Вы здесь

Пресс-центр Информаторий · ВНИИПРХ

Анонсы и информаторий

Предстоящие мероприятия, конференции, семинары и события Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО». Следите за афишей института.

Всего записей: 179

Все годы 179 2026 3 2025 4 2024 8 2023 11 2022 31 2021 32 2020 21 2019 28 2018 22 2017 17

20 февраля 2021

Роль зоопланктона в пищевой цепочке водных экосистем

<img width="330" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/b0c/20.02.2021%201.jpg" height="248"> <img width="330" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/296/20.02.2021%202.jpg" height="248"> <img width="331" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/753/20.02.2021%203.gif" height="248"> Зоопланктон – водные животные, которые не могут противостоять течениям и пассивно переносятся вместе с водными массами. В составе зоопланктона встречаются представители большинства типов животного царства. В большинстве водоёмов самая многочисленная группа зоопланктона - мелкие ракообразные. В состав зоопланктона входят также личинки многих животных, пелагическая икра рыб. Организмы зоопланктона питаются фитопланктоном, бактериопланктоном, детритом или более мелкими представителями зоопланктона. Зоопланктон - основа пищевых цепочек в биоценозах пресных водоёмов. Это звено пищевых цепей, связывающее фитопланктон, который образовывает первичную продукцию, с более крупными нектонными и бентосными животными. <img width="299" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/b9c/20.02.2021%204.jpg" height="160"> Рисунок 1 – Трофическая пирамида Одними из самых распространённых организмов зоопланктона пресных вод, являются дафнии, босмины, диаптомусы и циклопы. Исследования роли консументов (организмы не производящие питательные вещества самостоятельно) в формировании структуры и функционировании экосистем в пресных водоемах интенсивно ведутся в течении нескольких десятилетий. Теоретической основой этого направления служат представления о «контроле с верху» трофической пирамиды (рис.1), согласно которым численность и биомасса организмов определенного трофического уровня определяется не только количеством доступных ресурсов, но также прессом организмов последующего трофического уровня. Основная масса зоопланктона представлена видами с фильтрационным типом питания. На их долю в пресных водоемах приходится до 80% общей массы зоопланктона (Петипа, 1981; Иванова, 1985). Именно они играют ведущую роль в трансформации вещества и передаче энергии по трофической цепи от фитопланктона к рыбам. Поэтому изучение участия ракообразных в метаболизме планктона служит важнейшим средством для выяснения всей системы трофических связей в водоеме. Изучая зоопланктон безрыбных и зарыбляемых прудов, в первых доминируют крупные кладоцеры Daphnia, в то время как в зарыбляемых прудах зоопланктон представлен мелкими ракообразными. В отсутствие рыб-планктофагов крупный зоопланктон монополизирует имеющиеся ресурсы, а мелкие виды элиминируются из состава сообщества (Brooks, Dodson, 1965) Крупный зоопланктон очень чувствителен к прессу позвоночных хищников. Следуя из этого, крупные виды зоопланктона вырабатывают различные приспособления для уменьшения эффективности их пресса, например, совершают вертикальные миграции, при которых они в дневное время мигрируют в нижние слои воды, куда свет не достигает и где они становятся невидимыми для рыб, а в ночное время поднимаются в верхние трофогенные слои для питания. Это помогает им избегать планктофагов и поддерживать высокую плотность популяции даже при высокой численности рыб в водоеме. Однако вертикальные перемещения требуют затрат энергии, а при погружении за пределы эвфотной зоны зоопланктеры оказываются в слоях, бедных пищей, что снижает скорость воспроизводства их популяции (Morin, 1987; Gliwicz, 2003) Таким образом, рыбы-планктофаги могут быть важным регулятором структуры и интенсивности потоков энергии в пелагиали водоемов, включая изменения в обмене веществом и энергии между поверхностными и природными слоями водоема. Несомненно, в природе пищевые связи разграничены не так четко. Чаще всего в водоеме одновременно присутствует и тот, и другой варианты пищевой цепи. Говоря о пастбищной или детритной пищевой цепи, здесь имеется в виду преобладание одной из них над другой. Показано, что в низкопродуктивных водоемах основную роль играют пастбищные пищевые цепи, а в высокопродуктивных, большое значение приобретают детритно-бактериальные. Следует также иметь в виду, что первичная продукция, использованная в пищу фильтраторами, частично возвращается в среду в виде продуктов обмена (жидких и твердых выделений), которые в дальнейшем разлагаются бактериями до биогенных элементов. У фитофагов иногда до 90% общего количества потребленной пищи не усваивается и выделяется в виде экскрементов. Мертвое органическое вещество (детрит) и фекальные пеллеты используются в пищу как микроорганизмами, так и самим же зоопланктоном. Копрофагия в водных экосистемах играет важную роль в пищевых цепях (Секи, 1986). Минимальный размер частиц, потребляемых фильтраторами, определяется густотой фильтрующего аппарата. В зависимости от способности отфильтровать одиночные бактериальные клетки, ракообразных-фильтраторов условно разделяют на «тонких» и «грубых» фильтраторов. «Тонкие» фильтраторы являются активными потребителями одиночных бактериальных клеток и могут довольно долго существовать на этом виде корма, тогда как минимальный размер частиц, потребляемых «грубыми» фильтраторами, часто выше, чем размер бактерий. Они потребляют в лучшем случае агрегированные бактериальные клетки. К «тонким» фильтраторам относят основную массу Cladocera, к «грубым» - многие Copepoda с фильтрационным типом питания (Lampert, 1974). Отмечено, что во время массового развития крупных колониальных форм водорослей, несмотря на одновременное увеличение численности кормовых водорослей, снижались плодовитость и численность многих видов ракообразных. Крупные колонии водорослей могут быть токсичными или неполноценными в пищевом отношении для планктонных ракообразных, или засорять их фильтрационный аппарат. Это снижает потребление кормовых водорослей и уменьшает рацион животных. Снижение потребления пищи дафниями является одной из причин, из-за чего происходит снижение плодовитости рачков в водоеме при увеличении количества цианобактерий (Gliwicz, 2003). Однако на увеличение концентрации крупных цианобактерий разные виды кладоцер реагируют неодинаково. Как уже отмечалось выше, потребление колониальных форм водорослей в естественных условиях зависит от размера колоний. Последние определяются состоянием популяции тех или иных видов водорослей, динамичностью водных масс и многими другими факторами. Размеры колоний водорослей в водоемах колеблются в широких пределах, от «съедобных» до «несъдобных». В зависимости от доминирования тех или иных размерных групп они с разной интенсивностью будут потребляться фильтраторами. Таким образом, интенсивность пресса зоопланктона на фитопланктон является важным фактором, определяющим продуктивность и состав сообщества планктонных продуцентов. В ходе сезонной сукцессии наблюдается закономерная смена весеннего планктона с преобладанием мелких продуцентов (мелких быстро растущих видов водорослей) и консументов (инфузорий и коловраток) с высокой скоростью оборота биомассы, на летний планктон с преобладанием крупных организмов (крупных и колониальных видов водорослей и рачкового зоопланктона). Трофодинамическим следствием этой сукцессии служит переход от весеннего сообщества с одними-двумя трофическими уровнями к летнему сообществу с двумя-тремя уровнями, а также от высокой весенней продуктивности к более низкой летней. ЛИТЕРАТУРА · Иванова М.Б. Продукция планктонных ракообразных в пресных водах . - Л.: ЗИН АН СССР, 1985.- 222 с. · Петипа Т.С. Трофодинамика копепод в морских планктонных сообществах. Закономерности потребления и превращения вещества и энергии у особи. – Киев: Наукова Думка, 1981.- 243 с. · Секи Х. Органическое вещество в водных экосистемах. - Л.: Госкомгидромет, 1986.- 199 с. · Broocks J.L., Dodson S.I. (1965) Predation, body size and composition of plankton. Science 150: 28 -35 · Gliwicz Z.M.(2003) Zooplankton. In: O,Sullivan P.E., Reynolds C.S. (eds.) The lakes handbook. Vol. 1. Limnology and limnetic ecology. Malden, Oxford: Blackwell Publishing, p. 461-516. · Lampert W. A method for determining food selection by zooplankton. - Limnol. and. Oceanogr.- 1974.- 19, N 6.- рр.995-998. Интернет источники: · <a href="https://ru.wikipedia.org/wiki/">https://ru.wikipedia.org/wiki/</a> <hr> Подготовили: группа гидробиологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

10 февраля 2021

Содержание тяжелых металлов в воде

Тяжелые металлы – это токсичные и крайне опасные элементы, способные значительно ухудшить здоровье человека и даже привести к гибели. Биогенные элементы – это исключение среди тяжелых металлов, которые необходимы всем живым организмам. Атомный вес тяжелых металлов составляет более 50. Загрязнение тяжелыми металлами является одним из значимых показателей токсикологического состояния водоема, поскольку помимо прямого токсического воздействия на водные организмы они оказывают влияние на кислородный режим, окислительно-восстановительные процессы. Загрязнение водных объектов тяжелыми металлами связано с их широким использованием в промышленности, особенно при неудовлетворительной очистке сточных вод, в результате чего тяжелые металлы попадают в окружающую среду, в том числе и в водные экосистемы. В настоящее время в России действует ГОСТ 17.4.1.02-83, в соответствии с которым химические вещества, в том числе и металлы, по степени токсического действия на окружающую среду подразделены на три класса: 1 – As, Cd, Hg, Pb, Zn; 2 – В, Со, Ni, Mo, Cu, Sb, Cr; 3 – В, V, W, Mn, Sr; Среди металлов - токсикантов выделяют приоритетную по степени опасности для биоты группу тяжелых металлов, в которую входят кадмий, медь, мышьяк, никель, ртуть, свинец, цинк и хром. Из них ртуть, свинец и кадмий наиболее токсичны. Источники появления тяжелых металлов в воде Содержание тяжелых металлов в воде обусловлено двумя факторами: - антропогенным; - природным. Одним из главных источников поступления тяжелых металлов в водные экосистемы является диффузионный сток с агроценозов интенсивной агротехники, использующих удобрения и пестициды, в состав которых входят тяжелые металлы. Так, источником цинка и меди может быть навоз; свинца и никеля – фосфорные удобрения и известь; кадмия – фосфорные и калийные удобрения. Тяжелые металлы в воде имеют высокую биологическую активность, благодаря чему им не составляет труда внедриться в обменные процессы организма, вытеснить полезные вещества и нарушить метаболизм. Влияние тяжелых металлов на организм человека Медь – приводит к болезням костной системы, печени, анемии; Цинк – приводит к развитию раковых клеток; Ртуть – приводит к головным болям, нервно-психическим нарушениям, нарушениям речи, снижению мозговой активности и памяти; Кадмий – приводит к деформации костей, влияет на почки. Методы определения тяжелых металлов в воде Определить тяжелые металлы в воде можно электрохимическим способом (анализ вольтамперных характеристик) и спектрометрическим. Методы очистки воды от тяжелых металлов: Сорбентный – глубокое очищение за счет связывания химических веществ и примесей на молекулярном уровне; Посредством ионного обмена – очищение происходит за счет процесса обмена между ионами в растворе и на поверхности твердой фазы; Установка мембранного фильтра – действует на молекулярном уровне, относится к системе глубокой очистки; Гальваническая очистка – предотвращение попадания загрязненной производственной воды в окружающую среду; Магнитная очистка – притяжение тяжелых металлов к магнитному полю; Дистилляция – испарение жидкости и последующее ее охлаждение с целью отделения вредных и тяжелых веществ. <img width="900" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/06a/10.02.2021%20(3).jpg" height="224"> <img width="400" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/628/10.02.2021%20(1).jpg" height="266"> <img width="399" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/cbe/10.02.2021%20(2).jpg" height="266"> <hr> Источник: Здрок А.В., начальник Отдела экологической токсикологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

31 января 2021

Соблюдение биологической безопасности при организации работ с ПБА 3-4 групп опасности в лабораториях

Организация работ с ПБА III-IV групп опасности в лаборатории осуществляется в строгом соответствии с требованиями действующих санитарно-эпидемиологических правил. На время проведения экспериментальных или диагностических работ с культурами или материалами доступ в лабораторию ограничивается. Разрешение на посещение лаборатории выдает заведующий лабораторией. Посещение посторонними лицами осуществляется в сопровождении сотрудника лаборатории после прекращения работ и проведения текущей дезинфекции и регистрируется записью в журнале посещений. Не допускается курение, прием пищи, воды, хранение продуктов питания, личных вещей в рабочей зоне. Прием посетителей, хранение пищевых продуктов, прием пищи разрешаются только в специально отведенных местах в "чистой" зоне лаборатории. Персонал должен использовать средства индивидуальной защиты (халаты, шапочки, спецобувь, маски, резиновые перчатки и защитные очки). Дезинфекционная обработка рук осуществляется персоналом после работы с патогенным материалом, после снятия перчаток, перед выходом из «заразной» зоны. Обязательна смена спецодежды при смене зоны работы. Доставка в лабораторию материала для исследований должна осуществляться в маркированных, имеющих международный знак "Биологическая опасность", контейнерах, биксах, сумках-холодильниках. Доставляемые емкости с жидкими материалами должны быть закрыты пробками, крышками, исключающими выливание содержимого во время транспортирования. Дно контейнеров, содержащих емкости с ПБА, должно быть покрыто адсорбирующим материалом. Не допускается доставка материала в хозяйственных сумках, чемоданах, портфелях и других предметах личного пользования. Прием и разборка доставленного материала должны проводиться с соблюдением мер предосторожности на подносе или лотке, покрытом многослойной марлевой салфеткой, смоченной дезинфицирующим раствором. Лабораторное оборудование и средства измерений, предназначенные для исследований, должны быть исправными и поверяться в установленные сроки. Лабораторная посуда, пипетки, шприцы перед использованием проверяются на целостность и исправность. Основным оборудованием для ограничения распространения брызг или аэрозолей, содержащих инфекционный материал и обеспечения физической защиты работающего персонала, воздуха и поверхностей рабочей зоны, а также окружающей среды от исследуемых микроорганизмов, являются боксы биологической безопасности с ламинарным потоком, создающим защитную воздушную завесу. Все работы с патогенными агентами III-IV групп опасности - отбор биологического материала для бактериологических и вирусологических исследований, заражение культуры клеток, приготовление суспензий, ведение коллекционных штаммов, идентификация и изучение выделенных штаммов микроорганизмов и вирусов III-IV групп и пр., осуществляются в боксах биологической безопасности II класса (рис. 1). <img width="250" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/1a6/31.01.2021%201.jpg" height="301"> Рисунок 1 – Ламинарный бокс БМБ II класса для бактериологических исследований в «заразной» зоне Бокс устанавливают в рабочем помещении "заразной" зоны максимально удаленно от путей перемещения персонала, вне возможных возмущений воздушных потоков. Обязательная процедура подтверждения защитной эффективности бокса – валидация проводится после его установки, монтажа и подготовки к использованию на месте эксплуатации, в последующем – при эксплуатации: не реже одного раза в год; после перемещения на новое место эксплуатации; после технического обслуживания бокса (замена фильтра, замена вентилятора и пр.). Техническое освидетельствование и валидация бокса должны осуществляться только специализированной аккредитованной организацией. Все работы в боксах биологической безопасности должны проводиться на поддонах с салфетками, смоченными дезинфицирующим раствором и выполняться ближе к задней стенке бокса. Перед началом работы в боксе должна быть включена вентиляция. Перед загрузкой исследуемого материала в рабочий объем бокса необходимо проверить исправность оборудования в боксе, наличие аварийного запаса дезинфицирующих средств. После удаления контейнеров с ПБА переднюю панель бокса биологической безопасности опускают, внутри бокса включают УФ-бактерицидные лампы. В «заразной» зоне лаборатории не допускается оставлять рабочее место во время работ с патогенными агентами; оставлять нефиксированные мазки и посуду с ПБА после окончания работы на рабочих местах. Не допускается пипетировать ртом, переливать жидкий инфекционный материал через край сосуда (пробирки, колбы, флакона и др.). При пипетировании необходимо пользоваться только резиновыми грушами или дозирующими устройствами. Использованные пипетки полностью (вертикально) погружаются в дезинфицирующий раствор, избегая образования в каналах пузырьков воздуха. Бактериологическая петля должна быть замкнута в непрерывное кольцо и иметь плечо длиной не более 6 см. Допускается использование одноразовых промышленно изготовленных петель с большей длиной плеча. Не допускается сливать жидкие отходы (инфицированные жидкости, исследуемый материал и т.д.) в канализацию без предварительного обеззараживания. После окончания работы все объекты, содержащие ПБА, должны быть убраны в хранилища (холодильники, термостаты, шкафы и т.д.). В обязательном порядке проводится дезинфекция рабочих поверхностей столов с применением раствора дезинфицирующего средства (ДС). При проведении текущей (ежедневно) и генеральной уборок (еженедельно) все поверхности в помещениях, наружные поверхности приборов, оборудования в «заразной» зоне дезинфицируют способом протирания тканевой салфеткой или ветошью, смоченными раствором ДС. Концентрация раствора, его расход, продолжительность и кратность обработки выбираются согласно инструкции по применению ДС. Для дезинфекции допускается использование только разрешенных к промышленному выпуску и применению в Российской Федерации дезинфицирующих средств и оборудования – паровых и воздушных стерилизаторов, распыливающих устройств, бактерицидных облучателей, бактериальных фильтров, стерилизационных коробок и т.д. В лаборатории должен иметься, по меньшей мере, месячный запас средств дезинфекции. Остатки ПБА, использованная посуда, твердые отходы из "заразной" зоны лаборатории должны собираться в закрывающиеся емкости с соответствующей маркировкой и передаваться в автоклавную для обеззараживания или дезинфицироваться на месте. Слив необеззараженных жидкостей в канализационную сеть запрещается. Методы и средства обеззараживания определяются в каждом отдельном случае в зависимости от ПБА и характера обеззараживаемого материала. При проведении дезинфекции предпочтение следует отдавать физическому методу вследствие его надежности и безопасности для персонала. После завершения работы помещение "заразной" зоны лаборатории запирается и опечатывается. При наличии коллекции культур микроорганизмов дополнительно опечатываются их хранилища. Опечатывание и снятие печатей производят сотрудники лаборатории, имеющие разрешение руководителя лаборатории (подразделения). Хранение ПБА, их учет, передачу, транспортирование и уничтожение проводят в соответствии с требованиями действующих нормативных документов. Обязательное обеззараживание перед их удалением из лаборатории эпидемиологически опасных отходов деятельности с ПБА III-IV групп, относящихся к медицинским отходам класса Б, производят на месте образования любым способом, утвержденным действующими санитарными правилами: физическим (паровым методом - автоклавированием, токами сверхвысокой частоты (СВЧ), кипячением), химическим (с применением растворов средств дезинфекции) или сжиганием. Автоклавирование насыщенным водяным паром при избыточном давлении проводят в паровых стерилизаторах (автоклавах) (рис. 2). <img width="250" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/1b6/31.01.2021%20.jpg" height="334"> Рисунок 2 – Автоклав (горизонтальный паровой стерилизатор) для обезвреживания опасных отходов деятельности с ПБА - медицинских отходов класса Б При этом осуществляется обязательный контроль за эффективностью процесса дезинфекции/стерилизации с помощью одноразовых индикаторов: химических – при каждом цикле автоклавирования; биологических – 2 раза в год, после ремонта или при получении неудовлетворительных результатов (рис. 3). Контроль за температурой процесса проводится 2 раза в месяц с использованием максимального термометра. Выбор режима автоклавирования и дезинфекции опасных отходов класса Б осуществляется согласно рекомендациям действующих санитарных правил, в зависимости от вида патогенного агента. <img width="459" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/365/31.01.2021%202.jpg" height="345"> Рисунок 3 – Химические и биологические индикаторы процесса дезинфекции/стерилизации. Пакеты для автоклавирования. Индикаторная клеющая лента При невозможности обеззараживания отходов на месте их образования, они должны быть помещены в прочный герметично закрывающийся контейнер, который перед удалением из лаборатории обрабатывается раствором ДС. Упаковка материалов, которые будут обеззаражены вне лаборатории, должна проводиться согласно соответствующим правилам и инструкциям. Удаление из помещения лаборатории и последующую утилизацию отходов класса Б должна осуществлять специализированная уполномоченная организация. На случай аварии, при которой создается реальная или потенциальная возможность выделения патогенного биологического агента в воздух производственной зоны, среду обитания человека и заражения персонала, в лаборатории должен быть разработан план ликвидации аварии, иметься запас дезинфицирующих средств, активных в отношении возбудителей, с которыми проводят исследования, аварийная аптечка. Состав аварийной аптечки представлен в санитарно-эпидемиологических правилах СП 1.3.2322-08 «Безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней». Правилами предусмотрено проведение плановых тренировочных занятий по ликвидации аварий при работах с ПБА не реже 1 раза в год. В лаборатории на основании действующих нормативных документов (санитарных правил, гигиенических нормативов и др.), должна быть разработана и выполняться программа производственного контроля за соблюдением требований безопасности при работе с ПБА III - IV групп патогенности. В программе устанавливается перечень вредных факторов и объектов производственного контроля, представляющих потенциальную опасность для человека и среды его обитания (контрольных критических точек), в отношении которых необходима организация лабораторных исследований и испытаний, указываются точки отбора проб, периодичность отбора проб и проведения испытаний, ответственные исполнители. Приказом руководителя организации создается комиссия по контролю за соблюдением требований биологической безопасности при работах с ПБА III - IV групп. Комиссия осуществляет проверки соблюдения требований био- безопасности не реже 2-х раз в год, по результатам проверки составляется акт установленного образца. <hr> Источник: Лаборатория ихтиопатологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

21 января 2021

Соблюдение биологической безопасности при работе с ПБА 3-4 групп опасности в замкнутых системах (лабораториях)

Источниками возможного заражения при работах с патогенными агентами являются прямые контакты с любыми объектами и биологическими материалами, подозрительными на их содержание – культуры микроорганизмов, зараженные гидробионты, пробы воды и кормов, потенциально контаминированные ПБА; загрязненное оборудование; уборка помещений зоны проведения работ с ПБА. Возбудители бактериальных, вирусных и паразитарных заболеваний рыб, выявляемые при лабораторных исследованиях, относятся к микроорганизмам III–IV групп опасности – патогенным биологическим агентам (ПБА) умеренного риска, вызывающим у человека заболевания средней тяжести. Целью обеспечения безопасной работы с патогенными агентами III–IV групп опасности в лаборатории является организация эффективной системы биологической безопасности – комплекса обязательных организационных, санитарно-противоэпидемических (профилактических) мероприятий, направленных на обеспечение личной и общественной безопасности и защиту окружающей среды. Принцип биологической безопасности заключается в ограничении распространения или предотвращение утечки инфекционного материала из лабораторной среды, где с ним производят различные манипуляции или поддерживают в культуре. При этом необходимо иметь полное представление о степени риска, существующего при работе с микроорганизмами, вирусами и паразитами, знать механизмы возникновения опасных ситуаций, использовать приемы и способы безопасной работы, которые позволяют уменьшить или исключить возможность воздействия патогенных биологических агентов на человека. Деятельность лабораторий (замкнутых систем) при работе с ПБА III-IV степеней потенциальной опасности осуществляется на основании лицензии. Соответствие государственным санитарно-эпидемиологическим и гигиеническим требованиям факторов среды, условий деятельности, а также территорий, зданий, строений, сооружений, помещений, оборудования, транспортных средств, используемых при работе с патогенными биологическими агентами III-IV групп опасности должно удостоверять санитарно-эпидемиологическое заключение. На основании действующих санитарно-эпидемиологических норм и правил в лаборатории должна быть составлена рабочая инструкция по биологической безопасности проведения работ с ПБА, описывающая все рабочие процедуры и меры безопасности, предназначенные для минимизации или полного исключения возможного контакта с патогенным агентом. Инструкция является методом, ограничивающим распространение ПБА в лаборатории. Требования к допуску персонала, медицинскому наблюдению за его здоровьем, к помещениям лаборатории, лабораторному оборудованию, средствам защиты, обращению с опасными отходами при организации работ в лаборатории с ПБА III-IV групп опасности устанавливаются Федеральными законами, санитарно-эпидемиологическими правилами, техническими регламентами и другими государственными нормативно-правовыми документами. Для получения допуска к работе с ПБА персонал лаборатории должен быть не моложе 18 лет, не иметь медицинских противопоказаний к вакцинации и лечению специфическими препаратами, иметь высшее или среднее медицинское, биологическое, ветеринарное или иное образование, проходить курсы специализации с освоением методов безопасной работы с ПБА III - IV групп не реже 1 раза в 5 лет и инструктажи по биологической безопасности (первичный – при приеме на работу, периодический – не реже 1 раза в год), проходить медицинские осмотры (первичный – при приеме на работу, периодический – ежегодно). Допуск осуществляется приказом руководителя организации после проверки знаний требований биологической безопасности 1 раз в 2 года. Специалист, получивший допуск к самостоятельной работе с ПБА, несет ответственность за проведение работ с любыми инфекционными агентами или инфицированным материалом. Работы по обеззараживанию ПБА, опасных отходов с использованием автоклава, должен выполнять работник, прошедший профессиональное обучение безопасным методам работы с ежегодной проверкой знаний, имеющий удостоверение на право самостоятельной работы и допуск к работе с сосудами, работающими под давлением на основании приказа руководителя организации. Ответственность за выполнение правил биологической безопасности при осуществлении деятельности лаборатории возлагается на заведующего лабораторией. Выделяют первичное и вторичное ограничения распространения патогенных агентов при работах с инфекционными материалами. Первичное ограничение распространения представляет собой защиту персонала и непосредственно среды лаборатории с помощью средств индивидуальной защиты, использования микробиологических методов и специального оборудования, которое гарантирует безопасную работу (боксы биологической безопасности, автоклавы для обеззараживания опасных медицинских отходов, средства ликвидации аварии). Обязательно своевременное проведение дезинфекционных мероприятий. Вторичное ограничение распространения – это защита окружающей среды от воздействия патогенных агентов. В лаборатории предусмотрены: зонирование лабораторных помещений: «заразная» зона, где проводятся работы с ПБА III-IV групп и осуществляется их хранение, «чистая» зона, в которой не проводятся работы с микроорганизмами и их хранение, поточность технологических процессов, разделение путей движения «чистых» и «заразных» объектов. Вторичными барьерами распространения ПБА являются: международный знак «Биологическая опасность» на входных дверях, ограничение доступа (рис. 1); наличие второго входа для приема материала (рис. 2); санпропускник на границе «чистой» и «заразной» зон; передаточный шлюз с УФ- бактерицидными лампами для исключения возможности проникновения опасных биологических агентов из «заразной» зоны в «чистую» зону при передаче объектов (рис.3); автономная система приточно-вытяжной вентиляции (рис. 4) с элементами обеззараживания отработанного воздуха – бактерицидными лампами и фильтрами тонкой очистки на выходе (проверяются на защитную эффективность не реже 1 раз в год), системы аварийной и пожарной сигнализаций. <img width="350" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/b85/21.01.2021%20%D0%B8%D1%85%D1%82%D0%B8%D0%BE%201.jpg" height="261"> Рисунок 1 – Международный знак «Биологическая опасность» и надпись «Посторонним вход воспрещен» на входной двери лаборатории <img width="339" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/9ea/21.01.2021%20%D0%B8%D1%85%D1%82%D0%B8%D0%BE%202.png" height="261"> Рисунок 2 – Второй вход для приема материала <img width="225" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/fc5/21.01.2021%20%D0%B8%D1%85%D1%82%D0%B8%D0%BE%203.png" height="300"> Рисунок 3 – Передаточный шлюз с УФ - бактерицидными лампами для передачи объектов между зонами <img width="248" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/c53/21.01.2021%20%D0%B8%D1%85%D1%82%D0%B8%D0%BE%204.jpg" height="300"> Рисунок 4 - Конструктивные элементы автономной системы приточно-вытяжной вентиляции <hr> Источник: С.Б. Токарева, главный специалист лаборатории ихтиопатологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ"); М.С. Кукин, ведущий специалист лаборатории ихтиопатологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ"); А.С. Вовк, специалист лаборатории ихтиопатологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

11 января 2021

О современном состоянии рыбных запасов в водоемах рыбохозяйственного значения Тверской области

Читать

26 декабря 2020

"На рыбьем меху": значение фразеологизма и история его появления

В русском языке немало интересных устойчивых словосочетаний, смысл которых непросто понять иностранцам. Но порой даже родившиеся в России люди не могут точно объяснить то или иное выражение и верно его употребить. К примеру, определение, которое однажды слышал каждый: «на рыбьем меху», значение фразеологизма и историю его появления мы постараемся разобрать в нашей статье. У рыбы есть мех? <img width="328" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/02c/16.12.2020%201.JPG" height="306"> С раннего детства нас учат тому, что густая мягкая шерсть – это один из признаков млекопитающих. Тогда почему мы говорим: «На рыбьем меху»? Значение фразеологизма нетрудно объяснить – речь идет об очень плохом качестве утепляющего покрова или полном его отсутствии. У рыб же меха нет? Вот и употребляем мы это крылатое выражение, когда хотим подчеркнуть низкое качество какого-то предмета (чаще одежды) и его неспособность сохранять тепло. История происхождения Фразеологизм «на рыбьем меху» возник из старинной русской народной пословицы. В полном варианте она звучала следующим образом: «У бедняка шуба на рыбьем меху». Ранее так же активно употреблялся фразеологизм: «На стерляжьем меху». Речь шла о нищих, не способных себе позволить достаточно теплую для русской зимы одежду. По мнению некоторых специалистов, эта пословица имела и более глубокий смысл, к примеру, напоминала о том, что узнать статус человека и его материальное положение можно, внимательно разглядев его костюм. Впрочем, сегодня эта пословица практически полностью вышла из употребления, и услышать ее можно нечасто. «На рыбьем меху»: значение фразеологизма и правильное его употребление <img width="695" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/f87/16.12.2020%202.JPG" height="408"> Используя в своей речи крылатые выражения, можно прослыть человеком образованным, начитанным и остроумным. Когда же уместно сказать «на рыбьем меху»? Значение фразеологизма предполагает употребление его для оценки качества одежды. В повседневной речи вы можете использовать его тогда, когда считаете, что вещь низкого качества или надета в слишком холодную погоду. Хороший пример: «Я так замерз сегодня, ведь куртка у меня на рыбьем меху» или «А как она одевается-то, на улице мороз, а пальто на рыбьем меху». Оба эти предложения составлены правильно и будут уместны в соответствующих ситуациях. Однако будьте осторожны, используя их для критики чужой одежды, вы можете обидеть ее владельца. И напоследок давайте вспомним популярную студенческую песню: «Платьишко мое на рыбьем меху, перчатки мои на змеином пуху…». <hr> Источник: <a href="https://fb.ru/article/215016/na-ryibem-mehu-znachenie-frazeologizma-i-istoriya-ego-poyavleniya">fb.ru</a>

Читать

16 декабря 2020

Роскачество исследовало осетровую икру: выявлены запрещенная бура, контрафакт и другие нарушения

Читать

6 декабря 2020

История одомашнивания карпа

Доместикация растений и животных является одним из самых значительных аспектов истории человечества. Однако лишь в немногих случаях точно известна история одомашнивания того или иного вида, поскольку для большинства из них этот процесс начался еще в неолите, более 14 тыс лет назад. Одомашнивание диких животных неизбежно сопровождалось селекцией, направленной на приспособление их к жизни в новых условиях существования. По сравнению с животноводством и растениеводством, рыбоводство является молодой сферой деятельности человека. К настоящему времени одомашнены лишь несколько видов, и среди них карп ‑ одна из самых известных и наиболее важных для человека рыб. Сведений об одомашнивании карпа в русскоязычной литературе совсем немного, даже в известных работах проф. В.С. Кирпичникова им уделено недостаточно внимания. Между тем, в иностранной литературе этот вопрос освещен более полно, опубликовано несколько обзоров и среди них - исследование голландца Дж. Комена (1990) и блестящее эссе словака Е.К. Балона (1995). В данной статье предлагается краткий обзор истории одомашнивания и селекции карпа. В настоящее время, благодаря массовому культивированию, карп широко расселен во многих регионах мира. Однако о происхождении и зоогеографии дикого предка карпа, сазана, известно мало. По-видимому, оригинальный вид, Cyprinus carpio, возник в плейстоцене в бассейнах больших рек Евразии, откуда его ареал распространился далеко на запад и восток, где и началось его одомашнивание. Прежде чем перейти к описанию доместикации сазана, необходимо пояснить, что понимается под этим термином. Е. Балон указывает четыре главных признака истинной доместикации вида: (1) особи имеют хозяйственную ценность и содержатся с определенной целью; (2) их разведение осуществляется под контролем человека; (3) их поведение отличается от поведения дикого предка; (4) некоторые из них не смогли бы выжить без защиты человека. Азия Одомашнивание сазана началось в Китае во втором тысячелетии до нашей эры. Аквакультура там развивалось параллельно с культивированием шелковичного червя, личинки и фекалии которых являлись дополнительным кормом для рыб. Сазанов отлавливали во время разлива рек и в бамбуковых корзинах доставляли для выращивания в искусственные пруды и лагуны. Всех выросших рыб из прудов не отлавливали, оставшиеся карпы нерестились и пополняли стадо. Периодически также пополняли население прудов вновь пойманными карпами. Такая система культивирования карпов сохранялась почти неизменной на протяжении веков, и она не способствовала созданию каких-либо культурных пород. Буддистские монахи распространили карпа в Юго-Восточную Азию, вплоть до Индонезии. Современные китайские карпы представлены двумя основными группами, различающимися по форме тела - big-belly (большебрюхие), это название они получили благодаря очень высокой степени развития гонад, и long-bodied (длиннотелые). В Японии культивирование карпа началось около двух тысяч лет назад, ее центрами были префектуры Нагано и Ниигата. Именно в Японии процесс одомашнивания карпа приобрел новое направление ‑ декоративное. Японские цветные декоративные карпы сейчас называются кои, это название произошло от японского "нишикигои", что приблизительно означает "карпы, одетые в разноцветные кимоно". Есть и другое поэтическое название этих рыб ‑ "плавающие цветы". Декоративные карпы представляют собой обычных карпов с аберрацией окраски. Генетика таких аберраций достаточно хорошо изучена в нашей стране В.Я. Катасоновым. Карпы с красной окраской встречаются и в других популяциях, в частности в Юго-Восточной Азии и Европе, однако именно в Японии началось их целенаправленное разведение. Современная мифология относит начало культивирования кои в глубь веков, однако документальных подтверждений этому нет. В префектуре Ниигата, вблизи Японского моря, карпов издавна разводили в небольших прудах для употребления в пищу. Эта область известна тем, что зимой там выпадает очень много снега, и карпов зимой содержали в домашних бассейнах. По мнению Е. Балона именно такие специфические условия выращивания способствовали частому появлению цветных карпов. В начале XIX в. их стали скрещивать между собой, отбирая из многих потомков наиболее красивых. Это привело к тому, что кроме карпов с красной окраской (хигои), появились и карпы, окрашенные в другие цвета, а также изменился характер окраски. В 1904 г. зеркальные карпы, привезенные из Германии, были включены в систему скрещиваний с декоративными карпами, что позволило получить у них еще и различный характер чешуйного покрова. Интенсивная селекция и выращивание цветных карпов начались только после Второй мировой войны, в пятидесятые годы, когда жизненный уровень населения Японии, Европы и Америки стал быстро улучшаться. В общественных местах и частных владениях стали популярны декоративные бассейны и пруды, прекрасным украшением которых явились кои. Сейчас в Японии и многих других странах ежегодно выращивают и продают десятки миллионов штук кои, что является весьма прибыльным бизнесом. В настоящее время в Японии известны карпы 13 основных цветов, а также множество их вариантов. Наиболее популярны красно-белые конаку, красно-бело-черные таишо-санке и шова-саншоку - рыбы черного цвета с вкраплениями пятен белого и красного цветов. Однако разведение кои дело непростое. Даже при самом тщательном подборе производителей для скрещивания невозможно предсказать характер окраски у потомков. Большую часть потомства приходится выбраковывать, оставляя только рыб с желательным типом окраски. Это связано с тем, что окраска кои, состоящая из сложной комбинации пятен разного размера и цвета, определяется действием большого числа генов, воссоздание сочетания которых у потомков во многом зависит от случая. Сейчас производители кои связывают свои надежды с последними достижениями генетики, позволяющими клонировать животных. Европа В Европе карп впервые упоминается в работах Аристотеля под названием "купринос". По одной из версий, это название восходит к богине любви Афродите Киприде, которое карп получил благодаря своей высокой плодовитости и шумным нерестовым игрищам. Позднее это имя латинизировано в родовое название карпа Cyprinus. Видовое название, carpio, пришло к карпу от кельтского "карфо"(рыба) во времена, когда кельты населяли берега Дуная на территории современных Австрии, Венгрии и Словакии. По мнению большинства исследователей, одомашнивание карпа в Европе началось в монастырских хозяйствах в средние века. Е. Балон считает, что это не так, а доместикация сазана была начата гораздо раньше римлянами. Далее мы приводим краткое изложение его оригинальной гипотезы. Начало искусственного выращивания карпа римлянами было положено совпадением двух событий. На рубеже тысячелетий среди римлян получил распространение культ употребления изысканной "заморской" пищи. Именно в это время римляне, расширяя свои владения, вышли на правый берег Дуная, в районе между нынешними Веной и Будапештом, где была основана их провинция Панония. Как хорошо известно из многочисленных источников, римляне, чтобы обеспечить бесперебойную поставку на стол свежей рыбы, независимо от времени года и капризов погоды, устраивали "писцинарии" - огороженные участки водоемов, где передерживали пойманную рыбу. Вначале писцинарии были морскими, а затем стали устраивать и пресноводные. Постепенно от простой передержки пойманной рыбы римляне перешли к ее кормлению и разведению. Известно также, что римляне не ограничивались содержанием и выращиванием в писцинариях местных видов рыб, а старались завозить из своих провинций новые виды. Основываясь на этих фактах, Балон приходит к заключению, что и многочисленный в Дунае сазан, кости которого в большом количестве обнаружены при раскопках римских поселений Панонии, мог стать одним из объектов разведения в писцинариях. Перевозить живую рыбу на большие расстояния римляне умели, для этого использовались или влажный мох, или небольшие чаны, заполненные водой. Из всех дунайских рыб сазан наиболее пригоден для транспортировки, поскольку он не требователен к содержанию кислорода. Следовательно, римляне вполне могли доставлять сазанов на Аппенинский полуостров, к местам расположения писцинариев. Содержащиеся в писцинариях сазаны могли успешно нереститься и пополнять стадо. Критики гипотезы Балона указывают однако, что карп не упоминается среди объектов писцинариев. Как бы то ни было, но факты разведения карпов в монастырских хозяйствах Европы хорошо документированы. Карпы были первой рыбой, которую стали выращивать в искусственных прудах, построенных при монастырях уже в раннем средневековье (V-VI вв). Центром карповодства стали местности, прилегающие к берегам Дуная. Карпов, пойманных в Дунае, транспортировали также живьем во многие страны Европы, включая Англию. Необходимость обеспечения монастырей свежей рыбой была связана с большим количеством постных дней, когда в пищу разрешалось использовать только холоднокровных животных. Хотя в реках и озерах водилось много рыбы, но нередко из-за капризов погоды и частых войн рыболовство было невозможно. Практически ничего не известно о биотехнике рыбоводства того времени, поскольку это был секрет, оберегаемый за монастырскими стенами. Вообще же культура карповодства в Европе, как и в Китае прогрессировала медленно, особенно это касается контроля над репродукцией. Вначале никакого контроля не было. Карпы нерестились в нагульных прудах и тем самым пополняли стадо. Это приводило к переуплотнению прудов и плохому росту рыбы. Затем, в XVI в, стали выбирать половозрелых самок и самцов и сажать их весной совместно в большие пруды, где они нерестились. Осенью пруды облавливали и пойманных сеголетков использовали для дальнейшего выращивания. И только в конце XIX в. воспроизводство карпа стали осуществлять по схеме, которая сохранилась почти до наших времен: несколько самок и самцов сажали в небольшие нерестовые пруды, а через несколько дней после нереста отлавливали личинок. В процессе одомашнивания карп значительно изменился. Вместо торпедообразной округлой формы тела сазана у многих культурных рас тело стало высокоспинным и более сжатым с боков. Появились зеркальные карпы с разбросанным или линейным чешуйным покровом, а также полностью лишенные чешуи (голые). О разнообразии окраски мы уже говорили выше. Стихийная, а затем и направленная селекция карпа позволила получить формы с высокой скоростью роста и плодовитостью. Изменился, хотя и не столь существенно, и ряд других морфологических признаков. Очевидно, что в естественных условиях карпы многих культурных форм не смогли бы составить конкуренцию дикому сазану. Интенсивный характер карповодства и контроль за репродукцией привели к созданию множества пород. <img width="600" src="https://vniiprh.ru/upload/iblock/cce/img349_0.jpg" height="400"> <hr> Подготовил: Рекубратский Александр Витальевич, Ведущий научный сотрудник лаборатории генетики и селекции рыб Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

26 ноября 2020

Рыба как залог здоровья

Ученые призвали вернуть советскую практику выдавать детям в школах и детских садах рыбий жир <img width="900" src="https://vniiprh.ru/upload/iblock/389/cover-site-4a-1.jpg" height="352"> Осенью 2019 года в прессе были опубликованы результаты последних исследований ученых из МГУ и Российского университета дружбы народов. У 75 процентов обследованных россиян обнаружили недостаток полиненасыщенных жирных кислот омега-3. Наиболее серьезный дефицит оказался у детей и подростков в возрасте до 18 лет. В результате этого дефицита около 70 процентов обследованных подростков оказались страдающими метаболическими и гипоксическими нарушениями и находятся в группе риска по возникновению различных заболеваний, в том числе бесплодия. Ученые в своем докладе призвали вернуть советскую практику выдавать детям в школах и детских садах рыбий жир. Эту идею даже согласились обсудить в Госдуме. Тот, кто родился в Советском Союзе, возможно, помнит рыбий жир — не особо вкусную, но обязательную составляющую советского детства. Рыбий жир — это и есть омега-3. Ложка этого продукта перед едой в детском саду была залогом хорошего здоровья. Но в начале 1970-х рыбий жир пропал из советских аптек, его массовое употребление прекратилось. И вот теперь такие неутешительные результаты… Рыбий жир как лекарство и профилактическое средство широко применяется последние 160 лет, хотя о его целебных свойствах знали намного раньше. В Древнем Риме рыбий жир использовался для приготовления соуса «гарум», который был очень популярен еще в эпоху этрусков. Помимо гастрономической ценности, «гарум» имел и целительно назначение: его использовали от головной боли, как слабительное и как возбуждающее. «Гарум» и был первой биодобавкой с омегой-3. На рубеже Нового времени рыбий жир использовался в самых разных отраслях — на кожевенных заводах, в красильном деле, в производстве мыла, как масло для светильников. Одним из главных недостатков рыбьего жира был его запах — продукт получали из гниющей рыбы. Крупнейшим производителем рыбьего жира в Европе XIX века была Норвегия. Именно норвежец Петер Йоаким Мёллер вошел в историю как человек, который первым начал производить рыбий жир в медицинских целях. Будучи профессиональным фармацевтом, он разработал технологию получения рыбьего жира из печени трески с помощью паровой обработки. Мёллеру удалось практически полностью избавиться от отталкивающего запаха гнилой рыбы, так как для получения жира не нужно было больше ждать, пока рыба испортится. В то время рыбий жир использовался при лечении рахита, который был настоящим бичом Европы эпохи индустриальной революции. В 1854 году Мёллер открыл свою первую фабрику, а вскоре уже стоял во главе небольшой империи по производству этого продукта. К началу ХХ века рыбий жир широко применялся в Европе для лечения и профилактики детских заболеваний. В царской России он получил широкое распространение благодаря работам Исидора Шабада, известного в Петербурге врача-педиатра, преподавателя кафедры детских болезней Женского медицинского института. Шабад пропагандировал целебные свойства рыбьего жира в своих докладах и статьях. Он воспитал целое поколение детских врачей, которые в дальнейшем активно участвовали в становлении советской педиатрии. <img width="693" src="https://vniiprh.ru/upload/iblock/209/1-9.png" height="461"> Полиненасыщенные жирные кислоты Основная ценность рыбьего жира — полиненасыщенные жирные кислоты омега-3, которые играют важнейшую роль в метаболизме человеческого организма. Организм человека не может выработать эти кислоты, поэтому они должны присутствовать в пище. До 20-х годов прошлого века жирные кислоты, в отличие от протеина и карбогидратов, не считались чем-то важным в пищевом рационе. В 1923 году биохимики из Калифорнийского университета обнаружили, что крысы, лишенные линоленовой и альфа-линоленовой кислоты, больше подвержены заболеваниям. Жирные кислоты напрямую влияли на иммунитет крыс, являясь жизненно необходимыми веществами. Американцы решили, что имеют дело с новым типом витамина, и назвали жирные кислоты витамином F. Однако уже в 1930 году ученые пришли к выводу, что исследуемые кислоты не составляют единое вещество, но значительно отличаются друг от друга. Дефицит линоленовой кислоты нельзя компенсировать, используя альфа-линоленовую кислоты, и наоборот. Таким образом, витамин F включал в себя комплекс из двух незаменимых жирных кислот — омега-3, полученной из альфа-линоленовой кислоты, и омега-6, полученной из линоленовой кислоты. В деле исследований омега-3 это открытие было решающим: американские ученые доказали, что жирные кислоты являются ключевыми компонентами здорового питания. Несмотря на все эти открытия, реальное понимание роли омеги-3 для здоровья человека пришло только спустя четыре десятка лет. В 1970-е годы группа ученых под руководством датского химика Ханса Олафа Банга провела несколько исследований крови гренландских эскимосов-инуитов. Банг и его коллеги пытались выяснить, почему уровень сердечно-сосудистых заболеваний среди инуитов намного ниже, чем среди европейцев и американцев. В результате этих исследований ученые пришли к выводу, что именно употребление омеги-3 в ежедневном рационе коренных обитателей Гренландии является причиной необычно низких показателей сердечно-сосудистой заболеваемости. Более того, инуиты не страдали атеросклерозом, и до конца дней у них сохранялось нормальное давление. Ученые установили, что у инуитов рацион омеги-3 составляет 13 г в день, в то время как средний рацион американцев — всего 200 мг в день. Проводившиеся параллельно клинические исследования пациентов, страдающих повышенным уровнем холестерина в крови, показали, что регулярный прием омега-3 приводит к стабильному снижению уровня холестерина и, следовательно, снижению риска сердечно-сосудистых заболеваний. Омега-3 и эволюция мозга Но омега-3 важна не только в поддержании здоровой сердечнососудистой системы человека. Ученые предположили, что она сыграла и продолжает играть ключевую роль в процессе развития человеческого мозга. В 1960 году английский зоолог и морской биолог Алистер Харди выдвинул гипотезу, получившую в дальнейшем название «Теории водной обезьяны». Известно, что размер мозга раннего человека был не больше мозга шимпанзе. То есть человека как такого не было, а была обезьяна, близкая к шимпанзе. За последние три миллиона лет размер человеческого мозга увеличился в три раза по сравнению с мозгом шимпанзе. На основе изучения эволюционных процессов животного мира Харди предположил, что в период от семи до четырех миллионов лет назад африканские обезьяны-прародители человека в поисках пищи вынуждены были мигрировать в прибрежные зоны. Они много времени проводили в воде и питались в основном рыбой. Именно рацион с высоким содержанием полиненасыщенных жирных кислот омеги-3 повлиял на эволюцию приматов: мозг водной обезьяны развивался и увеличивался быстрее, чем мозг ее сухопутных сородичей. Омега-3, таким образом, оказалась ключевым фактором эволюции человека. В 1989 году профессор Лондонского института зоологии Майкл Крауфорд, развивая теорию Харди, опубликовал книгу «Движущая сила: еда, эволюция и будущее». Крауфорд объяснял эволюцию человека с точки зрения диетологии и употребления в пищу омега-3 кислот. Крауфорд утверждал, что эволюция интеллектуальных способностей человека явилась прямым следствием употребления в пищу рыбы. В качестве аргумента Крауфорд использовал сравнительный анализ морских и сухопутных млекопитающих. Исходя из постулата, согласно которому химические процессы, лежащие в основе всех форм жизни на земле, всегда одинаковы, Крауфорд сравнивал размеры мозга зебры и дельфина, млекопитающих с примерно одинаковой массой тела. Миллионы лет назад предки дельфинов — мезониксы были сухопутными млекопитающими. Постепенно они поменяли среду обитания и около пяти миллионов лет назад стали полностью водоплавающими. Крауфорд указывал, что мозг дельфина гораздо больше мозга зебры и причина этому — употребление дельфинами в пищу кислот омега-3. А говоря о роли омеги-3 в человеческом рационе, Круафорд приводил в пример Японию как страну с правильным рационом питания. В основе японской кухни лежат рыба и морепродукты, богатые омегой-3. Благодаря этому средняя продолжительность жизни в Японии больше, чем в Европе и США. Омега-3 сегодня С момента публикации исследований Банга и Крауфорда гастрономическая культура постепенно менялась. В 1980-е годы рыба заняла важное место в западной диетологии — популярность японских ресторанов наглядный тому пример. В качестве оздоровительной пищевой добавки омега-3 стала общедоступной, а мировой рынок этого продукта — один из самых быстрорастущих. Его ежегодный прирост составляет от 10 до 13 процентов. В 1990-е годы крупные американские и европейские фармацевтические компании заинтересовались рынком омеги-3 и стали вкладывать значительные суммы в медицинские исследования полиненасыщенных жирных кислот. Их результаты превзошли все ожидания. Омега-3 показала себя прекрасным терапевтическим средством. В результате ее регулярного приема у пациентов, переживших инфаркт миокарда, смертность от сердечно сосудистых заболеваний снизилась на 30%. По итогам этих исследований на основе омеги-3 были созданы первые лекарственные препараты для борьбы с сердечно-сосудистыми заболеваниями. Но использование омеги-3 в медицине сегодня гораздо шире. За последние десять лет омега-3 используется при лечении депрессии и нейро-дегенеративных заболеваний, таких как болезнь Альцгеймера. Омега-3 благотворно воздействует на функционирование центральной нервной системы, нормализует обмен веществ в организме, улучшает формулу липидов крови, метаболизм, способствует избавлению от лишнего веса. Весной 2018 года английские ученые объявили, что нашли новый источник полиненасыщенных жирных кислот в беспозвоночных морских организмах. Кораллы, моллюски, коловратки и многие ракообразные производят омега-3 кислоты. Новое открытие значительно расширяет возможности производства ценного продукта в мировом масштабе. Ну, а что же в России? Ситуация, о которой говорили российские ученые в своем докладе в октябре 2019 года, пока никак не изменилась. Серьезного обсуждения проблемы ни в экспертном сообществе, ни в Госдуме не было. И хотя биодобавка омега-3 свободно продается во всех аптеках, частью медицинской культуры россиян она навряд ли скоро станет. Статьи о пользе омеги-3 регулярно публикуются в различных СМИ, но этим все и ограничивается. Хотя речь идет о здоровье нации, а это — дело государственной важности. <hr> Источник: журнал <a href="https://rusfishjournal.ru/">Русская рыба</a>

Читать

6 ноября 2020

Результаты комплексного исследования водных биоресурсов озера Сенеж

Озеро Сенеж одно из самых старых подмосковных озер, которое образовалось в 1826 году в результате строительства канала, соединяющего реки Истра и Сестра. Только залив южной части имеет ледниковое происхождение. Озеро относится к водоемам мезотрофного типа. Сенежское озеро (Cенеж) расположено на Клинско-Дмитровской гряде, в Московской области. Площадь озера 892 га, максимальная длина 5 км, ширина 3,5 км. Средняя глубина 2,5–3,5 м, наибольшая – 6 м. Длина береговой линии 16 км. Озеро относится к Верхневолжскому бассейновому округу, речному бассейну - (Верхняя) Волга до Куйбышевского водохранилища (без бассейна Оки), речному подбассейну - бассейны притоков (Верхней) Волги до Рыбинского водохранилища, водохозяйственному участку - Волга от Иваньковского г/у до Угличского водохранилища. На озере осуществляется только любительский лов, промысел не ведется. Основу ихтиофауны составляют: плотва, щука, окунь пресноводный, лещ, судак. Изученность экосистемы данного водного объекта крайне мала. В литературных источниках представлена немногочисленная информация об экологической оценке озера Сенеж [3, 4, 5] и возрастной структуре плотвы (Rutilus rutilus, Linnaeus 1758) [9]. Предпосылкой к проведению комплексных изучений озера сотрудниками Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ») стала тема плана ресурсных исследований «Регулярные наблюдения за распределением, численностью, качеством и воспроизводством водных биоресурсов, являющихся объектами рыболовства, а также средой их обитания». Целью работ являлось исследование состояния ихтиофауны и среды обитания водных биологических ресурсов озера Сенеж по гидрохимическим, гидробиологическим, токсикологическими, бактериологическим показателям, качественному составу и уровню развития планктонной и донной фауны. Данное сообщение дополняет работы в 2004-2006 гг. [15] результатами по гидрохимическим, гидробиологическим и ихтиологическим исследованиям, проведённым в водах озера Сенеж в 2020 г. Материал и методы исследований Сбор материалов для выполнения работ по мониторингу состояния водных биоресурсов проводился на озере Сенеж в рамках комплексных исследований в мае 2020 г. При осуществлении рыболовства в научно-исследовательских целях произведено 2 сетепостановки с общей протяжённостью 360 м, с шагом ячеи от 30 до 60 мм. При проведении научно-исследовательских работ (НИР) осуществлен отбор проб для гидробиологического, гидрохимического, токсикологического и бактериологического исследования воды. Также выполнен биологический и паразитологический анализы, выловленных рыб по стандартным методикам [10, 14]. Отбор проб проводился согласно требованиям ГОСТ 31861-2012 [2] на станциях исследования, установленных при мониторинговой оценке состояния среды обитания водных биологических ресурсов ВБР (рис.1). В качестве оценочных показателей были приняты нормативы для водных объектов рыбохозяйственного значения, согласно приказу Минсельхоза России № 552 от 13.12.2016 г [11]. <img width="500" src="/upload/iblock/508/06.11.2020%20информаторий%201.jpg" height="337"> Рис.1. Карта постановки сетных орудий лова и схема станций отбора проб на оз. Сенеж Станции исследований: 1, 6, 8, 9, 10 – сбор ихтиологических, бактериологических, гидрохимических и токсикологических, проб; 1, 2, 5, 7, 9, 10 – сбор проб фитопланктона; 1-10 – сбор проб зоопланктона и макрозообентоса. Fig. 1. The map of placing for fishing equipment and the scheme of sampling stations in the lake Senezh Stations of investigations: 1, 6, 8, 9, 10 – collection of ichthyological, bacteriological, hydrochemical and toxicological samples; 1, 2, 5, 7, 9, 10 – collection of phytoplankton samples; 1-10 – collection of zooplankton and macrozooplankton samples. Гидрохимические исследования воды проводились по методикам: растворенный кислород ПНД Ф 14.1:2:3.101-97, водородный показатель (рН) ПНД Ф 14.1:2:3:4.121-97, азот аммонийный ПНД Ф 14.1:2:3.1-95; нитрит-ионы ПНД Ф 14.1:2:4.3-95; нитрат-ионы ПНД Ф 14.1:2:4.4-95; фосфат-ионы ПНД Ф 14.1:2:4.112-97; БПК5 ПНД Ф 14.1:2:3:4.123-97; перманганатная окисляемость ПНД Ф 14.1:2:4.154-99; железо общее ПНД Ф 14.1:2:4.50-96). Токсикологические исследования проводились по методикам: ПНД Ф 14.1:2:4.69-96 кадмий, свинец и медь в пробах воды; ПНД Ф 14.1:2:4.221-06 ртуть в пробах воды; ПНД Ф 16.1:2:2.2:2,3.47-06 тяжелые металлы и токсичные элементы в донных отложениях вод. Количественный посев воды производили на плотные питательные среды: эритритагар, Эндо, Анакера-Ордала, энтерококкагар и висмут сульфит агар. Исследования проводили в направлении выявления групп бактерий, имеющих эпизоотическое и эпидемиологическое значение [5, 13]. Зараженность рыб паразитами оценивали по экстенсивности (Э.И.) и интенсивности инвазии (И.И.), идентификацию выявленных паразитов осуществляли по «Определителям паразитов пресноводных рыб» [6, 7, 8]. Пробы фитопланктона, зоопланктона и макрозообентоса были отобраны общепринятыми в гидробиологические практике методами согласно «Руководству по методам гидробиологического анализа поверхностных вод и донных отложений» [12]. Результаты исследований и их обсуждение В рамках проведенных исследований в мае 2020 г. было выполнено 2 сетопостановки по добыче (вылову) водных биоресурсов. В уловах встречались: лещ, плотва, судак и щука. Основу вылова составляла плотва (около 42,5%). На основании данных 2004-2006 гг. в сетных уловах встречались исключительно хищные виды рыб. Основные биологические характеристики рыб, обследованных в 2004-2006 гг. и 2020 г. представлены в таблице 1. В уловах 2020 г. отмечаются крупные особи судака до 63 см, что даже выше чем в годы исследований с 2004 по 2006. Так как, возраст наступления половой зрелости по литературным источникам составляет 3 года при длине от 36 см, факт наличия в оз. Сенеж крупных особей судака создает предпосылку хорошего воспроизводительного потенциала популяции. Средняя длины щуки в 2020 г. уменьшилась с 62 до 51 см, относительно данных полученных нами в исследованиях 2004-2006 гг. Однако сложившаяся тенденция не критична, потому что половозрелые особи щуки обычно встречаются при длине от 39 см в возрасте 4 лет. Тем не менее, можно заметить, что исследованный максимальный возраст щуки оз. Сенеж уменьшился с 9 до 5 лет. Средняя длина леща в 2020 г. составила 25,3 см, а плотвы 21,0 см. Половозрелыми лещ и плотва становятся при достижении размеров 27 и 14 см, соответственно. Поэтому результаты 2020 г. говорят о хорошем воспроизводственном потенциале плотвы и малом количестве половозрелых особей леща. Таблица 1 Основные биологические характеристики рыб оз. Сенеж в 2004-2006 гг. и мае 2020 г. Tabl.1 The main biological fish characteristics of fishes from the Lake Senezh in 2004 to 2006 and in May <img width="700" src="/upload/iblock/1ea/06.11.2020%20информаторий%202.JPG" height="312"> Примечание. Над чертой – пределы варьирования показателя, под чертой среднее значение и стандартное отклонение, N – количество экземпляров. Для нагула рыб сложились удовлетворительные условия практически на всей акватории озера благодаря достаточному количеству кормовых организмов. Вследствие этого коэффициент упитанности по Фультону (КУ) для мирных видов рыб составил 2,38. В периоды исследований 2004-2006 гг. и 2020 г. у щуки по данному показателю различий не наблюдалось (КУ=0,98). В то же время у судака произошло уменьшение показателя КУ с 1,31 до 1,18. Увеличение выборки с 1 до 19 экз. дает более точную биологическую информацию о популяции вида. В облавливаемой части популяции рыб в 2020 г. наблюдалось преобладание самок над самцами, за исключением леща (1:2,5). В оз. Сенеж в 2020 г. по результатам исследований отмечено превышение предельно допустимых концентраций (ПДК) для рыбохозяйственных водоемов по железу общему (на станции отбора проб №1 и №2) до 2,8 раза. Железо является характерным элементом природных вод. В настоящее время, на территории Москвы и Московской области содержание железа превышает значение ПДК практически повсеместно. В 2004-2006 гг. превышений ПДК не наблюдалось. Результаты исследований проб воды по гидрохимическим показатели представлены в таблице 2. Таблица 2 Качество воды оз. Сенеж в мае 2020 г. Tabl.2 Water quality of the Senezh in May 2020 <img width="805" src="/upload/iblock/82a/06.11.2020%20информаторий%203.JPG" height="259"> В пробах воды и донных отложениях в 2020 г. содержание токсичных элементов: свинца, кадмия, меди и ртути не превышало ПДК (табл. 3, 4). Однако содержание подвижных форм свинца в донных отложениях, на станции отбора проб № 1 и 10, приближаются к предельной концентрации. Содержание меди на станциях № 6 и 9 близко к предельной концентрации. Можно предположить, что источниками их поступления являются автодороги с интенсивным движением транспорта, сточные воды с очистных сооружений и поверхностные стоки с садово-огороднических хозяйств и агроценозов. В 2004-2006 гг. исследования показали превышение по меди, но концентрация была невысока и характерна для поверхностных водоемов Центрального региона России. Таблица 3 Содержание токсичных элементов в воде оз. Сенеж в мае 2020 г. Tabl.3 Concentration of toxic elements in water of the Lake Senezh in May 2020 <img width="802" src="/upload/iblock/b24/06.11.2020%20информаторий%204.JPG" height="168"> Примечание. Здесь и табл. 4 :- не обнаружено, меньше диапазона измерения. Таблица 4 Содержание подвижных форм токсичных элементов в донных отложениях из оз. Сенеж в мае 2020 г. Tabl.4 Concentration of mobile form of toxic elements in bottom sediments of the Lake Senezh in May 2020 <img width="797" src="/upload/iblock/9b2/06.11.2020%20информаторий%205.JPG" height="167"> Паразитологическому анализу подвергнуты 16 экземпляров рыб из озера Сенеж Московской области 3-ех видов: судак, плотва, лещ. На жабрах судака были обнаружены паразитические рачки Ergasilus sieboldi (встречаемость 25%), также была 100% заражаемость полости тела цистами трематод Ichthyocotylurus pileatus, I. variegatus, I. platycephalus. В кишечнике у 100% рыб встречались трематоды Bucephalus polymorphus и у 25% – Bunodera luciopercae.У 1 экземпляра судака в глазах найдены цисты трематод Tylodelphys сlavata. У плотвы отмечалась 100% пораженность стекловидного тела глаз цистами трематод Tylodelphys сlavata, также в их хрусталиках в 75% случаях встречались Diplostomum spathaceum. У 2 экземпляров рыб на жабрах найдены Ergasilus sieboldi. Жабры лещей (37,5%) были поражены рачками Ergasilus sieboldi и моногенеями Dactylogyrus falcatus. Встречаемость Tylodelphys сlavata в стекловидном теле глаз составила 25%, в хрусталике Diplostomum sp. – 12,5%. 75% лещей имели зараженность сердца цистами трематод Ichthyocotylurus erraticus, и у стольких же в кишечнике обнаруживались цестоды Caryophyllaeides fennica (рис. 2). Выявленные паразиты не имеют эпидемиологическое значение (не опасны для человека). <img width="500" src="/upload/iblock/b1a/06.11.2020%20информаторий%206.jpg" height="401"> Рис. 2. Цестода Caryophyllaeides fennica в кишечнике леща Fig. 2. Cestoda Caryophyllaeides fennica in the breams intestine На оз. Сенеж в момент отбора проб на бактериологический анализ воды отмечалась удовлетворительная эпизоотическая обстановка. Во всех пробах (кроме пробы на станции исследования № 6) значения ОМЧ не превышали нормативные. В районе станции исследования № 6 уровень бактериальной обсемененности воды был повышенный (4180 КОЕ/мл). В микробиоценозе преобладали моракселлы и сапрофитная микрофлора. Фитопланктон озера Сенеж представлен диатомовыми, протококковыми, золотистыми группами водорослей. Фитопланктон характеризовался низкими показателями, как по численности, так и по биомассе. Зоопланктонное сообщество озера Сенеж представлено 3 группами организмов - коловратки (Rotatoria), ветвистоусые (Cladocera) и веслоногие (Copepoda) ракообразные. В составе зоопланктона было обнаружено 7 видов коловраток, 5 видов ветвистоусых ракообразных и 2 вида веслоногих рачков. Из коловраток доминировали: Keratella quadrata, Keratella cochlearis, Asplanchna priodonta, Kellicotia sp.; из ветвистоусых рачков – Daphnia longispina, Bosmina sp.; из веслоногих – Cyclops sp., Diaptomus sp. и науплии копеподит. По численности кладоцеры и коловратки составляли соответственно 43,3 % и 35,8 % от общего количества; по биомассе – веслоногие ракообразные - 48,1 % от общей биомассы зоопланктонных организмов, на долю ветвистоусых ракообразные приходилось 43,6 %, коловраток 8,3 %. Основу макрозообентоса озера составляли хирономиды и олигохеты, их встречаемость равна 100 %. Часто присутствовали личинки кровососущих комаров (встречаемость 60 %), реже - хаобориды (встречаемость 40 %), дрейссениды (встречаемость 30 %), личинки поденок (встречаемость 20 %), личинки ручейников, пиявок и нематод (встречаемость по 10 %). Наибольшее разнообразие групп макрозообентоса отмечено на станции № 3, где встретились организмы из 6 групп, станции № 10 – из 5 групп. На станции № 7 обнаружены только личинки хирономид и олигохеты. Заключение Результаты 2020 г. говорят о хорошем воспроизводственном потенциале плотвы и судака. Коэффициент упитанности высокий у всех видов рыб. Во всех обследованных группах рыб наблюдается значительное преобладание самок над самцами, за исключением леща. На исследуемом водном объекте по результатам исследований отмечено превышение ПДК для рыбохозяйственных водоемов по железу в 2,8 раз, так как в настоящее время, на территории Москвы и Московской оно наблюдается практически повсеместно. По всем остальным показателям в пробах воды и донных отложениях содержание токсичных элементов не превышало ПДК. Бактериологический анализ воды показал незначительное превышение бактериального загрязнения только в районе станции исследования №6, что, скорее всего, носит антропогенный характер и является результатом загрязнения прибрежной зоны озера. Результаты паразитологического анализа рыб из озера Сенеж свидетельствуют о высоком уровне заражения паразитами. У 3 обследованных видов рыб было обнаружено 11 видов паразитов, которые были представлены на 73% трематодами на стадии метацеркарий и марит. Существующая проблема эргазилеза рыб в данном водоеме с 2005 г. и до в настоящего времени сохранилась. У судака на жабрах были обнаружены паразитические рачки Ergasilus sieboldi. Данные НИР о состоянии водных биологических ресурсов озера Сенеж послужат основой для разработки материалов прогноза рекомендованной добычи (вылова) водных биоресурсов. Для рационального использования озера Сенеж необходимо продолжить углубленное всестороннее изучение состояния и среды обитания водных биологических ресурсов для оценки тенденций и динамики происходящих изменений. Библиографический список 1. Бычкова, Л.И. Микробиоценоз воды и рыбы озера Сенеж московской области / Л.И. Бычкова, Л.Н. Юхименко, А.В. Горбунов, Ю.С. Иванова // Вестник рыбохозяйственной науки. – 2017. – Т. 4. № 3 (15). – С. 76-83. 2. ГОСТ 31861-2012 «Межгосударственный стандарт. Вода. Общие требования к отбору проб». 3. Козлов, В. И. Эколого-рыбохозяйственная оценка озера Сенеж / В.И. Козлов, Ю.С. Иванова // Рыбное хозяйство. – 2013. – № 1. С. 18-25. 4. Кузьмина, Е.Ю. Кормовая база внутренних пресноводных водоемов, имеющих рыбохозяйственное значение (на примере озера Сенеж) / Е.Ю. Кузьмина; Л.В. Сазонова // Cборник научных трудов Cтавропольского научно-исследовательского института животноводства и кормопроизводства. – 2014. – Т. 2. №7. – С. 592-596. 5. Определитель бактерий Берджи. В 2-х т. Пер. с англ. / Под ред. Дж.Хоулта и др. – М.: Мир, 1997. – 800 с. 6. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР / Т.1. Паразитические простейшие. – Л.: Наука, 1984. – 428 с. 7. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР / Т.2. Паразитические многоклеточные. (Вторая часть). – Л.: Наука, 1987. – 583 с. 8. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР / Т.2. Паразитические многоклеточные. (Первая часть). – Л.: Наука, 1985. – 425 с. 9. Пономарев, А.К. Возрастная структура и морфофизологические показатели состояния нерестовой популяции плотвы (Rutilus rutilus) озера Сенеж / А.К. Пономарев, Л.И. Бычкова // Дельта науки. – 2018. – № 2. – С. 95-98. 10. Правдин, И.Ф. Руководство по изучению рыб / И.Ф. Правдин. – М.: Пищевая промышленность, 1966. – 376 с. 11. Приказ Минсельхоза России от 13 декабря 2016 года № 552 «Об утверждении нормативов качества воды водных объектов рыбохозяйственного значения, в том числе нормативов предельно допустимых концентраций вредных веществ в водах водных объектов рыбохозяйственного значения». 12. Руководство по методам гидробиологического анализа поверхностных вод и донных отложений. –Л.: Гидрометеоиздат, 1983. – 239 с. 13. Сборник инструкций по борьбе с болезнями рыб / М.: Отдел маркетинга АМБ-агро, 1999 – Ч. 2. – 234 с. 14. Чугунова, Н.И. Руководство по изучению возраста и роста рыб / Н.И. Чугунова. – М.: Изд. АН СССР, 1959. – 163 с. 15. Шестерин, И.С. Экологическое состояние оз. Сенеж и результаты вселения в него белого амура / И.С. Шестерин, А.И. Ильин, З.И. Шмакова, Н.А. Тагирова, В.Н. Борщев, Н.И. Шестерин , М.В. Жидков // Сборник науч. трудов. Актуальные вопросы пресноводной аквакультуры. 2008. – Вып. 84. – С. 137-145. <hr> Подготовили: А. И. Никитенко, Д. В. Горячев, Н. Н. Клец, А. В. Здрок, С. С. Ускова, И. Ю. Бадаева, М. С. Кукин, А. А. Вишторская, Результаты комплексного исследования водных биоресурсов озера Сенеж. Рыбоводство и рыбное хозяйство №10 2020. 2020;10.

Читать

27 октября 2020

Браконьерство

К сожалению, в наше время еще существуют отдельные личности, которым наплевать на сохранение водных биоресурсов. Как правило, многие из них являются рыбаками-браконьерами. В арсенале современных браконьеров существует множество запрещенных способов и орудий лова. Отдельно можно рассмотреть один из наиболее варварских и беспощадных способах добычи рыбы – это ловля электротоком. Электроу́дочка — прибор для ловли рыбы с помощью подачи в воду электрического разряда. Ловля рыбы с помощью электричества называется электроловом. Воздействие мощных электроразрядов отрицательно сказывается на ихтиофауне водоёма. Лишь немногие крупные рыбины, подплывшие под воздействием электрического поля к сачку, изымаются из воды браконьером. Такой метод позволяет получить большой улов в течение короткого времени. Но и ущерб для фауны водоемов будет значительный. В зоне действия электроудочки происходит массовая гибель мальков рыб, а также множества различных червей, моллюсков, рачков и прочих водных обитателей вплоть до простейших, без которых невозможна жизнь водоёма. <img width="391" src="https://vniiprh.ru/upload/iblock/85b/21.jpg" height="522"> Фотография 1. Электролов Отмечены случаи, когда у рыб, оказавшихся на периферии действия электроудочки и избежавших гибели, происходят переломы позвоночника из-за непроизвольного спазма мышц. Также ихтиологи отмечают, что у рыб, подвергшихся воздействию электротока, часто пропадает способность к икрометанию из-за поражения репродуктивных органов, а у попавшей под удар тока икры способность к оплодотворению понижается на семьдесят процентов. Кроме того, у рыбы теряется аппетит, нарушается обмен веществ и появляется мутация. Иногда происходит гибель рыбаков из-за неосторожного обращения и (или) неисправности электроудочек. В результате популяция может погибнуть или в лучшем случае очень медленно возрождаться. Такая проблема наиболее актуальна для маленьких прудов, озер и заводей. Многократное использование инструментов электролова в течение сезона погубит всю живность в водоеме. От варварского способа лова страдает не только рыба, но и другие обитатели. Например: выдры или бобры. Не только в России но, и во многих странах мира электроудочка признаётся орудием браконьерского лова, а её применение запрещено законодательно. Тем не менее наказание за подобные действия в России не такие строгие, как во многих зарубежных государствах. Там запросто можно получить несколько десятков лет тюрьмы. Преступление будет квалифицировано как массовое уничтожение животного мира. У нас за незаконную добычу (вылов) водных биоресурсов запрещенными орудиями лова предусмотрена уголовная ответственность. Ст. 256. п.б УК. РФ. Незаконная добыча (вылов) водных биологических ресурсов (за исключением водных биологических ресурсов континентального шельфа Российской Федерации и исключительной экономической зоны Российской Федерации), если это деяние совершено: б) с применением самоходного транспортного плавающего средства или взрывчатых и химических веществ, электротока или других запрещенных орудий и способов массового истребления водных биологических ресурсов; Наказывается штрафом в размере от трехсот тысяч до пятисот тысяч рублей или в размере заработной платы или иного дохода осужденного за период от двух до трех лет, либо обязательными работами на срок до четырехсот восьмидесяти часов, либо исправительными работами на срок до двух лет, либо лишением свободы на тот же срок. <img width="512" src="https://vniiprh.ru/upload/iblock/d57/22.jpg" height="288"> Фотография 2. Последствия добычи электроловом. <img width="512" src="https://vniiprh.ru/upload/iblock/224/23.jpg" height="267"> Фотография 3. Последствия добычи электроловом. <hr> Источник: <a target="_blank" href="http://www.moktu.ru/">Московско-окское территориальное управление федерального агентства по рыболовству</a>

Читать

17 октября 2020

Источники, механизмы и факторы передачи болезней рыб

Рыбы, как и другие животные, подвержены различным заболеваниям. Болезни у гидробионтов возникают как в естественных, так и в искусственных водоемах и наносят значительный ущерб рыбному хозяйству. Для возникновения заразного заболевания у рыб необходимо три фактора: патогенный возбудитель, восприимчивый хозяин и определенные условия окружающей среды (рисунок). Если один из этих факторов отсутствует, эпизоотия развиваться не может. <img width="746" src="/upload/iblock/ac2/17.10.2020.PNG" height="685"> Рисунок – Механизм возникновения заболеваний у рыб. Источником заразного начала чаще всего являются больные рыбы или промежуточные хозяева, которые выделяют в воду возбудителей болезней. Механизм передачи начинается с выделения возбудителя из источника заразного начала. Например, больная рыба может выделять возбудителя в воду с экскрементами, мочой, слизью и половыми продуктами. Затем большинство возбудителей проходит стадия пребывания во внешней среде – воде, некоторые проникают в первого промежуточного хозяина (рачков, моллюсков и т.д.) и потом только в рыбу. Элементы внешней среды способствуют передаче возбудителя от зараженной рыбы к здоровой и обеспечивают непрерывность эпизоотического процесса. Такие элементы называют факторами передачи болезней. К ним относятся рыба, икра, вода, грунт водоема, искусственный корм и естественная пища рыб, птицы, беспозвоночные животные, орудия лова, рыбоводный инвентарь. Совокупность всех этих факторов, участвующих в передаче возбудителей, определяет пути распространения болезней, возможные способы проникновения возбудителя болезни в рыбоводное хозяйство или рыбохозяйственный водоем. Выделяют следующие пути распространения болезней: 1. Распространение возбудителей непосредственно из источника водоснабжения с водой, промежуточными и резервуарными хозяевами, с зараженной рыбой 2. Занос возбудителя болезни рыбоядными птицами. Этот путь касается в основном гельминтов, достигающих половой зрелости в кишечнике птиц. 3. Занос возбудителя болезни с объектами разведения или акклиматизации. Это один из важнейших путей распространения массовых заболеваний рыб. Перевозка рыб в новые водоемы таит в себе опасность заноса с перевозимым материалом возбудителей, поэтому все перевозки рыб должны осуществляться лишь после тщательной проверки, исключающей возможность дальнейшего распространения болезней рыб. Знание закономерностей распространения и развития болезней позволяет разработать рациональные меры профилактики и терапии. <hr> Источник: Ихтиопатология / Н.А. Головина, Ю.А. Стрелков, В.Н. Воронин, П.П. Головин, Е.Б. Евадокимова, Л.Н. Юхименко. Под ред. Н.А. Головиной, О.Н. Бауера. – М.: Мир, 2003.

Читать

Вы представитель СМИ?

Для получения комментария учёных, организации интервью или съёмок на объектах института напишите в пресс-службу — ответим в течение рабочего дня.

Запрос в пресс-центр Правила работы со СМИ