Вы здесь

Пресс-центр Информаторий · ВНИИПРХ

Анонсы и информаторий

Предстоящие мероприятия, конференции, семинары и события Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО». Следите за афишей института.

Всего записей: 179

Все годы 179 2026 3 2025 4 2024 8 2023 11 2022 31 2021 32 2020 21 2019 28 2018 22 2017 17

28 октября 2021

Совершествование методов борьбы с заболеваниями объектов аквакультуры

Одной из важных черт (сторон) ихтиопатологии является ее практическая направленность. Развитие аквакультуры идет параллельно с совершенствованием нормативно-правовой базы по охране здоровья рыб, включая требования по обеспечению санитарной безопасности выращиваемой продукции. Известно, что болезни снижают эффективность работы рыбхозяйственных предприятий, вызывая не только прямую гибель разводимых объектов, негативно влияют на прирост их массы, упитанность, товарное качество продукции. Вылавливая рыба из естественных водоемов, может являться носителям эпидемиологически значимых возбудителей, личинок зоогельминтов. Интенсификация рыбоводства, многолетняя эксплуатация водного объекта, постоянные перевозки рыбы вызывают увеличение степени риска возникновения заболеваний. В этой связи у рыбоводов возникает необходимость привлечения государственных ветеринарных инспекторов-ихтиопатологов или специалистов-ихтиопатологов для оказания помощи в постановке диагноза и разработке лечебно-профилактических мероприятий по борьбе с возникающими болезнями. Профилактика болезней рыб находиться под контролем специалистов рыбоводных предприятий, и связана с организационно-техническими мероприятиями и инициативой на местах. Они должны поддерживать тесный контакт с районными государственными ветеринарными инспекторами, выдающими разрешение на ввоз и вывоз рыбопосадочного материала и товарной рыбы при ее реализации, согласовывать с ними ежегодные планы проведения профилактических мероприятий, вызывать их в случаях гибели рыбы. Свою деятельность они реализуют в соответствии с ЗАКОНОМ РФ «О ВЕТЕРИНАРИИ» от 14 мая 1993 г. N 4979-1 (в ред. от 02.07.2021 г.) и пакетом нормативных документов, объединенных в «Сборник инструкций по борьбы с болезнями рыб» (Сборник инструкций…, Ч.1, 1998; Сборник инструкций…, Ч.2, 1999). При этом следует отметить, что подготовленные ранее инструктивные материалы специалистами рыбохозяйственных и ветеринарных лабораторий, занимающихся изучением болезней рыб и разработкой методов борьбы с заболеваниями морально устарели и требуют существенной переработки с учетом современных нормативно-правовых требований. Для обеспечения биологической и пищевой безопасности выращиваемой рыбоводной продукции и ее оперативной поставки потребителю в РФ была разработана и с 01.07.2018 г. внедрена автоматизированная информационная система «Меркурий Ветсельхознадзор». Она работает по принципу электронной сертификации рыбоводных предприятий и обеспечивает прослеживаемость поднадзорных государственному ветеринарному надзору грузов, начиная с этапа их выращивания, оборота и перемещении по стране. Данная система позволяет сконцентрировать материалы по эпизоотическому состоянию и создать базу данных по регионализации заразных заболеваний рыб. Другой не менее важной стороной ихтиопатологических исследований является разработка и внедрение препаратов для борьбы с болезнями рыб. Разработанные в прошлом веке и включенные в инструкции по борьбе с болезнями рыб лечебные препараты потеряли свою актуальность. Это связано с тем, что требования ЕС и Евроазиатского экономического союза (ЕАЭС) в отношении безопасности использования лекарственных препаратов для ветеринарного применения и безопасности пищевого сырья значительно жестче, чем в России. В связи с разработкой национального законодательства в области обращения ветеринарных лекарственных средств, кормовых добавок, дезинфицирующих средств и т.д. (Государственный реестр…), многие из ранее рекомендованных препаратов в России, не могут быть использованы для лечения рыб. Усиление деятельности контролирующих органов позволяет своевременно выявлять экологические, ветеринарные и санитарно-эпидемиологические нарушения. Это означает, что в аквакультуре основное внимание должно уделяться рыбоводно-мелиоративным профилактическим мероприятиям, разработке и использованию экологически чистых препаратов (вакцин, биологически активных веществ, иммуностимуляторов и др.), позволяющим выращивать здоровую, экологически чистую, безопасную рыбную продукцию. В этой связи особенно значимы исследования связанные с использование вакцинных препаратов. <img width="306" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/d1a/18.10.2021.jpg" height="310"> <hr> Подготовили: лаборатория ихтиопатологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ») по материалам Научного аналитического обзора «Анализ состояния и перспективные направления развития аквакультуры». - М.: ФГБНУ «Росинформагротех», 2019. – 88 с.Подготовили: лаборатория ихтиопатологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ») по материалам Научного аналитического обзора «Анализ состояния и перспективные направления развития аквакультуры». - М.: ФГБНУ «Росинформагротех», 2019. – 88 с.

Читать

18 октября 2021

Важность использования жиров в кормлении рыб

Жиры, или липиды, как питательные вещества являются высококонцентрированными источниками энергии, в то же время они содержат в своем составе многие жизненно важные вещества, такие как незаменимые жирные кислоты, жирорастворимые витамины и т.д. Физиологическое значение жиров пищи для рыб не ограничивается их ролью как поставщиков энергии. По своим функциям в организме они служат структурными и рецепторными компонентами клеточных оболочек, а также являются передатчиками биологических сигналов. В живом организме процессы синтеза и распада жиров происходят непрерывно. Основную часть жиров составляют жирные кислоты. Известно, что жирнокислотный состав кормов является вторым после аминокислотного фактором, определяющим рост рыб. Как и аминокислоты, часть жирных кислот не может синтезироваться в организме. Этот ряд полиненасыщенных жирных кислот называют незаменимыми (эссенциальными) жирными кислотами. Незаменимые жирные кислоты принимают значительное участие в метаболизме рыб, поэтому они обязательно должны присутствовать в пище. К важным для организма рыб жирным кислотам относятся: полиненасыщеные ряда ω-3 (альфа-линоленовая, эйкозапентаеновая, докозагексаеновая), ω-6 (линолевая, арахидоновая), и мононенасыщеннная ω-9 (олеиновая). Дефицит незаменимых жирных кислот негативно отражается на липидном обмене рыб, проявляясь в повышении отложения жира в печени и на внутренних органах. Нарушается воспроизводительная функция, снижается иммунитет. В результате повышается восприимчивость рыб к инфекциям. Типичные признаки дефицита жирных кислот - снижение аппетита, замедление роста, заболевания кожи и плавников, повреждение хлоридных клеток жабр, осуществляющих осморегуляцию. Следует отметить, что недостаток жиров, кроме снижения общей калорийности корма, может оказать нежелательное влияние на белковую питательность кормов. Так существуют данные, согласно которым при отсутствии незаменимых жирных кислот в рационе наблюдается усиление экскреции (выделения) азота из организма, т.е. уменьшении количества белка в теле рыб. Таким образом липиды играют белок сберегающую роль. Содержащиеся в кормах жиры оказывают влияние на их химические свойства и структуру, включая прочность и водостойкость, на вкус и аромат, а также привлекательность для рыб. Характер липидной части корма определяется в основном качественным составом и количественным содержанием жиров в источниках сырья, подобранных в рецепт. Если после сопоставления их величин с потребностью рыб данного вида и возраста выясняется недостаточность общих липидов или отдельных незаменимых жирных кислот, то она устраняется путем дополнительного введения соответствующих количеств различных жиров (растительных, рыбьих, других гидробионтов) или их смесей. Недостаточность в кормовых смесях линолевой кислоты можно восполнить включением таких растительных масел, как подсолнечное, кукурузное, соевое, составе которых на ее долю приходится соответственно около 65, 60 и 50%. Источником линоленовой кислоты может служить льняное масло (> 75%). В качестве энергетической добавки обычно используют растительные масла, богатые олеиновой кислотой. К ним относятся оливковое (с содержанием ее около 76%), арахисовое (около 60%), рапсовое безэруковых сортов (40-48%). При количественном подборе следует учитывать, что переваримость незаменимых ненасыщенных кислот колеблется в пределах 85-90% вне зависимости от их уровня в корме. В филиале ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» «ВНИИПРХ» ведутся испытания комбикормов для радужной форели с различными липидными композициями, состоящими из рыбьего жира, рапсового и соевого масел. Рыбий жир характеризуется высоким содержанием важных омега-3-полиненасыщенных жирных кислот - эйкозапентаеновой и докозагексаеновой. В его состав также входят витамины А и D, йод, магний и кальций. Рапсовое масло - отличный источник омега-3 (линоленовая), омега-6 (линолевая) и омега-9 (олеиновая) жирных кислот. Является богатым источником витамина Е, который одновременно является антиоксидантом. Из минеральных веществ следует упомянуть про ценнейший магний, цинк, медь, кальций, фосфор, калий. Также рапс не обделён витаминами В-группы, ретинолом, витамином К. Соевое масло характеризуется высоким содержанием полиненасыщенных жирных кислот, особенно линоленовой (омега-3) и линолевой (омега-6). Одним из самых ценных компонентов масла из сои является лецитин, который нормализует работу клеточных мембран, обеспечивает защиту на клеточном уровне от различных негативных воздействий. Кроме этого, в нем в достаточном количестве присутствуют витамины группы В (холин), Е, К, минералы – цинк и железо. <img width="600" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/f22/08.10.2021.jpg" height="397"> <hr> Подготовлено: лабораторией физиологии и кормления рыб по материалам монографии М.А. Щербины, Е.А. Гамыгина «Кормление рыб в пресноводной аквакультуре» и информационных сайтов сети Интернет

Читать

28 сентября 2021

Современное состояние водных биоресурсов трансграничного участка реки Днепр в пределах Смоленкой области Российской Федерации и республики Беларусь

ВВЕДЕНИЕ Река Днепр крупнейший трансграничный, между Республикой Беларусь и Российской Федерацией (РФ), водоток, дренирующий Смоленскую область России и три области Республики Беларусь: Витебскую, Могилевскую и Гомельскую. Длина Днепра в естественном состоянии составляет 2201 км, в пределах Беларуси - около 700 км, в пределах России 485 км. Площадь водосборного бассейна 504 000 км². Средний расход воды в устье 1670 м³/с. Уклон реки 0,09 м/км [2, 14]. В 1960 х гг. исследования по составу ихтиофауны, биологическим характеристикам рыб и рыбохозяйственному значению отдельных видов в промышленном рыболовстве р. Днепр в пределах Республики Беларусь приведены в монографии П.И. Жукова [5] и диссертационной работе А.А. Костюченко [9]. Со стороны России рекогносцировочные ихтиологические исследования верхнего Днепра начали проводиться с 2008 г. Частично эти работы были связаны с изучением эффективности рыбозащитного устройства ГУП «Ярцевский литейно-прокатный завод». В этот же период в верхнем течении Днепра проводился сбор гидробиологического и ихтиологического материала на ярцевском и смоленском участках реки для разработки рыбоводно-биологического обоснования на реакклиматизацию стерляди [11]. С белорусской стороны аналогичные исследования проведены для проектирования РЗУ водозабора Оршанской ТЭЦ в 2006 г, а также в процессе проведения комплексных исследований по проекту «Исследовать влияние антропогенного загрязнения на гидробиоценозы трансграничной реки Днепр, разработать научные основы по их устойчивому функционированию и использованию» 2001-2005 гг. [13]. Речные воды системы на территории России и Беларуси испытывают негативное воздействие хозяйственной деятельности человека гидротехническое строительство, сельскохозяйственное освоение и урбанизация территории, рост рекреационной (рыболовной) нагрузки, влекущие изменение условий обитания ряда аборигенных видов рыб, изменение видового статуса на угрожаемый или исчезающий, сокращение биологического разнообразия и снижение рекреационной составляющей территории. Данное сообщение дополняет работу, которая была осуществлена в рамках программы совместных российско-белорусских комплексных исследований водных биоресурсов на трансграничном участке водотока Днепра в 2014-2018 гг. [8] результатами ихтиологических исследований, проведённых в водах реки Днепр в 2019 г. Цель работы - исследование современного состояния ихтиофауны трансграничного участка реки Днепр в пределах России и Республики Беларусь в рамках ихтиологического мониторинга в 2019 г. Материал и методы исследований Сбор материалов и научно-исследовательские учетные сетные съемки, для выполнения работ по мониторингу состояния водных биоресурсов, проводились на реке Днепр в рамках исследований в 2019 г по заранее запланированной сетке станций (рис. 1, 2). При осуществлении рыболовства в научно исследовательских целях на российском участке произведено 20 сетепостановок плавных рамовых сетей с общей протяжённостью 3600 м, с шагом ячеи от 30 до 60 мм. На белорусском участке выполнено 9 сетепостановок при осуществлении контрольных обловов силами исполнителей, длина одноразово выставляемых порядков сетей составляла от 140 до 600 м с шагом ячеи от 30 до 60 мм, а также проведено 3 анализа промысловых сетных уловов арендаторов рыболовных угодий. Биологический анализ, выловленных рыб, выполнен по стандартным методикам [12, 16]. <img width="500" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/56c/%D0%A0%D0%B8%D1%81.%201.jpg" height="270"> Риc. 1. Схема расположения станций (1-7) научно-исследовательских наблюдений на р. Днепр в 2019 г <img width="500" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/afa/%D0%A0%D0%B8%D1%81.%202.jpg" height="347"> Рис.2. Карта постановки сетных орудий лова на реке Днепр в пределах Республики Беларусь:стрелкой показаны точки сбора материала В настоящее время не выработано единого подхода к делению р. Днепр на участки. Исходя из строения речной долины, характера русла и скорости течения, целесообразно согласиться с А.А. Костюченко [9] о выделении в пределах Беларуси верхнего участка от границы с РФ и до г. Шклов, где река выходит за пределы Оршанско‑Смоленской возвышенности и подступает к пределам Приднепровской низменности. Таким образом, в пределах Беларуси Днепр от границы со Смоленской областью до г. Шклов представлен своим верхним течением, а ниже г. Могилев и до границы с Украиной ‑ средним течением. Надо отметить, что участок от г. Шклов до г. Могилев несет черты как верхнего, так и среднего течения, поэтому его целесообразно рассматривать как переходный. Участок реки ниже г. Могилев и до устья р. Сож следует полностью относить к среднему течению, тогда как ниже устья р. Сож, в пределах Брагинского района Гомельской области р. Днепр подпирается водами Киевского водохранилища и по своим характеристикам в настоящее время может быть отнесена к нижнему течению. Белорусские коллеги проводили ихтиологические исследования на четырех станциях, отвечающих делению реки на участки. Оценку относительной численности отдельных видов рыб в структуре ихтиоценов р. Днепр проводили по показателям встречаемости в уловах плавных рамовых сетей. Осредненный для разных видов рыб коэффициент уловистости плавной сети составлял 0,1 [15, 17]. Встречаемость вида в данном случае подразумевает долю вида в структуре улова по численности, пересчитанную в % по показателям среднего стандартизированного улова на усилие (количество экз. рыб на сеть площадью 50 м2 пойманной за 24 ч). Результаты исследований и их обсуждение По данным российских исследователей [3, 4] состав ихтиофауны верхнего Днепра на территории России представлен 35 видами рыб, относимых к 10 семействам. На территории Белоруссии ихтиофауна включает 38 видов, относящихся к 32 родам и 10 семействам [5, 6]. Из общего числа видов рыб ‑ три (усач Barbus barbus, рыбец Vimba vimba и стерлядь Acipenser ruthenus) являются объектами охранных списков рыб Беларуси и России [1, 7] и в силу ряда биологических особенностей могут рассматриваться как раритетные, 15 ‑ угрожаемыми, в том числе стерлядь признана глобально угрожаемым видом. По типу питания рыбное население верхнего и среднего Днепра представлено зоопланктофагами (синец Ballerus ballerus, уклейка Alburnus alburnus, быстрянка Alburnoides bipunctatus, гольян Phoxinus phoxinus, колюшка Pungitius platygaster, молодь остальных видов рыб на ранних этапах развития), бентофагами (стерлядь A. ruthenus, лещ Abramis brama, густера Blicca bjoerkna, пескарь Gobio gobio, ерши Gymnocephalus Bloch, голец Barbatula barbatula, усач B. barbus, сазан Cyprinus carpio, линь Tinca tinca, карась обыкновенный Carassius carassius, белоглазка Ballerus sapa, елец Leuciscus leuciscus , рыбец V. vimba, щиповка Cobitis taenia, бычки Gobiidae Cuvier, подкаменщик Cottus gobio, горчак Rhodeus sericeus), эврифагами (плотва Rutilus rutilus, голавль Squalius cephalus, язь Leuciscus idus, карась серебряный Carassius gibelio, чехонь Pelecus cultratus) и ихтиофагами (щука Esox lucius, судак Sander lucioperca, налим Lota lota, сом Silurus glanis, жерех Aspius aspius, отчасти речной окунь Perca fluviatilis). Типичным перифитонофагом в составе ихтиофауны Днепра является подуст Chondrostoma nasus [13]. На российском участке реки Днепр видовой состав составил 16 видов рыб, а на белорусском участке – 22 вида. На российском участке отсутствовали в уловах такие виды, как сом, красноперка Scardinius erythrophthalmus, белоглазка, карп Cyprinus Linnaeus, щука и чехонь. Основу вылова на российском участке составляют плотва- 29% и голавль – 20%, на белорусском участке лещ – от 3 до 46%, плотва – от 19 до 63% и густера – от 1,8 до 33%, в несколько меньшем количестве отмечен речной окунь (в среднем до 10%). Долевое значение плотвы и густеры имеет тенденцию к снижению от верхних участков к нижним, леща – наоборот к повышению, значение окуня примерно равное по всем участкам. Плотва. Плотва многочисленна на различных биотопах реки и обитает на всем протяжении Днепра и его придаточной системы. В контрольных уловах отмечены особи длиной от 12 до 28,5 см и массой от 34 до 625 г, в возрасте от 2+ до 11+. На российском участке в выборках плотвы было зафиксировано пять возрастных групп, из которых в сетных уловах преобладали рыбы в возрасте 5 лет (58% от всего улова), средний возраст составил 4,6 года. На белорусском участке отмечены десять возрастных групп, из которых в уловах наиболее встречаемы рыбы в возрасте 7 лет (30% всего улова) со средним возрастом 6,9 лет. На верхнем и переходном белорусских участках средний возраст плотвы фактически не отличался от российского участка и составил 4,7 года. На среднем и нижнем участках отмечается увеличение среднего возраста популяции (6,6 и 7,9 лет соответственно), что связано с использованием материалов из анализов промысловых уловов арендаторов, селективно применяющих порядки сетей с большим шагом ячеи. Так как половозрелые особи плотвы отмечаются в литературе в среднем от 14 см в возрасте 3 лет, факт наличия в р. Днепр крупных особей плотвы создает предпосылку хорошего воспроизводственного потенциала популяции. Средние размерно-возрастные показатели плотвы по российскому и белорусскому участкам исследований представлены в таблице 1. Численность популяции остается на хорошем уровне и не вызывает опасений. Промысловая ихтиомасса плотвы на обследованном в 2019 г. российском участке по результатам учетной съемки составила 26,8 кг/га, а по белорусскому участку промысловый запас колеблется в пределах от 4,7 кг/га (Могилевская область) до 18,0 кг/га (в пределах Витебской области). <img width="698" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/be0/%D0%A2%D0%B0%D0%B1%D0%BB%D0%B8%D1%86%D0%B0%201.JPG" height="529"> Таблица 1. Средние размерно-возрастные показатели плотвы по участкам исследований Примечание. Здесь и в табл.2, 3, 4, 5, 6: Над чертой – средняя длина, под чертой средняя масса, N – количество экземпляров. Лещ. Распространен лещ повсеместно на разных биотопах реки. Крупный лещ придерживается глубоких русловых участков реки и ям. В весенний период наблюдается массовая преднерестовая миграция половозрелого леща вверх по реке с участков Днепра, расположенных на территории Республики Беларусь. Половое созревание леща начинается в возрасте 4+ у самок и 3+ у самцов. Массовое половое созревание леща наблюдается в возрасте 5+ у самок и 4+ у самцов. В контрольных уловах отмечены особи длиной от 10,5 до 46 см и массой от 27 до 2322 г, в возрасте от 1+ до 11+. На российском участке в выборках леща было определено пять возрастных групп, из которых в уловах преобладали рыбы в возрасте 4 года (33% всего улова), средний возраст составил 5,3 года. На белорусском участке установлены десять возрастных групп, из которых в уловах наиболее встречаемы рыбы в возрасте 6 лет (30% всего улова) со средним возрастом 6,7 лет. В Беларуси на верхнем и переходном участках в уловах лещ немногочислен и встречается в контрольных уловах единичными экземплярами. На среднем и нижнем участках отмечается увеличение как долевого значения, так и среднего возраста популяции по сравнению с российским участком (9,1 и 6,8 лет соответственно). Последнее связано как с ростом емкости экологических ниш, так и с селективной направленностью рыболовства. Средние размерно-возрастные показатели леща представлены в таблице 2. Численность популяции леща остается на стабильном уровне. Промысловая ихтиомасса леща на российском участке по результатам учетной съемки составила 15,0 кг/га, а по белорусскому участку промысловый запас колеблется в направлении от верхних к нижним участкам в пределах 1,2-35,3 кг/га. <img width="711" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/7e6/%D0%A2%D0%B0%D0%B1%D0%BB%D0%B8%D1%86%D0%B0%202.JPG" height="576"> Таблица 2. Средние размерно-возрастные показатели леща по участкам исследований Густера. Обитает преимущественно в русловой части реки, предпочитает те же биотопы что и лещ. В уловах отмечены особи длиной от 14,5 до 31 см и массой от 68 до 668 г, в возрасте от 3+ до 12+. На российском участке в выборках густеры были выявлены пять возрастных групп, из которых в сетных уловах преобладали рыбы в возрасте 4-5+ (70% всего улова), средний возраст составил 4,9 года. На белорусском участке отмечены восемь возрастных групп, из которых в уловах наиболее встречаемы рыбы в возрасте 8 лет (40% всего улова) со средним возрастом 7,9 лет. На российском участке были зафиксированы увеличенные темпы роста в возрасте 5 – 8 лет. Это скорее всего, связано с выловом данных экземпляров густеры в осенний период, когда наблюдаются максимальные значения массы тела. На переходном, среднем и нижнем участках отмечается увеличение среднего возраста популяции по сравнению с российским участком (8,0 и 8,3 лет соответственно). Причины последнего аналогичны выше отмеченным. Половозрелость густеры на Днепре наступает в возрасте 2+ у самцов и 3+ у самок и то, что средний возраст популяции составляет 6 лет, создает предпосылку хорошего воспроизводственного потенциала популяции. Средние размерно-возрастные показатели густеры представлены в таблице 3. Состояние популяции густеры в целом оценивается как стабильное. Промысловая ихтиомасса густеры на российском участке по результатам учетной съемки составила 10,2 кг/га, а на белорусской части участка протекания р. Днепр в пределах рассматриваемых участков промысловая ихтиомасса густеры составляет от 1,4 до 12,0 кг/га. <img width="711" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/b28/%D0%A2%D0%B0%D0%B1%D0%BB%D0%B8%D1%86%D0%B0%203.JPG" height="532"> Таблица 3. Средние размерно-возрастные показатели густеры по участкам исследований Голавль. Многочисленный вид на русловых участках реки Днепр, но уже ниже г. Могилев малочисленный. В летний период голавль предпочитает участки русла с сильным течением, в солнечные дни прячется в тени прибрежных кустарников, за крупными камнями, корягами, под кронами нависающих над рекой деревьев. Половое созревание голавля начинается в возрасте 5+ у самок и + 4+ у самцов. Массовое половое созревание голавля наблюдается в возрасте 6+ - у самок и 5+ - у самцов. В уловах отмечены особи длиной от 11,9 до 33 см и массой от 32 до 762 г, в возрасте от 2+ до 7+. На российском участке в выборках голавля было зафиксировано пять возрастных групп, из которых в сетных уловах преобладали рыбы в возрасте 3 – 4 года (85% всего улова) и средний возраст составил 4 года. На белорусском участке исследований голавль отмечался единичными экземплярами. На верхнем участке длина особей голавля колебалась в пределах от 12,9 до 15,7 см, масса от 38 до 62 г, средний возраст 2,6 года. Средние размерно-возрастные показатели голавля представлены в таблице 4. Состояние популяции голавля в целом оценивается, как стабильное. Промысловая ихтиомасса голавля российском участке по результатам учетной съемки составила 2,4 кг/га, а на белорусской части участка промысловая ихтиомасса голавля составляет менее 1 кг/га на всех участках исследований. <img width="593" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/827/%D0%A2%D0%B0%D0%B1%D0%BB%D0%B8%D1%86%D0%B0%204.JPG" height="358"> Таблица 4. Средние размерно-возрастные показатели голавля по участкам исследований Речной окунь. Многочисленный на всех биотопах реки вид. Придерживается участков с пониженной скоростью течения, часто отмечается, в придаточных водоемах, имеющих связь с основным руслом. В уловах отмечены особи длиной от 13,9 до 31 см и массой от 48,3 до 502 г, в возрасте от 2+ до 10+. На российском участке в выборках окуня было определено пять возрастных групп, из которых в сетных уловах преобладали рыбы в возрасте 3-5 лет (90% всего улова) и средний возраст составил 4,3 года. На белорусском участке отмечены девять возрастных групп, из которых в уловах наиболее встречаемы рыбы в возрасте 6-7 лет (33% всего улова) со средним возрастом 4,2 года. На российском участке были зафиксированы увеличенные темпы роста в возрасте 5‑7 лет. На верхнем участке средний возраст речного окуня составил 2,4 года. Меньшие показатели среднего возраста окуня на сопредельном участке р. Днепр в Беларуси по сравнению со Смоленской областью могут объясняться селективным характером примененных орудий лова и относительно небольшим объемом выборки, что подтверждается материалами исследований на ниже расположенных участках. Половозрелость речного окуня на р. Днепр наступает в возрасте 2+ у самцов и 3-4+ у самок. Так факт наличия крупных особей окуня создает предпосылку хорошего воспроизводственного потенциала популяции. Средние размерно-возрастные показатели речного окуня представлены в таблице 5. Состояние популяции в целом оценивается как стабильное. Промысловая ихтиомасса речного окуня на российском участке по результатам учетной съемки составила 3,5 кг/га, а на среднем участке белорусской части промысловая ихтиомасса составляет 3,6 кг/га и незначительно изменяется по всем остальным. <img width="710" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/d5c/%D0%A2%D0%B0%D0%B1%D0%BB%D0%B8%D1%86%D0%B0%205.JPG" height="446"> Таблица 5. Средние размерно-возрастные показатели речного окуня по участкам исследований Заключение Ихтиофауна р. Днепр, в пределах исследуемого трансграничного участка отличается значительным видовым разнообразием. По результатам исследований размерной структуры выловленных видов рыб, наблюдается динамика с хорошим воспроизводственным потенциалом. Темп линейно-весового роста большинства рыб на российском участке реки Днепр не уступает аналогичным показателям особей, обитающих ниже по течению реки в Республике Беларусь. Состояние популяций большинства ресурсных видов рыб характеризуется как стабильное, а их относительная численность определяется емкостью экологических ниш. Колебания концентрации и ихтиомассы отдельных видов могут объясняться сезонными и межгодовыми факторами в изменении среды обитания (прежде всего гидрологическими). Данные научно-исследовательских работ о состоянии водных биологических ресурсов реки Днепр послужат основой для разработки материалов прогноза рекомендованной добычи (вылова) водных биоресурсов. Для рационального использования реки Днепр необходимо продолжить углубленное всестороннее изучение состояния и среды обитания водных биологических ресурсов для оценки тенденций и динамики происходящих изменений. Библиографический список 1. Атлас пресноводных рыб России: в 2 т. / под ред. Ю.С. Решетникова, 2-е изд. – М.: Наука, 2003. – Т. 1. – 379 с. 2. Блакiтная кнiга Беларусi: Энцiклапедыя (Водныя аб,екты Беларусi) / Белaруская Энцiклaпедыя: рэдкал. Н.А. Дзiсько (i iнш.). – Мiнск: БелЭн, 1994. – С. 144–145. 3. Быков, А.Д. Современное состояние ихтиофауны верхнего течения реки Днепр в границах Смоленской области / А.Д. Быков (и др.). // Вопросы рыболовства. – 2017. – Т. 18, № 1. – С. 65–76. 4. Быков, А.Д. Современный состав ихтиофауны верхнего течения реки Днепр в пределах Смоленской области / А.Д. Быков, Ю.А. Митенков, К.В. Пшеничный // Экологические проблемы пресноводных рыбохозяйственных водоемов России: всерос. науч. конф. с междунар. участием. – Санкт-Петербург, 2011. – С. 55–58. 5. Жуков, П.И. Рыбы Белоруссии / П.И. Жуков. – Минск: Наука и техника, 1965. – 415 с. 6. Зубей, А.В. Изменение видового состава рыб в бассейне р. Днепр на территории Беларуси / А.В. Зубей, В.К. Ризевский // Современные экологические проблемы устойчивого развития Полесского региона и сопредельных территорий: наука, образование, культура: материалы III междунар. науч.-практ. конф.: в 3 ч. – Мозыр. гос. пед. ун-т (и др.). – Мозырь, 2007. – Ч. 1. – С. 123–126. 7. Костные рыбы // Красная Книга Республики Беларусь. Животные: редкие и находящиеся под угрозой исчезновения виды диких животных / Министерство природ. ресурсов и охраны окружающей среды, Нац. акад. наук Беларуси. – Минск: Беларуская энцыклапедыя, 2004. – С. 181–195. 8. Костоусов, В.Г. Состояние и структура рыбного населения трансграничного участка реки Днепр / В.Г. Костоусов, Г.П. Прищепов, С.Ю. Бражник (и др.) // Вопросы рыбного хозяйства Беларуси. – 2019. – Вып. 35. – С. 173–189. 9. Костюченко, А.А. Рыбы Днепра: (в пределах Белорусской ССР) 03.00.00 Биология: автореф. дис. … кандидата биологических наук // А.А. Костюченко; Белорус. гос. ун-т. – Минск, 1963. – 21 с. 10. Методика изучения биоценозов внутренних водоёмов / по ред. Ф.Д. Мордухай-Болтовского. – М.: Наука, 1975. – 658 с. 11. Отчет о НИР. Результаты российских комплексных исследований водных биоресурсов на трансграничном водотоке р. Днепр в 2015 г. М.: Фонды ФГУП ВНИРО, 2015а. 75 с. 12. Правдин, И.Ф. Руководство по изучению рыб / И.Ф. Правдин. – М.: Пищевая промышленность, 1966. – 376 с. 13. Прищепов, Г.П. Состояние популяций рыб в Днепре в условиях антропогенного воздействия / Г.П. Прищепов, Г.П. Воронова // Проблемы воспроизводства аборигенных видов рыб. – Киев: изд-во «Свiт рибалкi», 2005. – С. 137–142. 14. Ресурсы поверхностных вод СССР. Описание рек и озер. Белоруссия и Верхнее Поднепровье. – Л.: Гидрометеоиздат, 1971. – Т. 5. Ч. 1. – С. 99–112. 15. Трещев, А.И. Интенсивность рыболовства / А.И. Трещев. – М.: Лег. и пищ. пром-сть, 1983. – 236 с. 16. Чугунова, Н.И. Руководство по изучению возраста и роста рыб / Н.И. Чугунова. – М.: Изд. АН СССР, 1959. – 163 с. 17. Чурунов, В.Н. К вопросу об уловистости мальковых конусных сетей, неподвижно устанавливаемых в реках / В.Н. Чурунов // Вопросы рыболовства. – 2002. – Т. 3. №3. – С. 323–328. <hr> Авторы: А.И. Никитенко1, Д.В. Горячев1, В.Г. Костоусов2, Г.П. Прищепов2, В.К. Ризевский3, О.В. Корабельникова1, Н.Н. Клец1 1Филиал по пресноводному рыбному хозяйству Всероссийского научно-исследовательского института рыбного хозяйства и океанографии (ВНИИПРХ), Россия, Московская область, Рыбное 2 Республиканское унитарное предприятие «Институт рыбного хозяйства», Беларусь, г. Минск 3 Государственное научно-производственное объединение «Научно-практический центр Национальной Академии наук Беларуси по биоресурсам», Беларусь, г. Минск DOI:<a href="https://doi.org/10.33920/sel-09-2107-01">10.33920/sel-09-2107-01</a> <a href="https://doi.org/10.33920/sel-09-2107-01"></a> <a href="https://panor.ru/articles/sovremennoe-sostoyanie-vodnykh-bioresursov-transgranichnogo-uchastka-reki-dnepr-v-predelakh-smolenskoy-oblasti-rossiyskoy-federatsii-i-respubliki-belarus/64148.html"></a>

Читать

18 сентября 2021

Нормативные требования для питьевой воды

Нормативные значения к качеству питьевой устанавливаются в зависимости от её группы. Питьевую воду разделяют на следующие группы: Источники централизованного водоснабжения. К данной группе относятся источники водопровода населенных пунктов (городов, поселков, поселений и др.). В связи с этим к качеству питьевой воды применяются ужесточенные нормативы, требования. Контроль качества воды осуществляют Водоканалы, которые осуществляют поставку питьевой воды в трубопровод, а также управляющие компании, которые обслуживают водопроводную сеть помещений жилого объекта. СанПиН (Санитарно-эпидемиологические правила и нормативы) 2.1.4.1074-01 "Питьевая вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения. Контроль качества" — это нормативный документ, который устанавливает гигиенические требования к качеству питьевой воды, а также правила контроля качества воды, производимой и подаваемой централизованными системами питьевого водоснабжения населенных мест. Бутилированная вода. Продукт, представляющий собой воду, разлитую бутылки для розничного распространения. Согласно ГОСТ Р 52109-2003, расфасованную воду, в зависимости от качества водоподготовки, подразделяют на две категории: питьевая вода первой категории и питьевая вода высшей категории (к такой воде предъявляются более жёсткие требования к процессу водоподготовки, химическому составу, органолептическим, радиологическим и другим показателям). Качество бутилированной воды нормируется СанПиН 2.1.4.1116-2002 «Гигиенические требования к качеству воды, расфасованной в емкости». Данные санитарно-эпидемиологические правила и нормативы устанавливают гигиенические требования к качеству питьевой воды, расфасованной в ёмкости для питьевых целей и приготовления пищи, а также требования к организации контроля её качества. Источники нецентрализованного водоснабжения. К данной группе относятся подземные воды для общего и индивидуального пользования. Нормативы качества воды для данной группы более слабые, так как к источникам нецентрализованного водоснабжения относятся частные колодцы и скважины - воду из которых употребляют в пищу небольшое количество человек, поэтому считается, что риск для всего населения невелик. Нормативы качества воды представлены в СанПиН 2.1.4.1175-02 "Гигиенические требования к качеству воды нецентрализованного водоснабжения. Санитарная охрана источников», нормативный документ устанавливает. <img width="500" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/676/18.09.2021%201.jpg" height="223"> <img width="450" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/e00/18.09.2021%202.jpg" height="300"> <hr> Источник: Здрок А.В., начальник Отдела экологической токсикологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

8 сентября 2021

Как определить с молоками селедка или с икрой

Кому-то нравится икра, кому-то молока, кто-то не ест ни то, ни другое. Многие предпочитают мясо именно самцов, считая, что оно вкуснее и жирнее, поскольку самка тратит ресурсы на вынашивание икринок. Как же выбрать селедку, точно зная какого она пола, сообщает сетевое издание для рыболовов «Рыбком. Рыболовный компас». «Простой, но очень эффективный способ определения пола селедки при покупке. Гарантия не 100%, но 95 — точно! Бывают, конечно, самцы с крупными молоками и самки с небольшим количеством икры, но в целом способ работает», — сообщает источник. Самец: Спинка покатая и горбатая, нос узкий, вытянутый, брюшко поджато, на ощупь мягкое. Самка: Спинка ровная, почти прямая, нос короче и круглее, брюшко объемное, как бы свисает, на ощупь плотное. На иллюстрации наглядно видно, что самец и самка практически зеркально отличаются друг от друга! <img width="500" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/209/a56e18629bdd36ac17bbf6c7057b1c5b.jpg" height="500"> <hr> Источник: <a href="https://rusfishjournal.ru/news/">журнал "Русская рыба"</a> Фото: <a href="https://rusfishjournal.ru/news/">журнал "Русская рыба"</a>

Читать

29 августа 2021

Гибриды серебряного карася с карпом

Карасекарповые гибриды представляют существенный интерес с рыбохозяйственной точки зрения, поскольку совмещают в себе ценные качества обоих родительских видов: повышенную устойчивость к неблагоприятным факторам среды, свойственную серебряному карасю и высокую скорость роста, характерную для карпа. Гибриды обладают высокой толерантностью к дефициту кислорода (Балашов, Рекубратский, 2011), что позволяет получать рыбную продукцию при использовании заморных водоемов. Они более устойчивы, чем карп к болезням и другим неблагоприятным факторам среды. Мясо гибридов обладает высокими диетическими качествами и поэтому эти рыбы пользуются повышенным спросом у населения. Получаемые от скрещивания серебряного карася и карпа гибриды F1 в основном стерильны. Однако встречаются отдельные плодовитые самки (Головинская и др., 1965). Проведённые кариологические исследования (Черфас, 1969; Емельянова, 1984) показали, что такие самки полиплоидны и продуцируют яйцеклетки с диплоидным набором хромосом. Поскольку гибридные самцы стерильны, воспроизводство карасекарпов осуществляют с помощью индуцированного гиногенеза. К настоящему времени получено уже седьмое последовательное поколение гиногенеза (рис. 1). Репродуктивная функция гибридных самок при этом значительно улучшилась, что даёт возможность их практического использования для получения стерильных триплоидных гибридов (Черфас и др. 1981). <img width="600" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/84c/20.07.2021%201.jpg" height="305"> Рис. 1. Самка карасекарпа (седьмое поколение гиногенеза) В настоящее время на экспериментальной базе «Якоть» имеется три формы карасекарповых гибридов: диплоидная гиногинетическая форма (самки) и две триплоидные стерильные формы, получаемые от возвратного скрещивания диплоидных гиногинетических самок с самцами карпа (Fbк) или карася (Fbск) (рис 2). <img width="600" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/094/20.07.2021%202.jpg" height="450"> Рис. 2. Схема получения триплоидных гибридов Триплоидные гибриды значительно превосходят карпа по выживаемости на первом и втором годах жизни (рис. 3), что соответственно положительно отражается на выходе товарной продукции. <img width="600" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/924/20.07.2021%203.jpg" height="450"> Рис. 3. Сравнение стерильных триплоидных гибридов с исходными формами: серебряным карасём и карпом Стерильных триплоидных гибридов можно выпускать в естественные водоемы без нанесения ущерба аборигенным видам рыб. Под воздействием мужского гормона гиногинетичиские самки могут быть превращены в нормально функционирующих самцов, также способных давать диплоидные половые клетки. При скрещивании таких самцов-инверсантов с гиногинетическими самками можно получить тетраплоидное плодовитое потомство. Среди возвратных на серебряного карася гибридов встречаются отдельные фертильные особи, продуцирующие триплоидные яйцеклетки. При скрещивании таких самок с обычными самцами карпа получено тетраплоидное потомство, представленное плодовитыми самками и самцами. Фактически, экспериментально получен новый полиплоидный вид рыбы, объединяющий в себе хромосомные комплексы двух исходных видов: карася и карпа. Результаты этих исследований имеют важное научное значение, так как вскрывают механизм одного из эволюционных путей возникновения новых полиплоидных видов рыб. Из книги Породы и кроссы карпа и карасекарповые гибриды селекции ВНИИПРХ / Катасонов В.Я, Поддубная А.В., Рекубратский А.В, Дементьев В.Н., Симонов В.М., Шарт Л.А. //. Рыбное, 2013. С. 20-23. <hr> Литература Балашов Д.А., Рекубратский А.В. Отношение гибридов карпа Cyprinus carpio и серебряного карася Carassius auratus к дефициту кислорода // Вопр. ихтиологии. – 2011. – Т. 51, № 5. – С. 665-669. Головинская К.А. Ромашов Д.Д. Черфас Н.Б. Однополые и двуполые формы серебряного карася (Carassius auratus gibelio Bloch) // Вопросы ихтиологии, 1965. Т. 5. вып 4(37). С. 614-629. Емельянова О.В. Цитологическое исследование процессов созревания и оплодотворения у гибридов серебряного карася с карпом. // Цитология. 1984. Т. 26. С. 1427-1433. Черфас Н.Б. Основные итоги цитогенетического анализа однополой и двуполой форм серебряного карася // Генетика селекция и гибридизация рыб. М.: Наука, 1969. С.85-98. Черфас Н.Б., Гомельский Б.И., Емельянова О.В., Рекубратский А.В. Триплоидия у возвратных гибридов серебряного карася с карпом // Генетика. 1981. Т. 17. С. 1136-1138.

Читать

19 августа 2021

Черная львинка: перспективы использования

Основным источником белков при кормлении свиней, птицы и рыбы является рыбная мука и продукты переработки сои (шрот, концентрат). Рыбная мука – важный компонент корма птиц, свиней и рыб, однако ее стоимость из года в год неуклонно растет, а увеличение объемов производства в связи с истощением водных ресурсов ограничено. Соевые продукты – это растительные белки, которые не являются полноценной заменой белкам животного происхождения. Кроме того, климатические особенности России не позволяют выращивать сою в нужном объеме, делая отечественное животноводство зависимым от импортных поставок. Все это вынуждает ученых и кормопроизводителей искать альтернативные источники белка. В настоящее время в рыбной комбикормовой промышленности интенсивно ведутся поиски нового качественного сырья, источника животного протеина, заменителя рыбной муки. Предпринимаются попытки использовать производные сои, всевозможные растительные белковые концентраты, животные белковые концентраты, полученные не из рыбного сырья, в том числе кормовых добавок из насекомых. Речь идет о таком виде насекомом, как муха черная львинка. Муха Черная львинка (Hermetia illucens, или Черный солдатик – Black Soldier Fly) – это крупная американская муха из семейства львинок (Stratiomyidae). Муха Черная львинка – насекомое, вызывающее большой научный и практический интерес. Личинки мухи полезны не только как корм для домашних животных, но и как корм для рыбных ферм и сельскохозяйственных представителей. Черная львинка является наиболее перспективным для промышленных масштабов производства. Это обосновано биологическими особенностями этого вида, которые и становятся его преимуществами. Разводить насекомых очень просто и к тому же быстро: необходимо 20 дней для выращивания личинки. Для полного цикла воспроизводства потребуется полтора месяца. Этот вид обладает способностью питаться почти всеми видами пищевых и сельскохозяйственных отходов. Насекомые полностью безопасны и безвредны для человека: взрослые особи малоподвижны, не имеют развитого ротового аппарата, вследствие чего не питаются, не кусаются, не разносят болезни. Личинки содержат в среднем 40% белка и 35% жира, и отличаются богатым химическим составом жирных кислот и аминокислот. Был проведен ряд исследований по использованию сырья из личинок мухи львинки в кормлении ценных видов рыб (осетр, форель, тиляпия). Было показано, что кормовое сырье обладает высокими питательными свойствами и хорошими показателями переваримости питательных веществ у указанных видов рыб. Использование сушеной личинки мухи черная львинка в роли кормовой добавки может способствовать увеличению прироста животных и рыб и снижению кормовых затрат. Личинки способны эффективно перерабатывать органические отходы, в том числе экскременты свиней и птиц, накапливая в своем организме комплекс веществ, процентное содержание которых зависит от диеты питания. Субстрат, в котором находились личинки, в результате их питания и роста преобразуется в биоудобрения. По мимо всего прочего из взрослых особей (мух) можно выделять природные полимеры — хитин и меланин. Из хитина можно производить хитозан и использовать в кормлении животных, фармацевтике, химической промышленности. Это очень ценный материал, который называют полимером будущего. Хитин и хитозан используются как антидотные добавки и средство для лечения некоторых заболеваний рыб. Хитозансодержащие препараты обладают выраженным адгезионным действием и, будучи введены в состав гранулированных кормов, способствуют существенному улучшению их физико-механических свойств. Меланины находят широкое применение в медицине, фармакологии, пищевой и других отраслях промышленности. Из личинок также изготавливают протеиновую муку, которая может быть использована как альтернатива белковым добавкам для спортсменов. Возможно использование жира личинок в косметических средствах, производстве твердого и жидкого мыла. На сегодняшний день уже наработаны технологии получения и производства протеиновой муки, липидов и удобрений из личинок мухи. В настоящее время ВНИРО ведет работу по разработке новых рецептур с использованием протеиновой муки из черной львинки. Таким образом использование личинок мухи львинки является перспективным не только в кормопроизводстве для сельскохозяйственных животных, птиц и рыб, но и в целом возможность использования этих насекомых многогранна. <img width="300" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/c07/19.08.2021%201.jpg" height="200"> <img width="300" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/91c/19.08.2021%202.jpg" height="200"> <hr> Подготовили: лаборатория физиологии и кормления рыб, по материалам электронных сельско-хозяйственных журналов и информационных сайтов сети Интернет

Читать

9 августа 2021

Скромное обаяние бессловесных

В Санкт-Петербурге, в саду Института экспериментальной медицины на Аптекарском острове установлен памятник Собаке в честь научных экспериментов и подопытных животных. По замыслу инициатора его установки, академика И.П. Павлова собака, как основной объект при проведении исследований заслужила благодарность человечества за участие в тяжелых испытаниях, пройденных ею на пути познания научной истины. «Пусть собака, помощница и друг человека, с доисторических времён приносится в жертву науке, но наше достоинство обязывает нас, чтобы это происходило непременно и всегда без ненужного мучительства» - такие слова ученого начертаны на постаменте памятника верному помощнику. Четвероногий друг человечества хоть и терпел ради науки вмешательство в свою частную жизнь, но оно протекало куда как в более комфортных условиях, нежели те испытания, которые проходят объекты рыбоводства, участвующие в разработке новых технологий, кормов, средств лечения и профилактики болезней. Еще бы! Ведь даже для самых простых морфометрических измерений рыбу надо достать из привычной среды обитания, переместить в совершенно непригодную для нее воздушную среду, где ей нечем дышать и невозможно защититься от смены температуры и довольно жестких манипуляций со стороны более сильного внешнего хозяина положения. Да еще неприятность - в безмолвном состоянии никак не оповестить о своем бедственном положении того, кто над тобой. Тут, поневоле мобилизуешь все свои силы и возможности, чтобы выжить, что рыба и делает каждый раз, как только ее извлекают из воды. Правда, надо сказать, что объекты аквакультуры довольно существенно отличаются в своих реакциях на человека от диких сородичей в силу своей предрасположенности к «одомашниванию». Более предрасположенные к мирному сосуществованию с человеком не только выживают в созданной им рукотворной среде, но еще и успешно размножаются. Примером тому служат производители сибирского осетра ленской популяции, приютившиеся на Конаковском осетровом заводе. Некоторые старородящие самки, сами рожденные за 12 лет до начала текущего века, продолжают более 25 лет кряду покорно отдавать черную икру под нажимом упорных рыбоводов и химических стимуляторов, не заглядывая в глаза самцам, отдающим сперму неизвестно кому при том же посреднике. Сколько новых поколений сибирских осетров и их промышленных гибридов, рожденных от этих самок и самцов, заполнили собой производственные мощности рыбоводных предприятий на просторах нашей родины. Медаль осетровой матери-героини могла бы украсить их грудь, да вешать не на что. Согласно популярной теории Г. Селье о стрессе и его последствиях, которая нашла свое подтверждение в практике медицины и животноводства, пребывание в состоянии стресса имеет два исхода: стимулирование развития защитной реакции организма на любые вмешательства в ординарный ход физиологических процессов, либо угнетение систем защиты от вмешательства, если возмущающее действие стрессора велико по силе и/ или продолжительности. Применить рекомендацию И.П. Павлова об упразднении ненужного мучительства при работе с рыбой ученым-ихтиологам и рыбоводам вряд ли удастся - в разных средах сосуществуем - а вот понять проблемы своих подопечных объектов, постараться их учесть и по возможности смягчить, задача трудная, но выполнимая. И, решая ее, никак не обойтись без знаний в области физиологии рыб, которые были добыты и постоянно пополняются тем же самым образом, которым совершал свои открытия великий физиолог- то есть методом научного эксперимента. Экспериментальные условия в рыбоводстве – это моделирование в небольших объемах воды и с небольшим количеством рыбы тех или иных нововведений в рыбоводный процесс, которые осуществляются, чтобы превзойти уже освоенные рыбоводами достижения (в части рыбоводной эффективности, изменения товарных характеристик объектов, повышения их устойчивости к действию повреждающих факторов). Сопоставить нововведение с предшествующим аналогом и оценить достигнутый эффект можно разными способами: по конечному рыбоводному результату, по текущим изменениям продукционных показателей, наблюдаемым в ходе контрольных рыбоводных мероприятий, по интегральным параметрам физиологического благополучия, без которого не бывает успешного завершения рискованных предприятий. О физиологическом благополучии чаще всего судят на основе физиолого-биохимического анализа крови и других тканей рыб (половых желез, мышц, печени, селезенки и т.д.) отражающего вектор текущих изменений в организме. Получение этих данных – дело хлопотное в силу выше перечисленных обстоятельств, требует соблюдения определенных правил и часто связано со вскрытием рыбы, то есть летальным исходом для объекта. Из тканей, доступных для анализа прижизненно, только кровь и гонады могут быть изъяты без причинения рыбе существенного урона. Но и здесь для получения достоверного результата нужно соблюдать основные правила минимизации вмешательства – « не навреди», то есть действуй быстро и нежно. Для ослабления обловного стресса и воздействия манипуляций в последние годы все чаще используются анестетики, в числе которых неплохо зарекомендовала себя суспензия гвоздичного масла. Эта уловка на некоторое время обездвиживает рыбу, но не избавляет от неприятностей по восстановлению функций в полном объеме после анестезии (как это наблюдается и с человеком, или теплокровными животными, прошедшими через процедуру общего наркоза). Поэтому, при всем удобстве работы с анастезированной рыбой, нельзя забывать о времени, в течение которого не работают ее жабры, и искать способы их искусственной вентиляции по аналогии с наркотизированным человеком, за которого работает аппарат ИВЛ. Некоторые исследователи используют для этих целей орошение жаберных полостей водой, обогащенной кислородом. После повреждения покровных тканей любое кровотечение в водной среде может сохраняться довольно продолжительно. Эволюция постаралась оградить рыбу от летальной кровопотери при случайных или умышленных повреждениях, расположив на поверхности ее тела внушительный слой слизи с веществами, способствующими свертыванию крови. Поиск компромисса между тем, что мы хотим, и тем, что можем себе позволить в отношении нашего объекта исследования привел к появлению следующих простых и проверенных правил работы. Поимка рыбы из мест привычного обитания должна проходить быстро с немедленным перемещением в ведро с водой, взятой из той же экспериментальной емкости. Рабочее место исследователя необходимо максимально приблизить к привычному для рыбы месту обитания. Извлечение объекта из ведра желательно проводить с использованием салфетки, смоченной в той же воде, ею оборачивают переднюю часть туловища рыбы вместе с головой, смягчая тем самым осушение на воздухе кожных покровов и жабр, а также возможный на воздухе температурный перепад. Для пункции хвостовых сосудов используют одноразовую стерильную инъекционную иглу малого диаметра (исключается инфицирование тканей, не мешает поверхностная слизь). Сразу после получения крови место прокола затирается слизью, богатой тромбокиназой – ферментом, способствующим остановке кровотечения, и рыба переносится в садок для контроля за ее состоянием. Свежеполученная кровь пастеровской пипеткой переносится в пробирку с антикоагулянтом и на часовое стекло для взятия пробы на концентрацию гемоглобина. По капле крови требуется для анализа содержания глюкозы, лактата и триглицеридов, на изготовление мазка для подсчета форменных элементов. На все - про все уходит не более 1 минуты. В течение этого времени механизмы проявления вторичной стрессовой реакции (увеличение уровня глюкозы и лактата в крови) не успевают сработать, и обнаруженные значения показателей отражают состояние рыбы в экспериментальной среде обитания, где ведущими факторами влияния являются те самые нововведения, которые мы исследуем. Вот так последовательно, шаг за шагом осуществляется мониторинг физиологического состояния рыбоводных объектов. В сопоставлении с традиционными физиологическими (поведенческой реакцией, объемом вентиляции, оценкой внешнего вида) и продукционными показателями (скорость роста, рыбопродуктивность, выживаемость, оплата корма и проч.) дается заключение о целесообразности изменения технологии, рецептов кормов, лекарственных препаратов, пробиотиков и т.д. Хочется верить, что в обозримом будущем на территории нашего института по аналогии с собакой Павлова, появится наш собирательный образ рыбы-страдалицы, кормилицы, труженицы, испытавшей на себе все тяготы существования в качестве объекта аквакультуры, и оплатившей труд ихтиолога-рыбовода, корпевшего над ее проблемами, рекордными производственными показателями. <img width="500" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/03b/09.08.2021%201.jpg" height="375"> Рисунок 1 - Экспериментальные бассейны <img width="281" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/83b/09.08.2021%202.jpg" height="375"> Рисунок 2 – Перемещение объекта из водной среды в воздушную <img width="281" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/b58/09.08.2021%203.jpg" height="375"> Рисунок 3 – Объект во влажной салфетке готов к отдаче крови <img width="281" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/863/09.08.2021%204.jpg" height="375"> Рисунок 4 – Пункция одноразовой иглой за анальным плавником <img width="281" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/818/09.08.2021%205.jpg" height="375"> Рисунок 5 – Останавливаем кровотечение легким массажем места прокола с окружающей слизью <img width="281" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/949/09.08.2021%206.jpg" height="375"> Рисунок 6 – Определяем концентрацию глюкозы в крови объекта на гемометре <img width="281" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/99b/09.08.2021%207.jpg" height="375"> Рисунок 7 – Отмер крови для определения концентрации гемоглобина <img width="499" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/64c/09.08.2021%208.jpg" height="375"> Рисунок 8 – Выпуск объектов в привычную среду <hr> Подготовили: лаборатория осетроводства и акклиматизации Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

30 июля 2021

Питательные среды для лабораторной диагностики бактериозов рыб

В лабораториях, проводящих микробиологические исследования, основными целями являются поддержание жизнеспособности, восстановление жизнеспособности, выращивание и/или подсчет широкого спектра микроорганизмов. Во всех традиционных методах микробиологического культивирования, а также во многих альтернативных методах используют питательные среды. Питательная среда - однокомпонентный или многокомпонентный субстрат, применяемый для культивирования микроорганизмов или культур клеток высших организмов. Классификация микробиологических питательных сред В микробиологии питательные среды разделяют на: 1. Натуральные (естественные) среды, которые состоят из продуктов животного или растительного происхождения и имеют неопределенный химический состав. К таким средам относятся овощные и фруктовые соки, животные ткани, кровь, молоко, яйца, желчь, сыворотка крови, а так же отвары и экстракты, полученные из различных природных субстратов. 2.Полусинтетические среды, в состав которых наряду с веществами неопределенного состава входят соединения известной химической природы. 3. Синтетические среды, содержат только химически чистые соединения в точно указанных концентрациях, т.е. состав их полностью известен. Преимущества таких сред - стандартность и воспроизводимость с высокой степенью точности. Их используют, главным образом, для экспериментального изучения метаболизма микроорганизмов, реже - для аналитических целей, диагностики, хранения культур. По назначению различают: 1. Питательные среды общего назначения (базовые питательные среды) - пригодны для выращивания многих видов микроорганизмов и могут применяться в качестве основы для приготовления специальных питательных сред. 2. Специальные элективные (избирательные) среды применяются для выделения микроорганизмов из мест их естественного обитания или получения накопительных культур. Эти среды обеспечивают преимущественное развитие одного вида или группы микроорганизмов, что достигается путем создания оптимальных условий для развития для одних микроорганизмов, т.е. положительной селекцией, или угнетением роста других, т.е. методом отрицательной селекции. 3. Специальные дифференциально-диагностические среды- применяют для изучения биохимических свойств и дифференцировки одного вида (рода) микроорганизмов от другого по характеру их ферментативной активности. Дифференцирующие свойства питательной среды создаются путем внесения субстрата, к которому определяется отношение микроорганизма, и соответствующих рН-индикаторов. 4. Специальные консервирующие (транспортные) среды - используются в клинической практике для сохранения жизнеспособности микроорганизмов в период от момента взятия биоматериала до посева, основная цель использования - сохранение жизнеспособности возбудителя и подавление размножения сопутствующей флоры в период транспортировки образцов. По консистенции различают: 1. Жидкие среды - применяют для изучения биохимических и физиологических свойств микроорганизмов, для накопления биомассы или продуктов обмена, хранения микроорганизмов, плохо развивающихся на плотных средах. 2. Полужидкие среды - используют для хранения культур, реже - для накопления биомассы. 3. Плотные среды - используют для выделения чистых культур, морфологии колоний, диагностических целей, хранения культур, количественного учета, изучения антагонистических свойств. 4. Сыпучие среды - используются для хранения посевного материала, культур-продуцентов в микробиологической и медицинской промышленности. 5. Сухие питательные среды - представляют собой гигроскопические порошки влажностью до 10%, использующиеся для приготовления готовых питательных сред. Свойства питательных сред Питательная среда должна обладать определенным набором свойств: 1. Содержать достаточное количество питательных веществ, микроэлементов, минеральных солей; 2. Иметь определенную вязкость; 3. Иметь определенные влажность и/или кислотность; 4. Быть изотонической, то есть не нарушать нормальное функционирование клеток, проницаемость клеточных мембран; в большинстве случаев, среда должна быть прозрачной. Наиболее широко используемые питательные среды 1. Среда Эндо-дифференциально-диагностическая питательная среда, предназначенная для выделения энтеробактерий. Обладает слабыми селективными свойствами, компоненты среды подавляют рост грамположительных бактерий 2. Эритрит агар - используют для выработки бруцелл. Среда является питательной основой, которая обеспечивает бактерии всеми необходимыми веществами. Кроме того, тиамин и эритрит выступают факторами роста бруцелл. В лабораторной практике можно добавлять различные антибиотики для предоставления среде селективных свойств. 3. Энтерококк агар - позволяет селективно выработать энтерококки и идентифицировать редукцию ТТХ (трифенилтетразолий хлористый). Селективный эффект достигается благодаря присутствию в составе среды азида натрия, который ингибирует рост грамотрицательных и некоторых грамположительных бактерий. Бактерии способные к редукции ТТХ накапливают внутри клеток фармазон, который придает колониям красный цвет 4. Агар Анакера-Ордала - предназначен для культивирования и поддерживания штаммов Flexibacter. 5. Агар Клиглера - предназначен для дифференциации бактерий по способности их ферментировать глюкозу, лактозу и образовывать сероводород. 6. Среда Хью-Лейфсона-предназначена для определения способа утилизации глюкозы или других углеводов у микроорганизмов по аэробному (окисление) и анаэробному пути (ферментация). 7. Висмут-сульфит агар - используют для селективного выделения и дифференциации сальмонеллы. Состав среды вызывает угнетение роста посторонней микрофлоры, а колонии выросшие имеют зеленовато-коричневый цвет. При этом стимулируется рост сальмонелл, а их способность к восстановлению висмута позволяет определить их по почернению колоний и среды под ними. 8. Агар для определения ДНКазы, ГРМ бульон, Мясопептонный агар (МПА), Среды Гисса с углеводами, Реактив Андреде, Среда Сабуро, и.т.д. Этапы приготовления питательной среды 1. Взвешивание: отбирают навески компонентов питательной среды на аналитических весах; 2. Растворение: компоненты питательной среды растворяют в предварительно нагретой до 70 °С дистиллированной воде. 3. Кипячение: растворы питательных сред кипятят в течении 2 мин. 4. Установление pH: ориентировочно производят с помощью индикаторной бумаги, для точного определения пользуются потенциометром. При стерилизации pH снижается на 0,2, поэтому сначала готовят более щелочной раствор. 5. Розлив сред: питательные среды разливают не более чем на 3/4 емкости, так как при стерилизации могут намокнуть пробки и среды утратят стерильность. 6. Стерилизация: для стерилизации питательный сред используют термический способ: стерилизация насыщенным паром под давлением (автоклавирование), дробная стерилизация (тиндализация), кипячение. Режим стерилизации зависит от состава среды и указан в её рецепте. При автоклавировании 3–5 % жидкости теряется в результате испарения, поэтому рекомендуется в приготавливаемые среды добавлять сверх объема примерно 5 % дистиллированной воды. Тогда после стерилизации среда будет иметь требуемую концентрацию. 8. Контроль: • для контроля стерильности среды ставят на 2 суток в термостат, после чего их просматривают. • химический контроль окончательно устанавливает pH, содержание общего и амминого азота, пептона, хлоридов. • для биологического контроля несколько образцов среды засевают специально подобранными культурами, и по их росту судят о питательных свойствах среды. <img width="278" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/d10/30.07.2021%20-%204.jpg" height="181"> <img width="271" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/535/30.07.2021%20-%201.jpg" height="181"> <img width="230" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/3fb/30.07.2021%20-%202.jpg" height="181"> <img width="240" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/fda/30.07.2021%20-%203.jpg" height="181"> <hr> Подготовил: лаборатория ихтиопатологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ»)

Читать

20 июля 2021

«Количественный» и «качественный» анализ воды

Термин «Анализ воды» подразумевают определение качественного или количественного состава веществ, примесей и компонентов, содержащихся в воде. Однако, определение содержания любого элемента требует проведения определенных исследований, а также использования различных методов. При проведении исследований проб воды используют два термина: «качественный» и «количественный» анализ. Аналитическая химия включает оба способа исследований. Качественный химический анализ воды - методы анализа помогают выявить присутствие исследуемого вещества в растворе, есть или нет. Количественный химический анализ воды – методы анализа выявляют точную концентрацию вещества с относительной погрешностью. Количественный химический анализ проб воды выполняют в случае, когда необходимо с точностью определить содержание концентрации вещества, используется в: - оценке соответствия нормативным документам; - определении уровня безопасности; - проведении контроля качества вода в производственных процессах; - научно-исследовательских работах; - при мониторинге водных объектов; а также других областях. <img width="500" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/7c4/20.07.2021%20-%201.jpg" height="333"> <hr> Источник: Здрок А.В., начальник Отдела экологической токсикологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

10 июля 2021

Биология промысловых гидробионтов состояние запасов водных биологических ресурсов Иваньковского и Угличского водохранилищ

Читать

30 июня 2021

Веслонос – новый объект рыбоводства и акклиматизации

Веслонос, Polyodon spathula (Walbaum), представитель ихтиофауны Северной Америки. Впервые был описан Дж. Вальбаумом в 1792 г. Первые исследователи относили этот вид к акуловым рыбам, но в 1875 г. Г. Уайлдером было предложено отнести этот вид к осетровообразным. Руское название этот вид получил в 1954 году – веслонос. Веслонос довольно крупная рыба, достигающая длины более 2 м и массы 80 кг. Тело у веслоноса удлиненное, пргонистое, суживающееся к хвосту. Хвост гетероцеркальный. Наиболее примечательная часть тела – длинный рострум веслообразной формы, составляющий 1/3 длины всего тела. Окраска спины – от голубовато-серой до почти черной, Боков и брюха – светлая, встречаются особи полностью окрашенные в темный цвет. Глаза очень маленькие, зрение развито слабо. Огромный рот расположен в нижней части задней части головы. Перед ртом на вентральной поверхности рострума находятся два усика длиной 3-4 мм. Естественный ареал веслоноса – бассейн р. Миссисипи и ее притоков. Веслонос встречается такде и в р. Алабама, которая не связана с р. Миссисипи, и рыбы, обитающие там, представляют самостоятельную популяцию. Ареал обитания веслоноса имеет протяженность с севера на юг около 2000 км, поэтому условия его существования весьма разнообразны. <img width="900" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/377/30.06.2021%201.jpg" height="306"> Очень своеобразно питание. Питается веслонос преимущественно планктоном, размер потребляемых организмов зависит от расстояния между жаберными тычинками и возрастает по мере увеличения массы рыбы. Зоопланктон преобладает в пищевом комке у сеголеток. Взрослые особи потребляют также личинки водных и земных насекомых, кладоцер, веслоногих ракообразных, малощетинковых червей, пиявок, водоросли и фрагменты водных растений. Основными врагами веслоноса в природе являются миноги, которые присасываются к туловищу позади головы и встречаются на многих выловленных особях. Веслонос – крупная быстрорастущая рыба. Особенно интенсивно он растет на первом году жизни. Продолжительность жизни достаточно велика и достигает иногда до 30 лет. Как объект промысла веслонос известен с конца XIX века, когда стал основным источником производства икры. В 30-ч годах XX столетия в Америке ежегодно поступало в продажу около 4000 кг икры веслоноса. Последовавшее в последние десятилетия повышение цен на икру и связанное с этим увеличение промысла существенно подорвали естественное воспроизводство веслоноса, а ухудшение экологической обстановки и увеличение строительства гидротехнических сооружений способствовали сокращению мест нереста и численности популяций. Это послужило основанием для организации работ по искусственному разведению веслоноса. Быстрый рост, высокие вкусовые качества, деликатесная икра ставят веслоноса в ряд наиболее ценных рыб нашей планеты. Веслонос впервые был предложен в качестве объекта для вселения в южные водоемы европейской части СССР профессором Б.С. Ильиным (1960 г). Его акклиматизация проводится с 1974 г. Биологическое обоснование на акклиматизацию веслоноса в СССР было разработано в отделе акклиматизации ВНИИПРХ под руководством в отделе д.б.н., профессора В.К. Виноградова и к.б.н. Л.В. Ерохиной. Поставки веслоноса в СССР осуществлялись при содействии Бюро Спортивного рыболовства США в 1974, 1976 и 1977 гг. Доставленные предличинки распределялись в основном в три географические точки страны: Северный Кавказ (экспериментальный рыборазводный завод – р/з «Горячий ключ»), Украина (Донрыбокомбинат), Нижнее Поволжье (Икрянинский экспериментальный осетровый рыбоводный завод). Решение научных задач было распределено между научно-исследовательскими организациями «Горячий ключ»- ВНИИПРХ, Донрыбокомбинат – ВНИРО, Икрянинский ОРЗ – ЦНИОРХ. Поставленные перед исследователями задачи успешно были решены сотрудниками лаборатории акклиматизации ВНИИПРХ на базе р/з «Горячий ключ». Там же были проведены основные работы по изучению биологии и разведению веслоноса. В 1984 г. впервые в практике мировой аквакультуры сотрудником ВНИИПРХ Е.А. Мельченковым было получено потомство от производителей веслоноса, выращенных в прудах. Итогом выполненных исследований явилось руководство по разведению и выращиванию веслоноса. В этой работе обобщен материал многолетних исследований и производственных экспериментов, выполненных сотрудниками отдела акклиматизации ВНИИПРХ. Дано описание технологического процесса разведения веслоноса – от выращивания производителей до получения посадочного материала. На основании литературных данных и собственных исследований описаны особенности биологии веслоноса, представлены функциональная морфология фильтрационного жаберного аппарата и питание, отношение веслоноса к абиотическим факторам при выращивании его в прудах, вопросы подращивания личинкой и выращивание молоди на живых и искусственных кормах, эмбриональное развитие. Приведены рыбоводно-технологические нормы по племенной работе, заводскому способу воспроизводства и товарному выращиванию веслоноса. <img width="362" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/ded/30.06.2021%202.jpg" height="500"> <hr> Подготовили: лаборатория осетроводства и акклиматизации Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

Вы представитель СМИ?

Для получения комментария учёных, организации интервью или съёмок на объектах института напишите в пресс-службу — ответим в течение рабочего дня.

Запрос в пресс-центр Правила работы со СМИ