флавобактериями, плесневыми грибами, а также сапрофитной микрофлорой (таблица). Таблица – Показатели бактериологического загрязнения воды в весенне-летний период 2021 г. в реке Москва и водохранилищах Московской области <img width="800" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/5fa/1.JPG" height="679"> Бактерии, выделенные из воды в обследованных водоемов, имеют не только эпизоотическое (т.е. опасные для гидробионтов), но и эпидемиологическое значение (опасные для человека и теплокровных животных). Дана оценка уровня заражения паразитами основных видов рыб, обитающих в данных водоемах: щука, судак, окунь, лещ, густера, плотва. В весенний период особенностью в обследованных водоемах Московской области является обнаружения практически у всех обследованных рыб заражения моногенеями из р. Dactylogyrus (дактилогирусами), которые паразитировали на жабрах рыб. На протяжении весенне-летнее-осеннего периода в Озернинском и Можайском водохранилищах у судака отмечали высокое заражение трематодами – ихтикотилюридами (Ichthyocotylurus platycephalus, I. pileatus, I. variegatus). Цисты с личинками трематод локализовались в полости тела, чаще всего на почках. Уровень заражения составлял до 100 гельминтов на рыбу. У окуня в этих водохранилищах в печени обнаружены цисты с личинками цестоды Triaenophorus nodulosus: в Можайском водохранилище уровень заражения составлял до 10 паразитов на рыбу, в Озернинском водохранилище до 3 паразитов на рыбу. У карповых рыб (леща, густеры и плотвы) отмечено не высокое заражение (от 2 до 15 цист на рыбу) личинками трематоды Posthodiplostomum cuticola, вызывающие постодиплостомоз (чернопятнистое заболевание) при внешнем осмотре на теле рыб видны черные пятна - пигментированные цисты с паразитами (рис.1) <img width="500" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/8df/2.jpg" height="375"> Рис. 1 – Заражение плотвы личинками трематод - постодиплостомами ВНИМАНИЕ БИОГЕЛЬМИНТОЗ!!! Выявлено массовое заражение окуня личинками трематод Apophallus muehlingi (рис. 2) в реке Москва при 100% встречаемости, ср. И.И. 4123 экз./рыбу, А.И.И. от 416-16061 экз./рыбу. Apophallus muehlingi является одним из потенциальных возбудителей апофаллеза человека. Гельминт в половозрелом состоянии паразитирует в тонком отделе кишечника плотоядных млекопитающих, а также некоторых рыбоядных птиц и человека. В соответствии с Техническим регламентом Евразийского экономического союза «О безопасности рыбы и рыбной продукции» (ТР ЕАЭС 040/2016) не допускается присутствие личинок апофаллюсов в рыбной продукции. <img width="500" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/88e/3.jpg" height="284"> Рисунок 2 – Зараженные апофаллюсами окуни из р. Москва Личинки трематод заключены внутри шаровидных или овальных цист размером 0,20- 0,29 х 0,14-0,26 мм. Стенка цисты двухслойна, вокруг откладывается черный пигмент, что делает цисты хорошо заметными, при локализации в мышцах пигмент откладывается не всегда. Локализация паразита в лучах плавников (рис. 3) и хвоста, в мышцах туловища. Иногда цисты ошибочно принимают за личинки трематоды Posthodiplostomum cuticola. <img width="500" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/239/4.jpg" height="375"> Рис. 3 – Грудной плавник - с цистами трематод в лучах При употреблении в пищу окуней с клиническими признаками апофаллеза необходимо тщательно подвергать термической обработки. В связи обнаруженным бактериальным загрязнением водоемов существует вероятность контаминации бактериями внутренних органов и мышечной ткани рыб и обнаружением потенциально опасного гельминта из р. Apophallus у окуней в реке Москва необходимо соблюдать следующие профилактические мероприятия: - исключение из пищи строганины, сырой, полусырой, малосоленой и недостаточно провяленной и термически плохо обработанной рыбы; - защита водоемов от загрязнения яйцами эпидемиологически значимых гельминтов, для чего необходима эффективная работа очистных сооружений, очистка дворовых уборных в сельской местности; сточные воды с животноводческих комплексов, звероферм не должны попадать в водоемы; - информирование населения о методах обработки рыбы и санитарно-гигиенических правилах. <hr> Информацию подготовили: лаборатория ихтиопатологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ»)

Читать

31 января 2022

Анализ закономерного хода сперматогенеза у сибирского осетра при искусственном воспроизводстве в зависимости от абиотических факторов

ВВЕДЕНИЕ Для обеспечения путей управления в ходе сперматогенеза в преднерестовый и нерестовый периоды важно знать особенности развития половых клеток с целью разработки методов контроля степени половой зрелости рыб в индустриальных условиях. При использовании универсальной шестибальной шкалы, описанной для разных видов рыб, период созревания у самцов происходит асинхронно [Персов, 1947, 1975; Буцкая, 1955; Сакун, Буцкая, 1963; Трусов, 1964; Алтуфьев и др., 1986; Илясова, 1988, 1989, 1995; Багров и др., 2020]. Критерием периода созревания служат волны сперматогенеза, которые проходят с последовательным протеканием от III до VI стадий зрелости семенников в основу, которых положены цитологические критерии. Развитие половых клеток, состояние семенников и всего организма в целом взаимосвязаны и находятся во взаимозависимости от абиотических факторов среды – в частности, температуры воды и общей суммы тепла в градусо-днях. Познание закономерностей развития половых клеток, продолжительности функционирования половых желез, ритмов размножения, обеспечат пути управления нерестом при искусственном воспроизводстве для целенаправленного формирования маточных стад. В статье представлен закономерный ход сперматогенеза у зрелых самцов осетровых рыб на примере сибирского осетра ленской популяции с учетом особенностей развития половых клеток в условиях индустриального предприятия с годовой суммой тепла 5600 градусо-дней. Ключевые слова: сибирский осетр, сперматогенез, сумма тепла, закономерности, градусо-дни, стадия зрелости МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ Для анализа развития половых клеток у самцов сибирского осетра ленской популяции использовали гистологические методы [Ромейс, 1953; Микодина и др., 2009]. Рыба выращивалась на индустриальном предприятии отдела «Конаковский» Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ»). От 50-ти впервые созревших самцов сибирского осетра генерации 2017 г. в возрасте 1400 суток брались пробы гонад методом биопсии, с последующей фиксацией их в 70%-ном спирте. После обезвоживания готовили срезы толщиной 7-8 мкм на микротоме РОТМИК-2. Освобожденные от парафина срезы окрашивали железным гематоксилином по Гейденгайну с последующим обезвоживанием и заключением в бальзам. При описании стадий зрелости гонад и развития половых клеток использовали универсальную шкалу [Сакун, Буцкая, 1963; Трусов, 1964]. Изучение и анализ гистологических срезов осуществляли с использованием микроскопа микромед-2 и цифровой камеры для микроскопа серии ToupCam. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ В индустриальном предприятии отдела «Конаковский» использовались впервые созревшие 4-х летние самцы сибирского осетра при общей сумме тепла 21483 градусо-дней со средней температурой 15,3 °С и средней массе тела 5,19 кг. Исследования касались изучения и анализа хода сперматогенеза с учетом особенностей развития половых клеток в индустриальных условиях с заданным температурным режимом, с годовой суммой тепла 5600 градусо-дней. Различают четыре периода сперматогенеза: размножение сперматогоний, рост, деления созревания и спермиогенез [Сакун, Буцкая, 1963; Трусов, 1964]. Первыми признаками дифференцировки по полу у сибирского осетра генерации 2017 г. на втором году жизни было анатомическое формирование соматических тканей гонады по форме и строению единичных первичных половых клеток – сперматогоний, которые могут быть критериями ранней половой диагностики пола (рисунок 1). <img width="800" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/6be/1.JPG" height="275"> Рисунок 1 - Анатомическая дифференцировка пола у самцов сибирского осетра: А. 1) гонада; 2) рудимент яичника; 3) жировое тело. Ув.ок.10× об.4× Б. 1) фрагмент гонады в I стадии зрелости: 4) первичные сперматогонии; 5) соединительнотканные клетки гонады. Ув.ок.10× об.40× Цитологическая дифференцировка пола у самцов происходит в половозрелом состоянии в полностью сформированной железе [Сакун, Буцкая, 1963, Персов, 1975]. Началом вторичного полового признака, цитологической дифференцировки пола в семенниках, являются волны сперматогенеза, которые в период созревания происходят асинхронно и характеризуются интенсивным протеканием III, III-IV, IV, IV-V, V, V-VI и VI стадий зрелости. Определение пола у самцов рыб носит генотипический характер и состоит из нескольких этапов. Первый этап волны сперматогенеза – митотические деления сперматогоний до сперматоцитов I порядка размером от 7,0 до 5,0 мкм. Второй этап - мейоз, это два деления созревания, ведущие к уменьшению вдвое числа хромосом - сперматоциты II порядка размером от 3,6 до 3,2 мкм и сперматиды с гаплоидным набором хромосом размером от 2,7 до 2,3 мкм. Асинхронный характер волны сперматогенеза III стадии зрелости семенника показан на рисунке 2. <img width="450" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/f9d/2.JPG" height="337"> Рисунок 2 - фрагменты семенника III стадии зрелости у самцов в трехлетнем возрасте, что соответствует цитологической дифференцировке пола, в цистах находятся: 1) сперматоциты I порядка; 2) сперматоциты II порядка; 3) сперматиды; 4) фолликулярный эпителий цист. Ув.ок.10× об.40× Третий этап - спермиогенез, характеризуется как IV стадии зрелости семенника, в ходе которого сперматиды преобразуются в сперматозоиды. Цисты со зрелыми сперматозоидами показаны на рисунке 3. Сформированные сперматозоиды выходят из цист в семенные канальцы и направляются к общему выводному протоку, расположенному в верхней части семенника. Присутствие цист со зрелыми сперматозоидами и пустыми от спермы характеризует переход семенников в IV-V стадию зрелости (рисунок 4). <img width="450" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/af9/3.JPG" height="339"> Рисунок 3 - Фрагмент семенника IV стадии зрелости: 1) цисты со зрелыми сперматозоидами; 2) фолликулярный эпителий цист, приобретающий кубическую форму; 3) первичные сперматогонии. Ув.ок.10× об.40× <img width="450" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/192/4.JPG" height="336"> Рисунок 4 - Фрагмент семенника IV-V - стадий зрелости: 1) цисты со зрелыми сперматозоидами; 2) опустевшие цисты; 3) выход сперматозоидов из цист; 4) зрелые сперматозоиды в выводном протоке Ув.ок.10× об.10× Зрелые сперматозоиды палочковидной формы в выводном протоке характеризуют V стадию зрелости, рисунок 5. <img width="450" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/2bb/5.JPG" height="337"> Рисунок 5 – Зрелые сперматозоиды палочковидной формы. Ув.ок.10× об.40× Одновременно с выходом сперматозоидов в выводной проток в цистах идет процесс резорбции перезревшей спермы, который осуществляется клетками фолликулярного эпителия [Кулаев, 1927; Персов, 1947; Сакун, 1954; Буцкая, 1959; Серебрякова, 1964]. Показателем процессов резорбции в семенниках, уже IV - VI стадии зрелости, является присутствие в цистах наряду с остаточными сперматозоидами и цист с неиспользованными сперматозоидами, слившиеся в сплошные непросвечивающие массы (рисунок 6). После нереста семенники вступают в VI стадию зрелости (выбой). Опустошение семенных канальцев приводит семенники в дряблое состояние. В цистах остатки сперматозоидов подвергаются резорбции как регулирующим, естественным процессом в протекании половых циклов у рыб. Стенки фолликулярной оболочки, обеспечивающие резорбцию, приобретают кубическую форму, а внутри фолликулярных клеток можно различать фагоцитированные головки сперматозоидов (рисунок 7). <img width="450" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/e41/6.JPG" height="335"> Рисунок 6 - Фрагмент семенника IV-VI стадии зрелости: 1) цисты со остатками резорбирующихся сперматозоидов; 2) массы слившихся резорбирующихся сперматозоидов; 3) опустевшие цисты; 4) фолликулярный эпителий; 5) клетки фолликулярной оболочки. Ув.ок.10× об.40× <img width="450" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/d61/7.JPG" height="338"> Рисунок 7 - Фрагмент семенника VI стадии зрелости (выбой): 1) цисты с остатками резорбирующихся сперматозоидов; 2) опустевшие цисты; 3) стенки фолликулярной оболочки цист со фагоцитированными головками сперматозоидов. Ув.ок.10× об.40× В выводном протоке неиспользованные сперматозоиды также подвергаются резорбции, сливаясь в сплошные непросвечивающие массы (рисунок 8). <img width="450" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/e77/8.JPG" height="338"> Рисунок 8 - Фрагмент выводного протока VI стадии зрелости: 1) резорбция неиспользованной спермы. Ув.ок.10× об.40× После выбоя семенники постепенно переходят в VI - начало II-ой стадии зрелости, где происходит резорбция остатков неиспользованных сперматозоидов и формирование цист, содержащих первичные сперматогонии новой генерации половых клеток следующего полового цикла в будущем нерестовом сезоне (рисунок 9). <img width="450" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/a04/9.JPG" height="336"> Рисунок 9 - Фрагмент семенника VI - начало II стадии зрелости: 1) цисты с остатками резорбирующихся сперматозоидов; 2) опустевшие цисты; 3) первичные сперматогонии; 4) фолликулярная оболочка. Ув.ок.10× об.40× ЗАКЛЮЧЕНИЕ Процесс сперматогенеза в индустриальных условиях показан у впервые созревших самцов сибирского осетра ленской популяции в возрасте 1400 суток, для которого потребовалось 21483 градусо-дней. Цитологическая дифференцировка пола у самцов происходит в 4-летнем возрасте в полностью сформированной железе. Созревание половых клеток у самцов осетровых рыб обеспечивают волны сперматогенеза, характеризующиеся интенсивным протеканием от III до VI стадий зрелости семенников. Определение пола у самцов рыб носит генотипический характер и состоит из нескольких этапов. Первый этап волны сперматогенеза – митотические деления сперматогоний до сперматоцитов I порядка, второй этап - мейоз, это 2 деления созревания, ведущие к уменьшению вдвое числа хромосом - сперматоциты II порядка и сперматиды с гаплоидным набором хромосом. Третий этап - спермиогенез, в ходе которого сперматиды преобразуются в сперматозоиды, характеризующие IV стадии зрелости семенника. Сформированные сперматозоиды выходят из цист в семенные канальцы и направляются к общему выводному протоку, расположенному в верхней части семенника для последующего выхода их через генитальное отверстие. Текучесть половых продуктов характеризуется как V стадия зрелости семенников. После вытекания спермы из семенных канальцев наступает посленерестовое состояние, VI стадия зрелости, при которой неиспользованные сперматозоиды перезревают и подвергаются естественному процессу резорбции, порой сливаясь в сплошную однородную массу. В гонадах у отнерестившихся самцов остается небольшое количество цист, которые заполнены зрелыми сперматозоидами, указывающих на возможность повторного получения спермы. В связи с этим использование самцов в нерестовом сезоне может быть неоднократным, но кратковременным в зависимости от полового цикла самок. Для осетровых рыб характерен единовременный тип икрометания, поэтому волна сперматогенеза закономерно носит сезонный характер, она всегда взаимосвязана с протеканием оогенеза, обеспечивая целенаправленное формирование искусственно создаваемых маточных стад. При контроле степени половой зрелости у самцов в преднерестовый и нерестовый периоды во времени в условиях индустриального предприятия с годовой суммой тепла 5600 градусо-дней открываются пути управления закономерным ходом сперматогенеза в годичном половом цикле. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ Алтуфьев Ю.В., Романов А.А., Долгопол А.П. Методическое пособие к изучению развития половых желез у рыб (на примере семейства Acipenseridae – осетровых). - Астрахань: Астраханский технический институт рыбной промышленности и хозяйства, 1986. – 57 с. Багров А.М., Илясова В.А., Мельченков Е.А., Калмыкова В.В. Новые объекты акклиматизации в пресноводной аквакультуре: гаметогенез, половые циклы, рыбоводное освоение // Рыбное хозяйство. – 2020. - №3. – С. 82-87. Буцкая Н.А. Об особенностях функции семенников у рыб различными типами нереста // Докл. АН СССР. – 1955. - Т. 100, №4. – С. 809-812. Буцкая Н.А. Фолликулярный эпителий семенников и особенности его функции, связанные с типом нереста (на примере окуневых) // Зоол. журн. - 1959. - Т. 38, вып. 12. - С.1844-1849. Илясова В.А. Гаметогенез и половые циклы веслоноса. Сообщение 2. Сперматогенез // Сб. науч. тр. / Растительноядные рыбы и новые объекты рыбоводства и акклиматизации. - М.: ВНИИПРХ, 1988. - Вып. 54. - С. 35-39. Илясова В.А. Гаметогенез и половые циклы веслоноса (Роlyodontidae): автореф. дисс. … канд. биол. наук. - М., 1989. - 24 с. Илясова В.А. Гаметогенез и половые циклы новых объектов рыбоводства и акклиматизации в связи с искусственным воспроизводством: автореф. дисс. … докт. биол. наук. - М., 1995. - 48 с. Кулаев С.И. Наблюдения над изменением семенников речного окуня в течении годового цикла // Русский зоол. журн. - 1927. - Вып.3. – С. 15-53. Микодина Е.В., Седова М.А., Чмилевский Д.А., Микулин А.Е., Пьянова С.В., Полуэктова Щ.Г. Гистология для ихтиологов. Опыт и советы. - М.: Изд-во ВНИРО, 2009. - 112 с. Персов Г.М. Семенник севрюги в период нерестовой миграции, нереста и поката // Тр. лаб. основ рыбоводства. - 1947. - Т.1. - С. 177-185. Персов Г.М. Дифференцировка пола у рыб. – Л.: ЛГУ, 1975. – 147 с. Ромейс Б. Микроскопическая техника. - М.: Иностранная литература, 1953. - 648 с. Сакун О.Ф. Анализ функции половых желез у самцов и самок рыб в связи с характером нереста (на примере сырти Vimba vimba) // ДАН СССР. - 1954. - Т. 98, №3. – С. 505-507. Сакун О.Ф., Буцкая Н.А. Определение стадий зрелости и изучение половых циклов рыб. - М.: Пищевая промышленность, 1963. - 36 с. Серебрякова Е.В. Исследование гонад производителей осетра Волгоградского водохранилища // Труды ВНИРО. Осетровые южных морей Советского Союза. - 1964. - Т. 56, сб.3. – С. 117-130. Трусов В.З. Некоторые особенности созревания и шкала зрелости половых желез осетра // Труды ВНИРО. – 1964. - Т. 56, сб. 3. - С. 69-78. Резюме В статье представлен закономерный ход сперматогенеза у самцов сибирского осетра ленской популяции с учетом особенностей развития половых клеток в условиях индустриального предприятия с годовой суммой тепла 5600 градусо-дней. Созрели самцы в возрасте 1400 суток, на первое созревание потребовалось 21483 градусо-дней со средней температурой 15,3 °С и средней массе тела 5,19 кг. Цитологическая дифференцировка пола происходит в половозрелом состоянии, которое обеспечивают волны сперматогенеза, которые характеризуются интенсивным протеканием от III до VI стадий зрелости семенников. При VI стадии зрелости неиспользованные сперматозоиды перезревают и подвергаются естественному процессу резорбции. При контроле степени половой зрелости у самцов в преднерестовый и нерестовый периоды во времени в условиях индустриального предприятия с годовой суммой тепла 5600 градусо-дней открываются пути управления закономерным ходом сперматогенеза в годичном половом цикле. Библ. - 16, табл. - , рис. - 9. <hr> Подготовили: лаборатория осетроводства и акклиматизации Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

20 января 2022

Так ли вредна продукция аквакультуры?

На сегодняшний день существует расхожее мнение потребителей о том, что рыба, выращенная в созданных человеком условиях, менее полезна, чем выросшая в природе. Поскольку в процессе ее кормления используются антибиотики и ростовые добавки (гормоны), она может накапливать в мясе вредные для человека вещества. Помимо этого, считается, что такая рыба имеет неприятный запах и вкус. Несомненно, вкус продукции аквакультуры, особенно той, которая выращена с применением комбикормов, будет иным, чем у диких рыб. Точно так же, как и продукции животноводства и птицеводства; она также отличается по вкусу от диких животных. Однако пищевая ценность дикой рыбы и продукции аквакультуры не будет различаться. Неприятный запах появляется у рыбы, если она выращивалась в неблагоприятной среде. И не важно, кем именно создана эта среда - природой или человеком. Мясо промысловой рыбы будет иметь неприятный вкус и запах, если в месте ее обитания был выброс загрязняющих веществ – нефти или других химических продуктов. Если содержать рыбу в воде с плохими показателями качества, то безусловно в ней может обнаружиться неприятный запах гнили, ила, водорослей. При выращивании рыбы в условиях аквакультуры специалисты стремятся создавать максимально качественные и благоприятные условия, при которых рыба будет активно расти. Ведется постоянный контроль за условиями выращивания, в частности контроль за качеством воды и безопасностью используемых кормов. Низкое качество воды, равно как и использование кормов низкого качества приводит к снижению темпа роста рыб, повышенной гибели, сокращению объемов производимой продукции. Выращивание рыбы в таких условиях нецелесообразно. При кормлении рыбы в условиях аквакультуры используются полноценные сбалансированные комбикорма. При производстве кормов тщательно проверяется качество и безопасность компонентов корма, так как к производимым кормам для рыб предъявляются высокие требования в отношении их продукционных свойств и безопасности. Компоненты в рецептах подбираются так, чтобы состав корма был максимально сбалансирован. Основу питательности кормов для рыб составляют содержание в них белка, жира (в том числе ценных полиненасыщенных жирных кислот (омега-3, омега-6)), углеводов, витаминов и минеральных элементов. Состав компонентов подбирается таким образом, чтобы готовый комбикорм удовлетворял потребность рыб в питательных веществах. Рыба на таких кормах лучше растет, у нее хорошее физиологическое состояние, она более устойчива к болезням. Соответственно рыба, выращенная в условиях аквакультуры имеет высокую питательную ценность и не менее полезна для человека, чем дикая рыба. Применение ростостимулирующих кормовых добавок и ветеринарных препаратов в аквакультуре менее распространено, чем в животноводстве или птицеводстве. При правильном технологическом режиме выращивания и сбалансированном питании нет смысла вводить дополнительные ростостимулирующие добавки, рыба и так будет активно расти. Конечно, при возникновении бактериальных заболеваний по назначению ветеринарных специалистов применяются антибиотики. Однако на сегодняшний день всё большее внимание уделяется профилактическим средствам – пробиотикам. Применение антибактериальных препаратов ограничено 30-ти дневным сроком до начала продажи такой рыбы. При проверке продукции перед продажей норма содержания лечебных препаратов тщательно контролируется, поэтому люди получат рыбу полностью безопасную для здоровья человека. С позиции обеспечения безопасности конечного продукта, аквакультура предоставляет более широкие возможности по сравнению с выловом в природных условиях. Весь процесс выращивания объектов аквакультуры находится под надзором ветеринарных специалистов хозяйства и контролирующих органов Минсельхоза, которые несут ответственность, в том числе, и за пищевую безопасность продукции. <img width="500" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/d1b/20.01.2022%201.jpg" height="282"> <img width="453" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/8f8/20.01.2022%202.jpg" height="282"> <hr> Подготовлено: лабораторией физиологии и кормления рыб Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

10 января 2022

Санитарно-эпидемиологическая обстановка в водоемах Московской области

В 2021 г. проведен мониторинг санитарно-эпизоотического состояния водоемов Московской области – реки Москва, Озернинского, Можайского и Рузского водохранилищ. Согласно результатам бактериологической оценки качества воды, значение общего микробного числа (ОМЧ) с мая по октябрь варьировало и составляло в водоемах Московской области – от 120 до 16820 КОЕ/мл, в реке Москва – от 420 до 9180 КОЕ/мл. Микробиоценоз был представлен аэромонадами, ацинетобактерами, моракселлами, шеванеллами, бактериями группы кишечной палочки, псевдомонадами, бациллами, стафилококками, энтерококками, цитробактером, миксобактериями, флавобактериями, плесневыми грибами, а также сапрофитной микрофлорой (таблица). Таблица – Показатели бактериологического загрязнения воды в весенне-летний период 2021 г. в реке Москва и водохранилищах Московской области <table style="width: 700px;" cellspacing="1" cellpadding="1" border="1" align="center"> <tbody> <tr> <td rowspan="2"> Водные объекты </td> <td rowspan="2"> Точки отбора проб </td> <td colspan="2"> ОМЧ, КОЕ/мл </td> <td rowspan="2"> Микробиоценоз </td> </tr> <tr> <td> Весна </td> <td> Лето </td> </tr> <tr> <td colspan="8"> Московская область и г. Москва </td> </tr> <tr> <td rowspan="7"> р. Москва </td> <td> устье р. Руза </td> <td> 3420 </td> <td> 5620 </td> <td rowspan="7"> Aeromonas sobria, Aeromonas caviae, Aeromonas eucrenophila, Aeromonas sp.1, Aeromonas sp.2, Aeromonas sp.3, Aeromonas veronii, Aeromonas schubertii, Aeromonas sp.7, Aeromonas sp.13, Moraxella sp., Acinetobacter calcoaceticus, Acinetobacter baumannii, Pseudomonas sp., БГКП, Bacillus sp., Alcaligenes sp., Citrobacter sp., Staphylococcus sp., энтерококк, плесневые грибы, сапрофиты </td> </tr> <tr> <td> Рублевский гидроузел </td> <td> 5100 </td> <td> 880 </td> </tr> <tr> <td> район Строгино </td> <td> 420 </td> <td> 500 </td> </tr> <tr> <td> Воробьевы горы </td> <td> 6620 </td> <td> 5200 </td> </tr> <tr> <td> Нагатинский рукав </td> <td> - </td> <td> 5500 </td> </tr> <tr> <td> устье р. Пехорка </td> <td> 8640 </td> <td> 9180 </td> </tr> <tr> <td> пос. Фаустово </td> <td> 2960 </td> <td> 7620 </td> </tr> <tr> <td rowspan="3" colspan="1"> Озернинское водохранилище </td> <td colspan="1"> вход в залив по р. Вейна </td> <td colspan="1"> 120 </td> <td colspan="1"> 1620 </td> <td rowspan="3" colspan="1"> Aeromonas sobria, Aeromonas sp.2, Pseudomonas sp., Acinetobacter calcoaceticus, Moraxella sp., БГКП, Bacillus sp., Staphylococcus sp., миксобактерии, сапрофиты </td> </tr> <tr> <td colspan="1"> район д. Волынщино </td> <td colspan="1"> 140 </td> <td colspan="1"> 580 </td> </tr> <tr> <td colspan="1"> залив у д. Косино </td> <td colspan="1"> 2600 </td> <td colspan="1"> 480 </td> </tr> <tr> <td rowspan="3" colspan="1"> Рузское водохранилище </td> <td colspan="1"> р-н д. Солодово </td> <td colspan="1"> 16820 </td> <td colspan="1"> - </td> <td rowspan="3" colspan="1"> Aeromonas caviae, Aeromonas hydrophila, Aeromonas eucrenophila, Pseudomonas sp., Bacillus sp., Shewanella putrefaciens, Moraxella sp., Acinetobacter calcoaceticus, Acinetobacter baumannii, БГКП, Staphylococcus sp. </td> </tr> <tr> <td colspan="1"> вход в залив по р. Педня </td> <td colspan="1"> 140 </td> <td colspan="1"> - </td> </tr> <tr> <td colspan="1"> плотина (у ДО «Лужки») </td> <td colspan="1"> 540 </td> <td colspan="1"> - </td> </tr> <tr> <td rowspan="3" colspan="1"> Можайское водохранилище </td> <td colspan="1"> район д. Хотилово </td> <td colspan="1"> 2000 </td> <td colspan="1"> 2540 </td> <td rowspan="3" colspan="1"> Aeromonas caviae, Aeromonas sp.13, Pseudomonas sp., Acinetobacter calcoaceticus, Acinetobacter baumannii, БГКП, Bacillus sp., миксобактерии, сапрофиты </td> </tr> <tr> <td colspan="1"> залив у д. Блазново </td> <td colspan="1"> 1800 </td> <td colspan="1"> 13320 </td> </tr> </tbody> </table> Бактерии, выделенные из воды в обследованных водоемов, имеют не только эпизоотическое (т.е. опасные для гидробионтов), но и эпидемиологическое значение (опасные для человека и теплокровных животных). Дана оценка уровня заражения паразитами основных видов рыб, обитающих в данных водоемах: щука, судак, окунь, лещ, густера, плотва. В весенний период особенностью в обследованных водоемах Московской области является обнаружения практически у всех обследованных рыб заражения моногенеями из р. Dactylogyrus (дактилогирусами), которые паразитировали на жабрах рыб. На протяжении весенне-летнее-осеннего периода в Озернинском и Можайском водохранилищах у судака отмечали высокое заражение трематодами – ихтикотилюридами (Ichthyocotylurus platycephalus, I. pileatus, I. variegatus). Цисты с личинками трематод локализовались в полости тела, чаще всего на почках. Уровень заражения составлял до 100 гельминтов на рыбу. У окуня в этих водохранилищах в печени обнаружены цисты с личинками цестоды Triaenophorus nodulosus: в Можайском водохранилище уровень заражения составлял до 10 паразитов на рыбу, в Озернинском водохранилище до 3 паразитов на рыбу. У карповых рыб (леща, густеры и плотвы) отмечено не высокое заражение (от 2 до 15 цист на рыбу) личинками трематоды Posthodiplostomum cuticola, вызывающие постодиплостомоз (чернопятнистое заболевание) при внешнем осмотре на теле рыб видны черные пятна - пигментированные цисты с паразитами (рис.1). <img src="/upload/iblock/1b1/rutilus.jpg" width="449" height="337"> Рис. 1 – Заражение плотвы личинками трематод - постодиплостомами ВНИМАНИЕ БИОГЕЛЬМИНТОЗ!!! Выявлено массовое заражение окуня личинками трематод Apophallus muehlingi (рис. 2) в реке Москва при 100% встречаемости, ср. И.И. 4123 экз./рыбу, А.И.И. от 416-16061 экз./рыбу. Apophallus muehlingi является одним из потенциальных возбудителей апофаллеза человека. Гельминт в половозрелом состоянии паразитирует в тонком отделе кишечника плотоядных млекопитающих, а также некоторых рыбоядных птиц и человека. В соответствии с Техническим регламентом Евразийского экономического союза «О безопасности рыбы и рыбной продукции» (ТР ЕАЭС 040/2016) не допускается присутствие личинок апофаллюсов в рыбной продукции. <img src="/upload/iblock/8d0/perca.jpg" width="580" height="330"> Рис. 2 – Зараженные апофаллюсами окуни из р. Москва Личинки трематод заключены внутри шаровидных или овальных цист размером 0,20- 0,29 х 0,14-0,26 мм. Стенка цисты двухслойна, вокруг откладывается черный пигмент, что делает цисты хорошо заметными, при локализации в мышцах пигмент откладывается не всегда. Локализация паразита в лучах плавников (рис. 3) и хвоста, в мышцах туловища. Иногда цисты ошибочно принимают за личинки трематоды Posthodiplostomum cuticola. <img src="/upload/iblock/03f/plavnik.jpg" width="517" height="388"> Рис. 3 – Грудной плавник - с цистами трематод в лучах При употреблении в пищу окуней с клиническими признаками апофаллеза необходимо тщательно подвергать термической обработки. В связи обнаруженным бактериальным загрязнением водоемов существует вероятность контаминации бактериями внутренних органов и мышечной ткани рыб и обнаружением потенциально опасного гельминта из р. Apophallus у окуней в реке Москва необходимо соблюдать следующие профилактические мероприятия: - исключение из пищи строганины, сырой, полусырой, малосоленой и недостаточно провяленной и термически плохо обработанной рыбы; - защита водоемов от загрязнения яйцами эпидемиологически значимых гельминтов, для чего необходима эффективная работа очистных сооружений, очистка дворовых уборных в сельской местности; сточные воды с животноводческих комплексов, звероферм не должны попадать в водоемы; - информирование населения о методах обработки рыбы и санитарно-гигиенических правилах. <hr> <div> Источник: лаборатория ихтиопатологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ»). </div> <div> Фото: лаборатория ихтиопатологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ»). </div> <style> table { margin: auto; /* Выравниваем таблицу по центру окна */ } </style>

Читать

18 декабря 2021

Содержание свинца в воде

Свинец (Pb) – это химический элемент, относится к IV группе периодической системе элементов Д. И. Менделеева, его атомный номер 82. Является ковким, сравнительно легкоплавким, не способным проводить электричество металлом. В воде свинец относится к классу токсичных тяжелых металлов. До конца прошлого века свинец использовался в составе при изготовлении труб, а также сантехники. Распространенной причиной наличия свинца в воде являются трубы, по которым она подает потребителям. В основном свинец в чистом виде встречается крайне редко. Зачастую он содержится в рудах и минералах, также способен вымывается и выветривается из горных пород. Загрязнение свинцом водных объектов обусловлено в основном антропогенной деятельностью. Постепенное накапливание свинца в организме человека приводит к серьезным заболеваниям. В случае отравления, проявляются следующие симптомы: слабость, головные боли, бессонница, повышенная раздражительность, головокружение, тошнота. Свинец может повредить нервную систему, даже низкое его содержание, приводит к повышенному давлению, анемии и повреждению внутренних органов. Химический анализ воды в лабораторных условиях способен выявить содержание концентрации свинца. На сегодняшний день современные технологии позволяют избавиться от загрязняющего вещества путем водоочистки с использованием систем фильтрации. <img width="500" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/7e2/28.11.2021.jpg" height="316"> <hr> Источник: Здрок А.В., начальник Отдела экологической токсикологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

28 ноября 2021

Процесс развития воспроизводительной системы у самцов осетровых рыб в индустриальных условиях на примере стерляди волжской популяции

В.А. Илясова1, Е.А. Мельченков1, В.В. Калмыкова1, Е.А. Данилова2, Арчибасов1, А.П. Воробьев1 1 Филиал по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ»), Московская область, пос. Рыбное, Россия 2 Дмитровский рыбохозяйственный технологический институт (филиал) ФГБОУ ВО «АГТУ», Московская область, пос. Рыбное, Россия E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a> Аннотация. В статье приведены особенности процесса развития воспроизводительной системы у самцов осетровых рыб на примере стерляди волжской популяции (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) в условиях индустриального предприятия отдела «Конаковский» филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ»). В результате выполненных исследований установлено, что I-II стадии зрелости гонад заканчиваются в возрасте 2 года при общей сумме тепла не менее 11 тыс. градусо-дней. Цитологическая дифференцировка пола происходит в сформированной железе и начинается в трехлетнем возрасте при сумме тепла более 15 тыс. градусо-дней. Критерием начала цитологической дифференцировки служат волны сперматогенеза, которые характеризуются интенсивным развитием III-VI стадий зрелости семенников. Для осетровых рыб характерен единовременный тип икрометания, поэтому волна сперматогенеза носит сезонный характер, что указывает на ограниченное во времени их участие в нерестовом сезоне в рыбоводных хозяйствах с естественной температурой воды. Знания особенностей процесса развития воспроизводительной системы у самцов осетровых рыб, рассмотренных на примере стерляди волжской популяции в индустриальных условиях, позволяют совершенствовать технологические приемы управления процессами сперматогенеза в условиях индустриальных хозяйств, обеспечивая получение половых продуктов высокого рыбоводного качества в нужные для предприятия сроки. Ориентируясь по набранной производителями (самцами) стерляди общей сумме тепла можно синхронизировать рыбоводные процессы (циклы) при получении половых продуктов от самок стерляди и обеспечивать в условиях хозяйств с регулируемой температурой воды (в течение календарного года) неоднократное получение от одних и тех же самцов половых продуктов. Ключевые слова: осетровые рыбы; стерлядь; сперматогенез; стадия зрелости; индустриальные условия. Development of industrial scale reproduction in male sturgeons using volga sterlet population as an example V.A. Ilyasova1, E.A. Melchenkov1, V.V. Kalmykova1, E.A. Danilova2, A.A. Archibasov1, A.P. Vorob'yov1 1Branch for Freshwater Fishery of Federal State Budgetary Scientific Institution “Russian Federation Research Institute of Fishery and Oceanography”, Moscow Region, Rybnoye, Russia 2Dmitrov Institute of Fishery Technology (branch) of the FSBEI of Higher Education Astrakhan State Technical University, Moscow Region, Rybnoye, Russia E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a> <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru"></a> <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru"></a> Abstract. The article describes special aspects of reproduction system development in male sturgeons using Volga sterlet population as an example (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) within industrial enterprise of the Konakovskiy coarse fishery branch of the FSBSI Russian Federation Research Institute Of Fishery and Oceanography (VNIRO). The study results showed that gonad maturation stage I–II is completed at the age of 2 years if the total thermal constant is at least 11 thousand degree-days. Cytological sex differentiation occurs in the formed gland and begins at the age of three years if the thermal constant is more than 15 thousand degree-days. The onset of cytological differentiation can be determined by spermatogenesis waves characterised by intensive development of the male gonad III-VI maturity stages. Semelparity is typical for sturgeons, thus, the wave of spermatogenesis is seasonal, which indicates their limited participation in the spawning season at fish farms with natural water temperature. The knowledge of reproductive system development aspects in male sturgeons as illustrated by Volga sterlet population in the setting of industrial enterprise allows improving the practice of spermatogenesis process management at industrial farms ensuring the production of reproductive products of high fish-breeding quality at the time required for the enterprise. Considering the thermal constants made up by sterlet (males) spawners, it is possible to synchronise fish breeding processes (cycles) when receiving reproductive products from female sterlet and ensure repeated production of reproductive products from the same males in the settings of farms with controlled water temperature (throughout a calendar year). Keywords: Sturgeon; sterlet; spermatogenesis; stage of maturity; industrial conditions. ВВЕДЕНИЕ Расширение масштабов формирования маточных стад осетровых рыб, в том числе одного из самых массовых видов, культивируемых в индустриальной аквакультуре России – стерляди Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758, требует непрерывного совершенствования технологий воспроизводства и разработки технологических приемов управления процессами сперматогенеза в условиях тепловодных хозяйств. С этой целью необходима полная информация о протекании процессов сперматогенеза у рыб и их зависимость от абиотических и биотических факторов среды [3-5, 14-17]. На ранних, I-II стадиях зрелости семенники анатомически сформированы, из половых клеток присутствуют первичные и в состоянии митотического размножения сперматогонии, а дифференцировка пола у рыб происходит в сформированной железе при переходе митотического цикла развития к мейотическому, что характерно для начала III стадии зрелости семенников [9, 11]. На скорость развития половых клеток в гаметогенезе у рыб существенное влияние оказывает температурный фактор и замедление темпа развития половых клеток, как правило, приходится, на II стадию зрелости семенника и на начало периода дифференцировки пола, которая характеризуется как попытка к сперматогенезу [6, 12, 15, 16]. Развитие воспроизводительной системы у самцов в разных экологических условиях - естественных, комбинированных и индустриальных влияет на репродуктивные качества осетровых рыб, показывая изменчивость в продолжительности хода созревания половых клеток в каждом отдельном случае [7, 10, 19]. Анализ особенностей процесса сперматогенеза и ритмов размножения у осетровых рыб покажет пути управления в искусственных условиях хозяйств с регулируемой температурой воды в необходимые для рыбоводных предприятий сроки получения половых продуктов. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ Рыба выращивалась в индустриальном предприятии отдела «Конаковский» Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ») со среднегодовой суммой тепла более 5600 градусо-дней. Для исследований брались различные группы рыб в возрасте от сеголетков до четырехгодовиков. Для анализа развития половых клеток у самцов стерляди волжской популяции использовались гистологические методы как высокоинформативные, чувствительные и фотодокументальные [8, 13]. Пробы гонад, не менее 5 шт. каждого возраста, фиксировали в 70%-ном спирте. После обезвоживания готовили парафиновые срезы толщиной 7-8 мкм на микротоме РОТМИК-2. Освобожденные от парафина срезы окрашивали железным гематоксилином по Гейденгайну с последующим обезвоживанием и заключением в бальзам [13]. Изучение и анализ 429-ти гистологических срезов фрагментов гонад осуществляли с использованием микроскопа Микромед-2 и цифровой камеры для микроскопа серии ToupCam. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ Семенники у осетровых рыб по строению относятся к циприноидному типу, где основным структурным элементом является система семенных канальцев, называемых цистами. Семенные канальцы берут свое начало в верхней части гонады. Мелкие, извитые канальцы постепенно объединяются в древовидную сеть, которая направляется к общему выводному протоку, расположенному в медиальной (серединной) части семенника [2]. Сперматогенез распадается на 4 стадии развития половых клеток: размножение сперматогоний, роста, созревания и формирования сперматозоидов (спермиогенез) [1, 14, 17]. Процессы развития половых клеток в семенниках и продолжительность стадий зрелости проанализированы от молоди до половозрелого состояния в возрасте 3 года при общей сумме тепла 16800 градусо-дней. У сеголетков стерляди гонады уже сформированы и выглядят в виде двух нитевидных тяжей (сумма тепла 4500 градусо-дней). На этом этапе развития появляются признаки половой дифференцировки морфологического характера (рис. 1). Изначально, в строме гонады присутствуют единичные первичные сперматогонии – светлые клетки размером от 8,5 до 10 мкм с широким слоем цитоплазмы и отчетливыми, крупными ядрами (рис. 2). <img width="700" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/af8/1.JPG" height="427"> В годовалом возрасте гонада у самцов подвешена на одном мезорхии, что свидетельствует о прохождении анатомической дифференцировки пола (рис. 3). В семенниках идет формирование канальцев и размножение сперматогоний, окруженных тонким слоем соединительной ткани. Каждый первичный сперматогоний подвергается серии митотических делений, что является важным источником пополнения запаса половых клеток, вторичных сперматогоний размером от 6,8 до 7,5 мкм, которые формируются по краям цист с небольшим количеством цитоплазмы и с крупными базофильными ядрами (рис. 4). <img width="700" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/810/2.JPG" height="481"> Таким образом, в цистах у годовалых самцов при сумме тепла 5700 градусо-дней происходят многократные митотические деления половых клеток – сперматогоний, которое соответствует I-II стадиям зрелости гонад. Заканчивается этот процесс в двухгодовалом возрасте (сумма тепла 11300 градусо-дней). У некоторых особей в семенниках II стадии зрелости наблюдается так называемая попытка к волне сперматогенеза (рис. 5), рост вторичных сперматогоний и превращение их в сперматоциты I порядка, которые при отсутствии естественной гормональной поддержки в дальнейшем подвергаются резорбции [15, 16]. <img width="450" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/eaa/3.JPG" height="480"> На III-IV стадиях зрелости в возрасте трех лет при общей сумме тепла 15200 градусо-дней семенные канальцы заполнены цистами с половыми клетками различных этапов сперматогенеза. Цитологическая дифференцировка пола происходит в сформированной железе. Показателем начала цитологической дифференцировки служат волны сперматогенеза. В цистах вторичные сперматогонии вступают в период роста и превращаются в сперматоциты I порядка. Сам период созревания начинается в хорошо развитых половых железах в трехгодовалом возрасте. Для гонад в этот период созревания характерны III, III-IV, IV, IV-V, V, V-VI и VI стадии зрелости. В цистах присутствует весь комплекс половых клеток. Волна сперматогенеза совершается асинхронно, происходит два последовательных мейотических деления половых клеток, которые хорошо различаются по размерам. В результате двух делений мейоза из каждого сперматоцита I порядка, размером от 5,0 до 6,8 мкм, образуется два сперматоцита II порядка, размер которых от 3,2 до 3,6 мкм, а потом – 4 сперматиды с гаплоидным набором хромосом и размером от 2,2 до 2,6 мкм. Активные процессы сперматогенеза и спермиогенеза характеризуются как IV стадия зрелости. Семенники на этой стадии развития имеют крупные парные железы белого цвета, они заполняют почти всю полость тела. Далее сперматиды вступают в период формирования зрелых сперматозоидов. Процесс волны сперматогенеза представлен на рисунках 6, 7. <img width="700" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/395/4.JPG" height="461"> <img width="700" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/d1d/5.JPG" height="381"> Сформированные сперматозоиды из цист выходят в семенные канальцы, которые направляются к общему выводному протоку, расположенному в верхней части семенника. Клетки фолликулярного эпителия смещаются в область выводных протоков и образуют их выстилку. Движущиеся сперматозоиды V стадии зрелости представлены на рис. 8. <img width="700" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/ecb/6.JPG" height="350"> После нереста (VI стадия, выбой, сумма тепла 17000 градусо-дней) наблюдается незначительное количество цист с разным количеством сперматозоидов, которые подвергаются резорбции под воздействием клеток фолликулярного эпителия, а в выводном протоке - неиспользованные сперматозоиды также подвергаются резорбции, сливаясь в сплошные непросвечивающие массы (рис. 9, 10). <img width="700" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/7cc/7.JPG" height="503"> ЗАКЛЮЧЕНИЕ Знания особенностей процесса развития воспроизводительной системы у самцов осетровых рыб, рассмотренных на примере стерляди волжской популяции в индустриальных условиях, позволяют совершенствовать технологические приемы управления процессами сперматогенеза в условиях индустриальных хозяйств, обеспечивая получение половых продуктов высокого рыбоводного качества в нужные для предприятия сроки. Ориентируясь по набранной производителями (самцами) стерляди общей сумме тепла можно синхронизировать рыбоводные процессы (циклы) по получению половых продуктов от самок стерляди и обеспечить неоднократное (в течение календарного года) получение от одних и тех же самцов половых продуктов. В возрасте 2 года при сумме тепла 11300 градусо-дней у самцов наблюдается I-II стадии зрелости гонад. При сумме тепла 16800 градусо-дней у трехгодовиков начинается цитологическая дифференцировка пола. Преддверием этого служат волны сперматогенеза и вступление половых клеток в мейоз, которые характеризуются интенсивным протеканием III, III-IV, IV, IV-V, V, V-VI и VI стадий зрелости семенников. Зрелые сперматозоиды из цист выходят в канальцы семенника, а затем в общий выводной проток с последующим выходом эякулята через генитальное отверстие. Это состояние половых продуктов характеризуется как V стадия зрелости. А после вытекания спермы из семенных канальцев наступает посленерестовое состояние – VI стадия зрелости, при которой неиспользованные сперматозоиды перезревают и подвергаются процессу резорбции, сливаясь в сплошную однородную массу. В гонадах у отнерестившихся самцов остается небольшое количество цист, которые заполнены зрелыми сперматозоидами. Известно, что для осетровых рыб характерен единовременный тип икрометания, поэтому волна сперматогенеза закономерно носит сезонный характер, одновременно с формированием половых продуктов у самок обеспечивая нерест в естественном ареале обитания. В условиях индустриальных хозяйств, особенно УЗВ, где как правило температура воды в рыбоводных бассейнах может поддерживаться на постоянном уровне в зоне оптимальных нерестовых температур, этот фактор дает возможность путем отслеживания и регулирования температуры воды в рыбоводных емкостях и при определенном наборе суммы тепла (градусо-дней) выводить самцов осетровых рыб в нерестовое состояние в необходимый период времени. Таким образом, надежные технологии по формированию и воспроизводству маточных стад стерляди в условиях тепловодных хозяйств могут быть созданы только при условии всестороннего изучения влияния абиотических и биотических факторов среды на весь процесс гаметогенеза, начиная от ювенального периода до полового созревания и получения половых продуктов. Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов. Conflict of interests. The authors declare no conflict of interest. Библиографический список 1. Алтуфьев, Ю.В. Методическое пособие к изучению развития половых желез у рыб (на примере семейства Acipenseridae – осетровых) / Ю.В. Алтуфьев, А.А. Романов, А.П. Долгопол. - Астрахань: Астраханский технический институт рыбной промышленности и хозяйства, 1986. – 57 с. 2. Анисимова, И.М. Строение и некоторые физиологические особенности рыб. Половая система / И.М Абросимова, В.В. Лавровский. - Учебник «Ихтиология». - М.: Изд-во Высшая школа, 1983. – 255 с. 3. Багров, А.М. Новые объекты акклиматизации в пресноводной аквакультуре: гаметогенез, половые циклы, рыбоводное освоение / А.М. Багров, В.А. Илясова, Е.А. Мельченков, В.В. Калмыкова // Рыбное хозяйство. – 2020. - №3. – С. 82-87. 4. Буцкая, Н.А. Некоторые особенности функции семенников у рыб с различными типами нереста / Н.А. Буцкая // Экологическая пластичность половых циклов и размножения рыб. - Л: ЛГУ, 1975. – С. 108-122. 5. Буцкая, Н.А. Об особенностях функции семенников у рыб различными типами нереста / Н.А. Буцкая // Докл. АН СССР. – 1955. - Т. 100, №4. – С. 809-812. 6. Корчунов, А.А. Влияние искусственной экосистемы на репродуктивные качества осетровых рыб в аквакультуре / А.А. Корчунов, М.Н. Сорокина, В.А. Григорьев, А.В. Ковалева // Известия Самарского научного центра Российской академии наук. – 2017. – Т. 19, № 5 (2). – С. 327-333. 7. Мельченков, Е.А. Сперматогенез стерляди (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) в условиях индустриального бассейнового хозяйства / Е.А. Мельченков, В.А. Илясова, А.П. Воробьев, Т.А. Канидьева, Е.Н. Бекина, А.А. Арчибасов // Сборник научных трудов ВНИИПРХ: Издательство Перо, 2020. - Вып. 91. – С. 4-11. 8. Микодина, Е.В. Гистология для ихтиологов. Опыт и советы / Е.В. Микодина, М.А. Седова, Д.А. Чмилевский, А.Е. Микулин, С.В. Пьянова, Щ.Г. Полуэктова. - М.: Изд-во ВНИРО, 2009. - 112 с. 9. Персов, Г.М. Дифференцировка пола у рыб / Г.М. Персов. – Л.: ЛГУ, 1975. – 147 с. 10. Персов, Г.М. Семенник севрюги в период нерестовой миграции, нереста и поката / Г.М. Персов // Тр. лаб. основ рыбоводства. - 1947. - Т.1. - С. 177-185. 11. Персов, Г.М. Сроки дифференцировки пола и темп полового созревания у осетровых / Г.М. Персов // Труды ЦНИОРХ. Осетровые СССР и их воспроизводство. – М.: Пищевая промышленность, 1971. - Т. 3. – С. 222-234. 12. Пономарева, Е.Н. Особенности развития репродуктивной системы донской стерляди в зарегулированных условиях водной среды / Е.Н. Пономарева, Г.Ф. Металлов, А.А. Корчунов, А.В. Ковалева // Известия Самарского научного центра Российской академии наук. – 2012. – Т. 14, №5. - С. 190-193. 13. Ромейс, Б. Микроскопическая техника. - М.: Иностранная литература, 1953. - 648 с. 14. Сакун, О.Ф. Определение стадий зрелости и изучение половых циклов рыб / О.Ф. Сакун, Н.А. Буцкая. - М.: Пищевая промышленность, 1963. - 36 с. 15. Селюков, А.Г. Ранний гаметогенез сиговых рыб Сибири / А.Г. Селюков, Е.В. Ефремова, Г.Н. Бондаренко, Е.В. Микодина. - М.: Изд-во ВНИРО, 2018. - 118 с. 16. Серебрякова, Е.В. Исследование гонад производителей осетра Волгоградского водохранилища / Е.В. Серебрякова // Труды ВНИРО. Осетровые южных морей Советского Союза. - 1964. - Т. 56, сб.3. – С. 117-130. 17. Трусов В.З. Некоторые особенности созревания и шкала зрелости половых желез осетра / В.З. Трусов // Труды ВНИРО. – 1964. - Т. 56, сб. 3. - С. 69-78. 18. Трусов В.З. Созревание половых желез волго-каспийского осетра Acipenser Guldenstadti Brandt в морской период жизни / В.З. Трусов // Труды ЦНИОРХа. Осетровые СССР и их воспроизводство. - М.: Пищевая промышленность, 1972. - Т. 4. - С. 95-122. 19. Чертихина, Е.А. Особенности гаметогенеза стерляди (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) при выращивании в комбинированных условиях / Е.А. Чертихина, В.А. Илясова, Е.А. Мельченков // Вопросы рыболовства. – 2012. – Т. 13, №3(51). – С. 554-559. References 1. Altuf'ev, Yu.V., Romanov, A.A., Dolgopol A.P. Metodicheskoe posobie k izucheniyu razvitiya polovyh zhelez u ryb (na primere semejstva Acipenseridae – osetrovyh) [Methodological guide to the study sex gland development in fish (as illustrated by Acipenseridae family — sturgeon)]. - Astrahan': Astrahanskij tekhnicheskij institut rybnoj promyshlennosti i hozyajstva, [Astrakhan: Astrakhan Technical Institute of the Fishing Industry and Economy], 1986. – 57 s. (In Russian). 2. Anisimova, I.M., Lavrovskij V.V. Stroenie i nekotorye fiziologicheskie osobennosti ryb. Polovaya sistema [The structure and some physiological peculiarities of fish. Reproductive system.]. - Uchebnik «Ihtiologiya» [Ichthyology textbook]. - M.: Izd-vo Vysshaya shkola [Moscow: Vysshaya shkola Publishing House], 1983. – 255 s. (In Russian). 3. Bagrov, A.M., Ilyasova V.A., Mel'chenkov E.A., Kalmykova V.V. Novye ob"ekty akklimatizacii v presnovodnoj akvakul'ture: gametogenez, polovye cikly, rybovodnoe osvoenie [New objects of acclimatization in freshwater aquaculture: gametogenesis, sexual cycles, fish-breeding development] // Rybnoe hozyajstvo [Fishfarm]. – 2020. - №3. – S. 82-87. (In Russian). 4. Buckaya, N.A. Nekotorye osobennosti funkcii semennikov u ryb s razlichnymi tipami neresta [Some aspects of the male gonad function in fish with different types of spawning] // Ekologicheskaya plastichnost' polovyh ciklov i razmnozheniya ryb [Ecological plasticity of sexual cycles and reproduction of fish]. – L: LGU, 1975. – S. 108-122. (In Russian). 5. Buckaya, N.A. Ob osobennostyah funkcii semennikov u ryb razlichnymi tipami neresta [On the peculiarities of spermary function in fish with different types of spawning] // Dokl. AN SSSR [Report of the Academy of Science of USSR]. – 1955. - T. 100, №4. – S. 809-812. (In Russian). 6. Korchunov, A.A., Sorokina M.N., Grigor'ev V.A., Kovaleva A.V. Vliyanie iskusstvennoj ekosistemy na reproduktivnye kachestva osetrovyh ryb v akvakul'ture [The influence of an artificial ecosystem on the reproductive qualities of sturgeon fish in aquaculture] // Izvestiya Samarskogo nauchnogo centra Rossijskoj akademii nauk [Izvestiya of Samara Scientific Center of the Russian Academy of Sciences]. – 2017. – T. 19, № 5 (2). – S. 327-333. (In Russian). 7. Mel'chenkov, E.A., Ilyasova V.A., Vorob'ev A.P., Kanid'eva T.A., Bekina E.N., Archibasov A.A. Spermatogenez sterlyadi (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) v usloviyah industrial'nogo bassejnovogo hozyajstva [The influence of an artificial ecosystem on the reproductive qualities of sturgeon fish in aquaculture] // Sbornik nauchnyh trudov VNIIPRH: Izdatel'stvo Pero [Collection of scientific papers of FSBSI Russian Federation Research Institute Of Fishery and Oceanography (VNIRO). - M.: Pero Publishing house], 2020. - Vyp. 91. – S. 4-11. (In Russian). 8. Mikodina, E.V., Sedova M.A., Chmilevskij D.A., Mikulin A.E., P'yanova S.V, Poluektova SHCH.G. Gistologiya dlya ihtiologov. Opyt i sovety [Histology for ichthyologists. Experience and recommendations]. - M.: Izd-vo VNIRO, 2009 [M.: Publishing house VNIRO]. - 112 s. (In Russian). 9. Persov, G.M. Differencirovka pola u ryb [Sex differentiation in fish]. – L.: LGU, 1975. – 147 s. (In Russian). 10. Persov, G.M. Semennik sevryugi v period nerestovoj migracii, neresta i pokata [Spermary of starred sturgeon during spawing migration, spawning and downstream migration] // Tr. lab. osnov rybovodstva [Tr. lab. of the basics of fishfarming]. - 1947. - T.1. - S. 177-185. (In Russian). 11. Persov, G.M. Sroki differencirovki pola i temp polovogo sozrevaniya u osetrovyh [Sex differentiation period and maturation rate in sturgeon] // Trudy CNIORH. Osetrovye SSSR i ih vosproizvodstvo [Scientific papers of the National Research Institute of Lake and River Fisheries Sturgeon of the USSR and their reproduction]. – M.: Pishchevaya prom., 1971 [M.: Food industry, 1971]. - T. 3. – S. 222-234. (In Russian). 12. Ponomareva, E.N., Metallov G.F., Korchunov A.A., Kovaleva A.V. Osobennosti razvitiya reproduktivnoj sistemy donskoj sterlyadi v zaregulirovannyh usloviyah vodnoj sredy [Features of the reproductive system development of the Don sterlet in overregulated conditions of the aquatic environment] // Izvestiya Samarskogo nauchnogo centra Rossijskoj akademii nauk [Izvestiya of Samara Scientific Center of the Russian Academy of Sciences]. – 2012. – T. 14, №5. - S. 190-193. (In Russian). 13. Romejs, B. Mikroskopicheskaya tekhnika [Microscopic engineering]. - M.: Inostrannaya literatura, 1953 [M.: Foreign Literature]. - 648 s. (In Russian). 14. Sakun, O.F., Buckaya N.A. Opredelenie stadij zrelosti i izuchenie polovyh ciklov ryb [Determination of maturity stages and study of reproductive cycles of fish]. - M.: Pishchevaya promyshlennost', 1963. [M.: Food industry, 1963]. - 36 s. (In Russian). 15. Selyukov, A.G., Efremova E.V., Bondarenko G.N., Mikodina E.V. Rannij gametogenez sigovyh ryb Sibiri [Early gametogenesis of whitefish in Siberia]. - M.: Izd-vo VNIRO, 2018 [M.: Publishing house VNIRO, 2018]. - 118 s. (In Russian). 16. Serebr yakova, E.V. Issledovanie gonad proizvoditelej osetra Volgogradskogo vodohranilishcha [Study of the gonads of sturgeon spawners in the Volgograd reservoir] // Trudy VNIRO. Osetrovye yuzhnyh morej Sovetskogo Soyuza [Scientifical papers of the National Research Institute of Lake and River Fisheries. Sturgeon of the southern seas of the Soviet Union]. - 1964. - T. 56, sb.3. – S. 117-130. (In Russian). 17. Trusov V.Z. Nekotorye osobennosti sozrevaniya i shkala zrelosti polovyh zhelez osetra [Some maturation features and the scale of gonads maturity of the sturgeon] // Trudy VNIRO. – 1964. - T. 56, sb. 3. - S. 69-78. (In Russian). 18. Trusov V.Z. Sozrevanie polovyh zhelez volgo-kaspijskogo osetra Acipenser Guldenstadti Brandt v morskoj period zhizni [Study of the gonads of sturgeon Acipenser Guldenstadti Brandt spawners in the Volgograd reservoir] // Trudy CNIORHa. Osetrovye SSSR i ih vosproizvodstvo. [Works of the National Research Institute of Lake and River Fisheries. Sturgeon of the USSR and their reproduction]. - M.: Pishchevaya promyshlennost', 1972 [M.: Food industry, 1972]. - T. 4. - S. 95-122. (In Russian). 19. Chertihina, E.A., Ilyasova V.A., Mel'chenkov E.A. Osobennosti gametogeneza sterlyadi (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) pri vyrashchivanii v kombinirovannyh usloviyah [Special characteristics of sterlet gametogenesis (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) when grown in combined conditions] // Voprosy rybolovstva [Fishery issues]. – 2012. – T. 13, №3(51). – S. 554-559. (In Russian). Сведения об авторах Вера Александровна Илясова — д-р биол. наук, старший научный сотрудник, главный специалист лаборатории осетроводства и акклиматизации, филиал по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» (ВНИИПРХ). Россия, 141821, Московская область, Дмитровский городской округ, поселок Рыбное, д. 40а.E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a>. ORCID: 0000-0003-2840-312Х. Евгений Алексеевич Мельченков — д-р биол. наук, старший научный сотрудник, заведующий лабораторией осетроводства и акклиматизации, филиал по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» (ВНИИПРХ). Россия, 141821, Московская область, Дмитровский городской округ, поселок Рыбное, д. 40а. E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a>. ORCID: 0000-0002-3336-165Х. Вера Вениаминовна Калмыкова – канд. биол. наук, главный специалист лаборатории осетроводства и акклиматизации, филиал по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» (ВНИИПРХ). Россия, 141821, Московская область, Дмитровский городской округ, поселок Рыбное, д. 40а. E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a>. ORCID: 0000-0002-6949-9335. Елена Анатольевна Данилова – доцент кафедры «Аквакультура и экология» Дмитровского рыбохозяйственного технологического института (филиала) ФГБОУ ВО «АГТУ». Россия, 141821, Московская область, Дмитровский городской округ, поселок Рыбное, д. 36. E-mail: <a href="mailto:Aljonad@bk.ru">Aljonad@bk.ru</a>. ORCID: 0000-0002-2841-5959. Артур Алексеевич Арчибасов — ведущий специалист лаборатории осетроводства и акклиматизации, филиал по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» (ВНИИПРХ). Россия, 141821, Московская область, Дмитровский городской округ, поселок Рыбное, д. 40а. E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a>. ORCID: 0000-0002-1576-4578. Александр Павлович Воробьёв — ведущий специалист лаборатории осетроводства и акклиматизации, филиал по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» (ВНИИПРХ). Россия, 141821, Московская область, Дмитровский городской округ, поселок Рыбное, д. 40а. E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a>. ORCID: 0000-0002-0025-4292. Information about the authors Vera Aleksandrovna Ilyasova — doctor of biological sciences, senior researcher, main specialist of the Laboratory of Sturgeon Breeding and Acclimatization, Branch for Freshwater Fisheries of the Federal State Budgetary Institution “VNIRO” (VNIIPRH). Russia, 141821, Moscow region, Dmitrov city district, Rybnoye settlement, house 40A. E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a>.ORCID: 0000-0003-2840-312X. Evgeny Alekseevich Melchenkov — doctor of biological sciences, senior researcher, head of the Laboratory of Sturgeon Breeding and Acclimatization, Branch for Freshwater Fisheries of the Federal State Budgetary Institution “VNIRO” (VNIIPRH). Russia, 141821, Moscow region, Dmitrov city district, Rybnoye settlement, house 40A. E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a>. ORCID: 0000-0002-3336-165X. Vera Veniaminovna Kalmykova, candidate of biological sciences, main specialist of the Laboratory of Sturgeon Breeding and Acclimatization, Branch for Freshwater Fisheries of the Federal State Budgetary Institution “VNIRO” (VNIIPRH). Russia, 141821, Moscow region, Dmitrov city district, Rybnoye settlement, house 40A. E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a>. ORCID: 0000-0002-6949-9335. Elena Anatol'evna Danilova, associate Professor of Aquaculture and Ecology Department of the Dmitrov Institute of Fishery Technology (branch) of the FSBEI of Higher Education Astrakhan State Technical University. Russia, 141821, Moscow region, Dmitrov city district, Rybnoye settlement, house 36. E-mail: <a href="mailto:Aljonad@bk.ru">Aljonad@bk.ru</a>. ORCID: 0000-0002-2841-5959. Arthur Alekseevich Archibasov — senior specialist of the Laboratory of Sturgeon Breeding and Acclimatization, Branch for Freshwater Fisheries of the Federal State Budgetary Institution “VNIRO” (VNIIPRH). Russia, 141821, Moscow region, Dmitrov city district, Rybnoye settlement, house 40A. E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a>. ORCID: 0000-0002-1576-4578. Aleksandr Pavlovich Vorob'yov — senior specialist of the Laboratory of Sturgeon Breeding and Acclimatization, Branch for Freshwater Fisheries of the Federal State Budgetary Institution “VNIRO” (VNIIPRH). Russia, 141821, Moscow region, Dmitrov city district, Rybnoye settlement, house 40A. E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a>. ORCID: 0000-0002-0025-4292. <hr> Подготовили: лаборатория осетроводства и акклиматизации Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

18 ноября 2021

О необходимости и перспективах создания сети криобанков гидробионтов в России.

Необходимость создания системы криобанков гидробионтов в России диктуется целым рядом соображений. Наша страна приняла на себя обязательства по сохранению биоразнообразия животных и растений, включая водные организмы, подписав, в 1992 году Конвенцию ООН по сохранению биоразнообразия и ряд других документов, посвященных этой тематике. В России, как и в других странах многие виды и популяции рыб и других гидробионтов находятся в угрожаемом состоянии или на грани исчезновения. В Красную книгу России уже внесено 59 видов и популяций рыб, что почти в 10 раз больше, чем в 1983 году. Многие виды числятся в Красных книгах субъектов Российской Федерации или внесены в региональные списки редких и исчезающих видов и популяций. Многие виды и популяции рыб, ранее имевшие промысловое значение, находятся в деградированном состоянии как, например, некоторые виды и популяции осетров, лососей, сиговых и карповых рыб: печорская семга, онежский лосось и другие популяции атлантического лосося, некоторые сиги на Северо-западе России, белорыбица на Волге, азовская популяция белуги, байкальский осетр, сахалинский осетр, шип (уральская популяция), черноморская и каспийская популяции кумжи, сахалинский таймень, азово-черноморская шемая и многие другие виды России и сопредельных стран. Практически исчез атлантический осетр, обитавший на обширных акваториях ряда стран Европы, персидский и колхидский осетры, лжелопатоносы. Комитет по экологии Государственной Думы Российской Федерации в своем Решении (№42-5 от 21 июня 2001г) отметил, что при резком сокращении естественного воспроизводства биоресурсов и, более того, при возникновении опасности глобальной экологической катастрофы (а такие прогнозы появляются всё чаще и чаще), спасение генетического фонда животных и растений является стратегически важной задачей как для мирового сообщества, так и для Российской Федерации. Среди неотложных мероприятий, направленных на решение этой задачи названо формирование системы криобанков и формирование в них репрезентативных коллекций спермы и другого генетического материала. Оно тесно увязывается с формированием живых генетических коллекций в существующих аквахозяйствах, однако криотехнологии позволяют решать задачу сохранения генетических ресурсов в сжатые сроки и обеспечивать, в отличие от живых коллекций, более высокую степень репрезентативности сохраняемого генетического материала. Особенно велика роль криобанков в случае экологических и социаль¬ных катастроф. Именно поэтому работы по сбору и криоконсервации ге¬номов гидробионтов должны разворачиваться прежде всего в тех регио¬нах России, где такая угроза существует. Также низкотемпературные генетические банки в хозяйствах аквакультуры будут способствовать совершенствованию уровня селекционно-племен¬ной работы, сохранению редких пород и популяций от исчезновения или генетического обеднения. В России, а ранее в Советском Союзе, предпринимались попытки организации криобанков (криохранилищ) рыб и других гидробионтов, например региональные криобанки гидробиотнов были созданы в Московской области, Санкт-Петербурге, Астрахани, Карелии, на Дальнем Востоке, и Украине. Эти работы проводились в рамках научно-технической программы «Криобанк рыб 1999-2006 г.г., Национальной программы «Генетический криобанк гидробионтов» и других программ, в свое время разработанных Межведомственной ихтиологической комиссией (М.И.К.) и осуществляющей ее финансирование, а также другими научно-исследовательскими институтами и организациями. Однако из-за резкого уменьшения финансирования эти работы были в основном свернуты. На данный момент, сохранился и успешно действует криобанк Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ»), это самый крупный в Российской Федерации низкотемпературный генетический банк спермы рыб. Коллекция криобанка представлена 32 видами и 38 породами. В криобанке Института биофизики клетки РАН также хранится коллекция криоконсервированной спермы рыб (частично дублирующую коллекцию криобанка ВНИИПРХ). Криобанк спермы рыб также сформирован в Южном научном центре Российской академии наук, совместно с Астраханским государственным техническим университетом. Огромные территории нашей страны, включающие и морские акватории, большое биоразнообразие водных организмов, необходимость сохранения многих видов от уничтожения, развитие морской и пресноводной аквакультуры требуют создание системы криобанков (криохранилищ) и криослужбы. Исследовательские работы по разработке методов криоконсервации для спермы пресноводных, морских видов рыб и промысловых беспозвоночных необходимо сосредоточить в уже существующих криобанках, а также восстановить криохранилище в Центральной лаборатории по воспроизводству рыбных запасов ФГБУ «Главрыбвод». Необходимо предусмотреть создание для этой цели соответствующих научных групп (лабораторий) и криохранилищ в Волжско-Каспийском филиале ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («КаспНИРХ»), Якутском филиале ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ЯкутскНИРО»), Хабаровском филиале ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ХабаровскНИРО»), Полярном филиале ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ПИНРО» им. Н.М. Книповича), Атлантическом филиале ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («АтлантНИРО»), Азово-Черноморском филиале ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («АзНИИРХ»), Тихоокеанском филиале ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ТИНРО»), Тюменском филиале ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («Госрыбцентр») Сохранение биоразнообразия — это острейшая проблема уже сегод¬няшнего дня. Поэтому требуются незамедлительные меры по созданию необходимой сети криобанков, сбора и закладки в них генетических кол¬лекций гидробионтов. Низкотемпературные генетические банки должны стать частью мероприятий по поддержанию продовольственного и сырьевого потенциала страны на достаточном и безопасном уровне. Криобанк Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ») расположенный в Центральном Федеральном округе, обладающий уникальной коллекцией криоконсервированной спермы рыб, собственными критехнологиями, специалистами, имеет все основания стать головным отраслевым криобанком коллективного пользования. <img width="500" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/a26/DSC_04891.jpg" height="333"> <img width="500" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/632/DSC_0044%20(1)%20.jpg" height="333"> <hr> Подготовил: Ананьев Валентин Илларионович ведущий научный сотрудник лаборатории криобиологии, Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

Вы представитель СМИ?

Для получения комментария учёных, организации интервью или съёмок на объектах института напишите в пресс-службу — ответим в течение рабочего дня.

Запрос в пресс-центр Правила работы со СМИ