Вы здесь

Пресс-центр Информаторий · ВНИИПРХ

Анонсы и информаторий

Предстоящие мероприятия, конференции, семинары и события Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО». Следите за афишей института.

Всего записей: 179

Все годы 179 2026 3 2025 4 2024 8 2023 11 2022 31 2021 32 2020 21 2019 28 2018 22 2017 17

24 декабря 2018

Вода - только чистая!

Врачи дают советы - необходимо выпивать в день не менее двух литров чистой воды. Но где найти эту чистую воду? <a class="colorbox colorbox-insert" href="/sites/default/files/images/announcement/18/12/plh.jpg" title="Вода - только чистая!"><img alt="Вода - только чистая!" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/18/12/plh.jpg" style="width: 479px; height: 168px;" title="Вода - только чистая!" /></a> Там у речки стоит завод, а чуть дальше - сливают сточные воды, а ещё поблизости поливают поле пестицидами, чтобы лучше росло и колосилось. И даже если этого не происходит поблизости, можно ли с уверенностью сказать, что та вода, которую вы пьёте, действительно чистая? <a class="colorbox colorbox-insert" href="/sites/default/files/images/announcement/18/12/djlf.jpg" title="Вода - только чистая!"><img alt="Вода - только чистая!" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/18/12/djlf.jpg" style="width: 271px; height: 255px;" title="Вода - только чистая!" /></a> При оценке качества питьевой воды потребитель, зачастую полагается на свои органы чувств. Компоненты воды могут влиять на внешний вид, запах, вкус воды; вода приобретает мутность, окраску - все это приводит к нерпигодности использования воды для питья. Однако, отсутствие сенсорных эффектов не гарантирует безопасность воды для питья. Для гарантии безопасности питьевой воды необходимы лабораторные исследования образцов воды на микробиологические показатели; анализ состава и качества воды. <a class="colorbox colorbox-insert" href="/sites/default/files/images/announcement/18/12/djls2.jpg" title="Анализ воды"><img alt="Анализ воды" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/18/12/djls2.jpg" style="width: 362px; height: 189px;" title="Анализ воды" /></a> Перед тем как питьевая вода станет отвечать требованиям (СанПиН 2.1.4.1074-01 и СанПиН 2.1.4.1116-02), она проходит несколько этапов водоподготовки и очистки. Самый распространенный и универсальный способ очистки воды - хлорирование. Помимо газообразного хлора в качестве дезинфектантов также используют хлорпроизводные соединения: гипохлориты, диоксид хлора и хлорамин. Всё чаще в мире предпочтение отдаётся озонированию, поскольку этот способ имеет ряд преимуществ перед хлорированием. Исторически сложилось, что главным преимуществом озонирования считается экологичность метода по сравнению с хлорированием. Из физических методов обеззараживания воды наибольший интерес представляет применение ульрафиолетовых лучей (УФ) - единственный физический метод, который получил практическое применение. Обеззараживание ультрафиолетовыми лучами основано на действии волн длиной 200-300 нм на белковые коллоиды и ферменты микробов. Использование ионов серебра известно издревле. В последнее время ионы серебра и меди, обладающих выраженным бактерицидными свойствами, широко используются в качестве эффективных дезинфектантов. Метод ионизации воды ионами меди и серебра применяют для дезинфекции бассейнов и в больничных системах водоснабжения для борьбы с внутрибольничными инфекциями. Данный вид очистки воды является самым эффективным от патогенных бактерий рода Legionella, в связи с чем ионизация воды ионами меди и серебра является лучшей альтернативой для получения питьевой воды. Тем не менее большую популярность набирает использование фильтров, сменных картриджей: они достаточно эффективны в качестве доочистителей воды, однако неэффективны при вирусном загрязнении воды и при титре криптоспоридий. Также фильтры, как правило, малопроизводительны и не решают главную проблему - уничтожение патогенных организмов. После прохождения цикла использования фильтры необходимо утилизировать должным образом, поскольку при нарушении эксплуатации фильтров высока вероятность вторичного заражения воды. <hr /> Источник: Здрок А.В., заведующий лабораторией экологической токсикологии Фото: Здрок А.В., заведующий лабораторией экологической токсикологии Ключевые слова: вода, обеззараживание, фильтры.

Читать

13 декабря 2018

Случай гибели сигов на одном из рыбоводных хозяйств Карелии

<blockquote> <hr /> В летне-осенний период 2012 г. на садковой ферме Ладожского озера зарегистрировали высокую смертность двухлетков сига муксуна (Coregonus muksun). Установлено, что исследованные в сентябре рыбы не имели клинико-патологических признаков какого-либо инвазионного заболевания, однако при вскрытии практически у всех особей обнаружили инфильтрацию желчи из желчного пузыря в полость тела и в кишечник. По токсикологическим характеристикам применявшийся корм показал свою непригодность в рыбоводных целях. В декабре 2012 г. при клиническом осмотре сигов выявили точечные кровоизлияния у основания плавников и на стенках кишечника, средний и задний отделы которого были особенно воспалены. Показано, что в ходе паразитологического анализа у 15% сигов обнаружили нетипичную локализацию (в полости сердца) плероцеркоидов Diphyllobothrium dendriticum. Изученный в декабре корм не проявлял токсического действия. Предположено, что изменение условий обитания рыб при их искусственном содержании в садковых хозяйствах нарушает исторически сложившиеся связи между паразитом и хозяином, что приводит к расширению мест локализации паразита в организме хозяина. <hr /></blockquote> <a class="colorbox colorbox-insert" href="/sites/default/files/images/announcement/18/12/4816067219_15da9f1b2b_b.jpg" title="Сиг муксун (Coregonus muksun)"><img alt="Сиг муксун (Coregonus muksun)" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/18/12/4816067219_15da9f1b2b_b.jpg" style="width: 721px; height: 452px;" title="Сиг муксун (Coregonus muksun)" /></a> ВВЕДЕНИЕ Разведение ценных видов рыб, таких как сиги и форель, в садковых хозяйствах Карелии является перспективным направлением развития рыбохозяйственной отрасли на Северо-Западе России (Рыжков и др., 2007). Благодаря использованию в аквакультуре искусственных гранулированных кормов, обладающих высокой пищевой ценностью, удаётся достигнуть больших объёмов выращивания рыбы за сравнительно короткий срок. Однако при этом обязательным условием, обеспечивающим гарантированный уровень безопасности комбикормов, является доступность качественного сырья на всех этапах производства, а также соблюдение сроков и правил хранения на рыбоводном предприятии. Испорченные корма могут стать причиной нарушения липидного обмена у рыб и при длительном употреблении вызывать жировую дегенерацию печени, анемию и массовую гибель (Титарев, 1980; Бурлаченко, 2008; Остроумова, 2009). Экономическая эффективность и финансовые показатели рыбоводных хозяйств зависят также от эпизоотического контроля, уровня иммунитета у рыб и условий их содержанияв садках. Применение индустриальных методов при выращивании объектов аквакультуры может привести к усложнению эпизоотической ситуации. Вследствие высокой плотности посадки в садках и использование недоброкачественных кормов происходитобщее снижение защитных сил организма рыб и появление не только незаразных (алиментарных) болезней, но и патологий различной природы (Wedermeyer, 1997; Рыжков, 2010). К одному из заболеваний, представляющих опасность для культивируемых рыб, следует относить дифиллоботриоз, возбудителями которого являются плероцеркоиды рода Diphyllobothrium. На многих территориях Северо-Западного региона дифиллоботрииды обнаружены у диких млекопитающих, птиц, а также у лососёвых, сиговых и корюшковых рыб, что указывает на существование природных очагов, имеющих эпидемиологическое значение. У лососёвых и сиговых рыб широко распространённым возбудителем дифиллоботриоза является Diphyllobothrium dendriticum - лентец чаечный. Впервые природный очаг этого паразита описан Т.П. Чижовой и П.Б. Гофманом-Кадошниковым (1960) на оз. Байкал. Затем природные очаги были выявлены в Карелии, Киргизии, Тюменской, Архангельских областях, на Таймыре и др. У людей лентец чаечный, кроме района озера Байкал, обнаружен в Тюменской области, Тувинской области, на Таймыре, за рубежом - на Аляске. Имеющиееся данные по патологии и эпизоотологии дифиллоботриоза преимущественно относящиеся к заболеванию, не приводящему к скоротечной гибели рыб. Обычно плероцеркоиды локализуются в капсулах на пищеводе, желудке, пилорических придатках, гонадах, редко в печени рыб. С развитием пресноводной аквакультуры за рубежом и в России накапливаются данные, которые свидетельствуют об изменении мест локализации паразита в хозяине, например, в случае с плероцеркоидами D. dendriticum в сердце у форели при выращивании в садках. Такое паразитирование приводит к разрыву предсердия, выходу плероцеркоидов в околосердечную сумку и прекращению кровотока, что неминуемо провоцирует гибель рыб. В данной работе содержатся материалы о встречаемости плероцеркоидов D. dendriticum в полости сердца у разводимого в аквакультуре Карелии сига муксуна, а также токсикологическом анализе применявшихся на предприятии кормов. МАТЕРИАЛ и МЕТОДИКА Ихтиопатологический материал собирали в сентябре и декабре 2012 г. на садковом хозяйстве в северной части Ладожского озера, Республика Карелия. Методом неполного паразитологического вскрытия (Быховская-Павловская, 1985) изучили 27 экземпляров сигов. У рыб измеряли массу (г) и общую длину тела (АВ). для количественной характеристики заражённости рыб паразитами использовали показатели экстенсивности инвазии (ЭИ) и средней интенсивности заражения (экз. на рыбу). Учитывая патоморфологические изменения в кишечнике и других внутренних органах у сигов для диагностики кормового токсикоза была проведена экспресс-оценка используемых кормов (9 проб) на токсичность в соответствии с ГОСТ Р 52337-2006 "Корма, комбикорма, комбикормовое сырье. Методы определения общей токсичности". Биотестирование сделали на водно-ацетоновых и водных экстрактах с целью идентификации липофильных и гидрофильных токсинов. <a class="colorbox colorbox-insert" href="/sites/default/files/images/announcement/18/12/granuli.jpg" title="Корм"><img alt="Корм" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/18/12/granuli.jpg" style="width: 353px; height: 286px;" title="Корм" /></a> РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ Сиги (n=10 экз., средним весом 98,0 г), доставленные в сентябре 2012 г. в свежем охлаждённом виде (в пакете со льдом) в лабораторию, не имели клинико-патологических признаков какого-либо инвазионного заболевания. При микроскопии соскобов с поверхности тела и жабр, а также внутренних органов и содержимого кишечников паразитов не обнаружено. У одной из особей была слабо заметная желтизна на коже головы, у трёх желтоватые выделения из анального отверстия. Жабры у всех рыб естественного красного цвета. У 8 особей патоморфологические изменения и повреждения отсутствовали, у двух особей на жаберных лепестках были единичные точечные кровоизлияния. При вскрытии у рыб обнаружили инфильтрацию желчи из желчного пузыря в полость тела и в кишечник (у отдельных рыб вплоть до ануса), кишечники пустые, со слизью желтоватого цвета, желчный пузырь без патологии и немного увеличен за счёт переполненного желчью, что обычно возникает, когда рыба не питается. Подобные клинико-патологические изменения возможны при использовании недоброкачественных (токсичных) кормов или таком паразитарном заболевании как хлоромиксоз, но данные паразиты у рыб не были обнаружены. По токсикологическим характеристикам корма, исследованные в сентябре 2012 г. (6 проб), показали непригодность для использования в рыбных целях. Водные экстракты первых 3-х образцов проявляли слабую токсичность, тогда как остальные 3 были токсичными. Водно-ацетоновые экстракты всех 6 проб кормов имели токсичные свойства, о чём свидетельствовал 100% лизис инфузорий в течение 20-30 минут после добавления экстракта. В декабре 2012 г. при клиническом осмотре сигов (n=17 экз., средним весом 82,3 г), поступивших в лабораторию также в свежем виде, были выявлены точечные кровоизлияния на рыле, у основания грудных и брюшных плавников (у 40% рыб), кровоизлияния в глазное яблоко и слабовыраженное покраснение ануса (24%). При патолого-анатомическом вскрытии отмечены изменения во внутренних органах: стенки кишечника у всех рыб с кровоизлияниями, средний и задний отделы воспалены; печень немного анемичная, дряблой консистенции. У 15% рыб при осмотре сердца были выявлены плероцеркоиды D. dendriticum (интенсивность инвазии - 1 экз/рыбу). Кроме того, у 8 рыб (46%) в печени были обнаружены цисты размером 3х3 мм желтовато-белого цвета с плероцеркоидами. Интенсивность инвазии составила от 1 до 3 экз/рыбу. У одного экземпляра рыбы (самого мелкого из осмотренных сигов, массой 15,5 г) на печени выявлены 3 метацеркарии трематоды Ichthyocotylurus erraticus и 1 экз. дифиллоботрииды в печени. В хрусталиках глаз у 62% обследованных рыб обнаружены метацеркарии трематод р. Diplostomum и Tylodelphus. Заражённость этими паразитами составляла от 1 до 7 экз/рыбу с преобладанием диплостом. У 23% рыб хрусталики были белого цвета. Водно-ацетоновые экстракты всех 3-х проб кормов, исследованных в декабре 2012 года, не проявляли токсических свойств, о чём свидетельствовала выживаемость инфузорий в диапазоне 70-100% после одночасового экспонирования. Из водных экстрактов только для образца №1 отметили слабую токсичность, остальные 2 были нетоксичными. Рассмотренный случай гибели сига является наглядным примером последствий неправильного ведения рыбоводной деятельности. Доброкачественные корма и благоприятные условия содержания рыбы в садках выступают главным фактором успешного выращивания объектов аквакультуры. Использование в течение длительного периода непригодных кормов в ситуации с сигом на садковой ферме Ладожского озера ослабило иммунный статус выращиваемых рыб и в дальнейшем повлекло за собой их массовую гибель. На фоне низкой сопротивляемости организма проявились клинические признаки инфекционных и инвазионных патологий, которые следует рассматривать как вторичные процессы, принимая во внимание, что смертность муксунов в декабре не наблюдалась. В августе она составляла 11,2%, в сентябре - 26,4%. Также стоит отметить, что садковые хозяйства выступают уникальным местом, где можно получить данные о встречаемости новых видов паразитов и успеть зарегистрировать факт локализации в нетипичном месте. В настоящее время сведения о находках цестод в полости сердца у диких рыб в местах их естественного местообитания могут отсутствовать из-за моментальной смерти хозяина вследствие закупорки кровеносного просвета. Поэтому не исключается и такой вариант, что случаи проникновения дифиллоботриид в полость сердца у сигов может быть достаточно распространённым природным явлением, но вероятность обнаружения его в этих условиях крайне низкая. В целях проведения паразитологического контроля на рыбном хозяйстве совместно с представителями госветслужбы района разрабатывался и внедрялся план лечебно-профилактических и карантинных мероприятий, направленный против распространения дифиллоботриоза. ЗАКЛЮЧЕНИЕ Наиболее вероятной причиной гибели сигов в садковом хозяйстве Ладожского озера в летне-осенний период без ярко выраженной клинической картины какого-либо инвазионного заболевания явился токсический фактор (кормовой или водный), что подтверждается анализом кормов и длительным периодом их использования на предприятии. Это может снижать имунный барьер у рыб и способствовать расширению мест обитания в организме хозяина плероцеркоидов D. dendriticum. В сентябре у муксуна при паразитологическом исследовании не были обнаружены экто- и эндопаразиты, в то время как в декабре у 15% сигов зарегистрированы в полости сердца плероцеркоиды D. dendriticum. В настоящее время отсутствуют эффективные методы терапии против дифиллоботриумов, поэтому для поддержания эпизоотического благополучия хозяйств необходим тщательный ветеринарный контроль как завозимог рыбопосадочного материала, так и в процессе выращивания сиговых рыб в озёрах, которые являются природными очагами дифиллоботриозов. <hr /> Автор: А.Н. Паршуков, Н.А. Головина, Н.Н. Романова, П.П. Головин, М.В. Михайлова Источник: Труды ВНИРО, 2017 г., том 167 Ключевые слова: сиг, садковые хозяйства, гибель рыб, ихтиопатологические исследования.

Читать

3 декабря 2018

Мониторинг состояния экосистемы Матырского водохранилища (Липецкая область)

ВВЕДЕНИЕ Матырское водохранилище расположено на р. Матыра Грязинского района Липецкой области. Площадь и объем воды в течение года меняются в значительных пределах: площадь от 45 до 21 км², объем - от 144 до 22 млн. м³. Наибольшпая сработка уровня наблюдается в зимний период. Водоём руслового типа, мелководный. Водохранилище используется для орошения сельскохозяйственных земель. Промышленный лов рыбы отсутствует, использование рыбных запасов осуществляется в основном рыбаками-любителями. Цель работы - оценка состояния экосистемы Матырского водохранилища по гидрохимическим показателям воды и донных отложений, а также по основным характеристикам зоопланктонного и зообентосного сообществ. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ Гидрохимические исследования проведены в лаборатории гидрохимии и токсикологии ВНИИПРХ по аттестованным методам. Исследования по загрязнению воды, донных отложений и рыбы солями тяжелых металлов (свинец, кадмий, мышьяк, ртуть) проводились в период с апреля по декабрь. Анализ проб осуществлялся методом вольт-амперометрической инверсии. Гидробиологические пробы отбирали раз в месяц с мая по октябрь по сетке станций, охватывающих разнообразные участки биотопа (рисунок). Пробы фитопланктона отбирали на пяти станциях (№2, 4, 6, 15, 18), зоопланктона и зообентоса - на 18 станциях. Материал собирали и обрабатывали общепринятыми в гидробиологической практике методами. При биоиндикации качества воды применяли индекс Пантле-Букка и олигохетный индекс Гуднайт-Уитли. <img alt="Карта-схема отбора проб" height="305" src="/sites/default/files/images/announcement/18/12/ttttt.png" title="Карта-схема отбора проб" width="391" /> Карта-схема отбора проб ЗАКЛЮЧЕНИЕ Оценка экологического состояния Матырского водохранилища проведена с учетом гидрохимических показателей, содержания тяжелых металлов в воде и донных отложениях и биоиндикации. Динамика основных гидрохимических показателей показывает, что в воде водохранилища отмечены превышения ПДК для фосфат-ионов и общего железа, что может быть связано с наличием их залежей в данном регионе. Содержание в воде ртути превышало предельно допустимые значения, что требует дополнительного контроля за токсичным загрязнением этим элементом. В донных отложениях концентрация солей тяжелых металлов (свинца, кадмия, мышьяка, ртути) не превышала предельно допустимые значения для рыбохозяйственных водоемов. Прибрежная зона характеризуется высокой зарастаемостью высшей водной растительностью. Фитопланктон представлен довольно широким спектром видового разнообразия. Количественное развитие не отличалось высокими показателями: в среднем за вегетационный период численность составила 2,2 млн. кл./л, биомасса - 7,6 мг/л. В составе зоопланктонного сообщества обнаружены коловратки, ветвистоусые и веслоногие ракообразные. Прослежена пространственно-временная динамика количественного развития, определен качественный состав и соотношение основных групп зоопланктонных организмов. Численность зоопланктона снижалась от весны к осени по нисходящей кривой, составив в среднем за вегетационный период 162,1 тыс. шт./м³. Биомасса изменялась от 0,4 до 1,7 г/м³, составив в среднем 0,99 г/м³, что указывает на низкий уровень развития зоопланктона. В составе зообентоса обнаружены личинки хирономид, прочих насекомых (мокрецов, хаоборусов), личинки ручейников, водяные ослики, моллюски (дрейссена и брюхоногие), олигохеты, пиявки и нематоды. По биомассе доминировала дрейссена (в среднем за вегетационный период 125,1 г/м²). Биомасса наиболее ценного в кормовом отношении для рыб "мягкого" зообентоса составила 3, 76 г/м². Биоиндикация сапробности по системе Пентле-Букка характеризовала состояние водохранилища в целдом как бета-мезосапробное. Олигохетный индекс Гуднайт-Уитли колебался от 2 до 100%, что указывает на участки со слабым и сильным органическим загрязнением. Биоиндикация качества воды по зоопланктону и зообентосу в основном подтвердила гидрохимическую оценку состояния водохранилища. <hr /> Автор: З.И. Шмакова, С.С. Ускова, А.В. Здрок Источник: Материалы IX Международной научно-практической конференции. Керчь, 6 октября 2017 г. Ключевые слова: экосистема, Матырское водохранилище, исследования, ВНИИПРХ.

Читать

19 ноября 2018

Племенной материал карпа селекции ВНИИПРХ и способы его распространения

Одним из способов увеличения продуктивности прудовых хозяйств является использование для товарного выращивания более качественного племенного посадочного материала. По нашим оценкам, доля племенного посадочного материала в карповодстве (а карп по-прежнему остается основным объектом российской аквакультуры) сейчас находится на уровне 20-30%, остальное - беспородные карпы. При этом существует более 20 пород, типов и кроссов карпа отечественной селекции, из них восемь в ФГБНУ "ВНИИПРХ". Селекционные работы с карпом лабораторией генетики и селекции ВНИИПРХ ведутся более 50 лет. К настоящему времени имеем следующее: <ul> <li style="text-align: justify;">парская порода карпа с двумя внутрипородными типами (московский чешуйчатый и московский разбросанный);</li> <li style="text-align: justify;">ангелинский чешуйчатый и ангелинский зеркальный (с повышенной устойчивостью к "краснухе") породы карпа;</li> <li style="text-align: justify;">генетически маркированная порода карпа КМ 1 (аналог амурского сазана);</li> <li style="text-align: justify;">кросс дмитровский (F1 от скрещивания самок московского чешуйчатого типа парской породы карпа и самцов КМ 1); </li> <li style="text-align: justify;">баттерфляй, маркированный геном окраски.</li> </ul> Кроме того, на основе сформированного племенного фонда так называемого "среднерусского карпа" ведутся работы по выведению ещё нескольких пород. Ассортимент селекционных достижений позволяет обеспечивать рыбоводные хозяйства высококачественным племенным и рыбопосадочным материалом в виде промышленных кроссов. Нами были исследованы более 10 комбинаций различных внутрипородных и межпородных скрещиваний карп. Наиболее перспективные из них представлены в таблице №1. <div align="center"> <table border="1" cellpadding="1" cellspacing="1" class="margin:auto;" height="109" style="width: 60%;" width="502"> <tbody> <tr> <td style="text-align: center;">Кросс</td> <td style="text-align: center;">Тип чешуи</td> <td style="text-align: center;">Рекомендуемое использование</td> </tr> <tr> <td style="text-align: center;">МЧ х МР и МР х МЧ</td> <td style="text-align: center;">Чешуйчатый и разбросанный</td> <td style="text-align: center;">кроссы внутрипородных типов парской породы карпа - для промышленных хозяйств I-III зон рыбоводства</td> </tr> <tr> <td style="text-align: center;">МЧ х заг.</td> <td style="text-align: center;">Чешуйчатый</td> <td style="text-align: center;">для хозяйств I-II зон рыбоводства</td> </tr> <tr> <td style="text-align: center;">МР х ЗУ-НК</td> <td style="text-align: center;">Разбросанный</td> <td style="text-align: center;">для индустриальных тепловодных хозяйств или южных регионов России</td> </tr> <tr> <td style="text-align: center;">ЗУ-НК х МЧ</td> <td style="text-align: center;">Чешуйчатый</td> <td style="text-align: center;">для прудовых хозяйств I-III зон рыбоводства</td> </tr> <tr> <td style="text-align: center;">ЗУ-НК х баттерфляй</td> <td style="text-align: center;">Разбросанный</td> <td style="text-align: center;">для прудовых хозяйств III-IV зон рыбоводства</td> </tr> <tr> <td style="text-align: center;">МР х баттерфляй </td> <td style="text-align: center;">Разбросанный</td> <td style="text-align: center;">Гибрид парского и среднерусского карпов для прудовых хозяйств III-V зон рыбоводства</td> </tr> <tr> <td style="text-align: center;">Кросс дмитровский (МЧ х КМ 1)</td> <td style="text-align: center;">Чешуйчатый</td> <td style="text-align: center;">Карпо-сазаний гибрид для выращивания в центральных и северных регионах России. Патент</td> </tr> <tr> <td style="text-align: center;">Кросс мадам беттерфляй</td> <td style="text-align: center;">Разбросанный с рисунком</td> <td style="text-align: center;">Одноположенский кросс для рыбоводных предприятий на теплых водах и прудовых хозяйств южных регионов России</td> </tr> </tbody> </table> </div> Таблица №1. Кроссы карпа селекции ВНИИПРХ <hr /> Расшифровка названий кроссовых групп: МЧ - московский чешуйчатый тип парской породы; МР - московский зеркальный тип парской породы; ЗУ-НК - загорский, украинский-нивский, курск Заг. - загорский; КМ 1 - карп маркированный (аналог амурского сазана); Мадам баттерфляй - кросс от скрещивания самцов-инверсантов баттерфляй с самками московского разбросанного карпа. <hr /> Проведенные исследования показали, что гибридизация племенных групп позволяет получать от 10 до 20% и более дополнительной рыбной продукции. Распространение племенного материала карпа предлагается в следующем виде: <ul> <li style="text-align: justify;">сеголетки, годовики;</li> <li style="text-align: justify;">подрощенные личинки;</li> <li style="text-align: justify;">личинки;</li> <li style="text-align: justify;">оплодотворенная икра;</li> <li style="text-align: justify;">неоплодотворенная икра;</li> <li style="text-align: justify;">сперма.</li> </ul> Четыре последние позиции возможно производить практически в неограниченных объемах. Оплодотворенная икра представляет интерес для хозяйств, имеющих хотя бы элементарный инкубационный цех. Неоплодотворенная икра и сперма - для рыбхозов, имеющих свое стадо производителей, но желающих получить гетерозисный эффект от промышленной гибридизации. <hr /> Автор: Дементьев Н.В., к.б.н., заведующий лабораторией генетики и селекции рыб ФГБНУ "ВНИИПРХ" Источник: рыба №1 (18), 2017 Фото: информационно-аналитический отдел ФГБНУ "ВНИИПРХ"

Читать

9 ноября 2018

Пути повышения эффективности товарного рыбоводства

Объем производства продукции прудового рыбоводства - основы товарной аквакультуры - к 2020 г. должен составить 215 тыс. т, или 52,4% общего объема (410 тыс.т) продукции пресноводной аквакультуры (Багров, Мамонтов, 2008). <img alt="Рыба" src="/sites/default/files/images/announcement/18/11/nastol.com_.ua-171546.jpg" style="margin-right: 5px; margin-left: 5px; font-size: 13.008px; text-align: justify; width: 319px; height: 319px; float: left;" title="Рыба" /> Реализация потенциальных возможностей пресноводной аквакультуры России в будущем в существенной степени будет зависеть не только от производства товарной рыбы различной массы (350-1000 г), которая определяется, в основном, рыночным спросом, но и нужного количества качественного посадочного материала различных видов рыб, предназначенного для зарыбления водоемов большого типового разнообразия. Такой материал характеризуется повышенной средней массой (50-150 г и выше) и более высокой возрастной категорией (от годовиков до двухгодовиков). Лаборатория прудового рыбоводства ФГБНУ "ВНИИПРХ" в течение многих лет проводит исследования и разрабатывает научно-обоснованные рекомендации по созданию ресурсосберегающих биотехнологий с направленным формированием состава поликультур для вселения в естественные водоемы, а также для выращивания товарной рыбы. Наиболее перспективными объектами для разработки ресурсосберегающих биотехнологий продолжают оставаться рыбы амурского комплекса - толстолобики белый (Hypophthalmichthys molitrix) и пестрый (H. nobilis) и их гибриды, белый (Ctenopharyngodon idella) и чёрный (Mylopharyngodon piceus) амуры, а также новые гибридные формы карповых рыб, например, карасекарпы (Carassius auratus gibelio x Cyprinus carpio) и карпокараси (C. carpio. x C. auratus gibelio), обладающие всеми продукционными достоинствами карпа и карася. Потребляя прдукцию первых звеньев трофической цепи (фито-, зоопланктон, мягкий бентос, моллюсков, высшую водную растительность), эти виды обеспечивают рост рыбопродукции и способствуют улучшению санитарного и экологического состояния водоемов (ликвидируют зарастание макрофитами и "цветение" воды, обрастание моллюсками гидротехнических сооружений). Карповые рыбы (сем. Cyprinidae), выгодно отличаются от дорогих (деликатесных) рыб (осетровые, лососевые) большим разнообразием весовых кондиций, пород и кроссов. В основе биотехнологий их культивирования лежит использование недорогих кормов, органических удобрений, имеющих относительно низкую стоимость, направленное формирование естественной кормовой базы путем изменения структуры биоценозов за счет введения в их состав высокопродуктивных кормовых для рыб организмов, подбор рыб с различным спектром питания. Таким образом, разведение карповых рыб в прудовой поликультуре остается актуальным для насыщения рынка дешевой рыбной продукцией, выращиваемой во внутренних водоемах России. В результате проведенных исследований разработан ряд биотехнологий, отвечающих реализации стратегических задач аквакультуры по созданию ресурсосберегающих технологий выращивания посадочного материала необходимой массы, а также товарной рыбы с целенаправленным формированием состава поликультуры. Новые технологии прудового рыбоводства. На территории Российской Федерации имеется огромный фонд водоемов различного типа и назначения, рыбопродуктивность которых незначительна и находится на уровне 5-10 кг/га. Увеличение рыбопродуктивности таких водоемов возможно за счет увеличения разнообразия поликультуры и внесения необходимого количества посадочного материала различных видов рыб. В решении поставленной задачи наиболее актуально производство качественного посадочного материала белого амура (C. idella), пестрого и белого толстолобиков (H. nobilis, H. molitrix) или их гибридов и черного амура (M. piceus) в нужных количествах (Федорченко и др., 2002). <img alt="Рекреационный участок" height="220" src="/sites/default/files/images/announcement/18/11/dji_0269_2.jpg" style="margin-left: 5px; margin-right: 5px; float: right;" title="Рекреационный участок" width="300" /> Требует дополнительного внимания ситуация с выращиванием белого амура, который за счет утилизации макрофитов может дать дополнительно сотни тысяч тонн относительно дешевой товарной рыбы высокого качества, между тем в недалеком прошлом прудовое рыбоводство выращивало белого амура преимущественно для борьбы с макрофитами в прудах, т.е. в качестве биологического мелиоратора. Сложным остается вопрос широкомасштабного производства черного амура, выращиванием которого прудовые хозяйства практически не занимаются. Одной из таких биотехнологий является технология выращивания крупного посадочного материала белого амура в качестве основного объекта прудовой поликультуры в сочетании с карпом, толстолобиком и черным амуром. Согласно разработанной биотехнологии в зонах умеренного климата выращиваемый посадочный материал двухлетков белого амура и толстолобиков средней массой не менее 100 г/экз. и двухлетков черного амура средней массой 90 г/экз. пересаживается в водоемы пастбищной аквакультуры при снижении температуры воды в прудах в конце лета до 18°С. Такая средняя масса наиболее оптимальна для избежания пресса хищников, а осеннее зарыбление удлиняет срок адаптации растительноядных рыб в новом для них водоеме и увеличивает их выживаемость в зимний период. Кроме того, сокращаются расходы на их зимовку. Важным в новой биотехнологии является то, что, кроме посадочного материала растительноядных рыб и черного амура, дополнительно выращивается товарный карп (C. caprio), который может быть реализован населению. В Южных зонах прудового рыбоводства посадочный материал растительноядных рыб может быть высажен в водоемы комплексного назначения и водохранилища в возрасте сеголетка, т.к. достигает массы 60-70 г/экз. уже к концу первого сезона выращивания. Биотехнология была разработана на основании детального изучения условий выращивания рыб в прудовой поликультуре (контроль температуры воды, прозрачности, содержанию растворенного в воде кислорода, бихроматной окисляемости, рН среды, динамики первичной продукции планктона и деструкции органического вещества, динамики фитопланктона, зоопланктона, бентоса. Были изучены морфофизиологические показатели тела, спектры питания и пищевые взаимоотношения всех видов рыб поликультуры (Артамонова и др., 2002). <hr /> Автор: А.Ю. Киселёв, Т.И. Артамонова, Ф.Г. Федорченко, М.К. Трубникова, Р.П. Мамонтова Источник: Вопросы Рыболовства, 2012, том 13, №3(51), с. 577-588 Фото: информационно-аналитический отдел ФГБНУ "ВНИИПРХ"

Читать

29 октября 2018

Всё зависит от нас

<a class="colorbox colorbox-insert" href="/sites/default/files/images/announcement/18/10/regnum_picture_1456934654231216_big.jpg" title="Всё в наших руках"><img alt="Всё в наших руках" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/18/10/regnum_picture_1456934654231216_big.jpg" style="width: 325px; height: 174px;" title="Всё в наших руках" /></a> До тех пор, пока люди будут думать, что проблемы экологии - это проблемы только экологов, ничего хорошего не выйдет. Всё начинается с нас самих, каждый человек должен бережно относиться к природе. Защита окружающей среды очень важное и нужное дело. Большинство осознает это, однако совершенно ничего не предпринимает для защиты природы. Мы надеемся, что этим займутся государство, крупные корпорации и природоохранные организации. Но что они смогут сделать без нас, обычных людей. Профинансировать какой-либо проект по восстановлению экологического равновесия в каком-либо регионе? Но что привело к нарушению этого равновесия и загрязнению окружающей среды? Это, конечно же, деятельность человека, причем как крупных предприятий, так и обычных людей! Поэтому, для защиты нашей планеты каждый должен начать действовать. Защита природы должна быть в приоритете для каждого жителя Планеты. Для того, чтобы внести свой вклад в улучшение экологической ситуации в мире, достаточно выполнять простые действия: <a class="colorbox colorbox-insert" href="/sites/default/files/images/announcement/18/10/tekushchiy-kran-2-fb.jpg" title="Текущий кран"><img alt="Текущий кран" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/18/10/tekushchiy-kran-2-fb.jpg" style="margin-left: 5px; margin-right: 5px; float: left; width: 133px; height: 99px;" title="Текущий кран" /></a> - экономить воду. Водные ресурсы Земли огромны, но мы чаще всего используем отработанную воду. Чем больше воды мы тратим, тем больше химикатов нужно, чтобы её очистить для повторного использования. <a class="colorbox colorbox-insert" href="/sites/default/files/images/announcement/18/10/spasyom_derevya.jpg" title="Спасём деревья"><img alt="Спасём деревья" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/18/10/spasyom_derevya.jpg" style="margin-left: 5px; margin-right: 5px; float: right; width: 144px; height: 107px;" title="Спасём деревья" /></a> - не мусорить и не выбрасывать вместе с бытовым мусором: бумагу, батарейки, пластик и т.д. Бумагу и картон можно сдавать на переработку. При этом экономится не менее 1000 Квт электроэнергии, 20 000 л воды, не применяются химические соединения, сокращается выброс СО² в воздух. Но самое главное - остаются невредимыми леса - "лёгкие" нашей планеты. Выкидывая в мусор очередную коробку, никто не задумывается о том, что 100 кг макулатуры могут спасти одно или два дерева, одной тонной использованной бумаги можно заменить 4-5 м³ древесины. <a class="colorbox colorbox-insert" href="/sites/default/files/images/announcement/18/10/odna_batareyka_otravlyaet.png" title="Батарейка"><img alt="Батарейка" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/18/10/odna_batareyka_otravlyaet.png" style="width: 178px; height: 93px; margin-left: 5px; margin-right: 5px; float: left;" title="Батарейка" /></a> Батарейки можно сдавать в пункты приёма. Одна батарейка формата АА (пальчиковая) может загрязнить от 10-20 м². Площадь территории, на которой может расти два дерева, жить один ёжик, пара кротов и несколько тысяч дождевых червей. <a class="colorbox colorbox-insert" href="/sites/default/files/images/announcement/18/10/planeta-musorka.jpg" title="Всё зависит от нас"><img alt="Всё зависит от нас" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/18/10/planeta-musorka.jpg" style="width: 146px; height: 115px; margin-left: 5px; margin-right: 5px; float: right;" title="Всё зависит от нас" /></a> Что же касается пластика, который полностью разлагается до 500 лет, при существующих темпах производства пластиковых продуктов, наша планета покроется пластиком ещё до того, как первые пластиковые предметы начнут разлагаться. Сдавать в специальные контейнеры для сбора пластиковых бутылок, начать хотя бы с бутылок. В нашем городе Дмитров таким важным вопросам уделяют мало внимания, пункты приёма пластиковых бутылок появляются в качестве разовых акций. Конечно, понятно, что никто не будет копить пластиковые или стеклянные бутылки, ожидая акций или везти пару бутылок за "тридевять земель" до ближайшего специализированного пункта приёма. Когда у нас бытовой мусор порой до мусорных контейнеров донести не могут. Особенно это касается мусора, оставленного после отдыха на природе. <a class="colorbox colorbox-insert" href="/sites/default/files/images/announcement/18/10/dsc_0047.jpg" title="Мусор, оставленный отдыхающими на Жестылёвском водохранилище"><img alt="Всё зависит от нас" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/18/10/dsc_0047.jpg" style="width: 238px; height: 176px;" title="Мусор, оставленный отдыхающими на Жестылевском водохранилище" /></a> <a class="colorbox colorbox-insert" href="/sites/default/files/images/announcement/18/10/jwepxccdpfptdykgowdg7eh2hztk7uatnnfai6b4uaesppszorsb1.jpg" title="Мусор, оставленный отдыхающими на Жестылёвском водохранилище"><img alt="Мусор, оставленный отдыхающими на Жестылёвском водохранилище" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/18/10/jwepxccdpfptdykgowdg7eh2hztk7uatnnfai6b4uaesppszorsb1.jpg" style="width: 238px; height: 176px;" title="Мусор, оставленный отдыхающими на Жестылёвском водохранилище" /></a> Всё начинается с нас самих! Наши дети будут поступать ровно так, как поступаем мы с Вами. Потому что, лучший учитель - это личный пример. Чему мы научим наших детей, и в каком состоянии оставим нашу планету - наш "дом", зависит только от нас. <hr /> Автор: Базарумбетов Марат Хасанович, инженер по охране окружающей среды Фото: Базарумбетов Марат Хасанович, инженер по охране окружающей среды

Читать

19 октября 2018

Технологические особенности выращивания и формирования ремонтно-маточного стада вырезуба в условиях различных типов хозяйств

<img alt="Вырезуб" height="238" src="/sites/default/files/images/announcement/18/10/red-dh-1.jpg" title="Вырезуб" width="443" /> <blockquote> В представленных материалах отражены результаты многолетних исследований по разработке технологий формирования и выращивания ремонтно-маточных стад вырезуба в условиях рыбоводных хозяйств различного типа. Приведены рыбоводно-биологические характеристики вырезуба на разных этапах онтогенеза и технологические особенности его выращивания. </blockquote> Вырезуб (Rutilus frisil) является ценной промысловой рыбой, уловы которой в двадцатые годы прошлого века составляли только в Днепровско-Бугском лимане 200-240 тонн в год (Атлас, 2003), относится к семейству карповых. В естественном ареале обитания особи достигают максимальной массы 8 кг и длины до 70 см (Смирнова, Трушинская, 1964). Лоб широкий, спина темная, бока светло-серебристные, брюхо белое. Спинной и хвостовой плавники темные, остальные - сероватые. Рот нижний, при этом верхняя губа слегка выдвигается над нижней. Ареал обитания вырезуба включает реки Азово-Черноморского бассейна, а также Восточной Болгарии до Западного Закавказья (Болгария, Молдавия, Украина, Россия, Грузия). Половозрелыми самки вырезуба становятся на четвертом-пятом году жизни, самцы созревают на год раньше. В боковой линии имеется 53-68 чешуй. Жаберных тычинок - 7-12. Глоточные зубы однорядные, мощные, короткие, обычно 6-5, редко 6-6 или 5-5, позвонков 42-44. Кариотип: 2n=50, NF=82 (Атлас, 2003). У вырезуба наблюдается половой деформизм: самки крупнее самцов. Перед нерестом самцы приобретают "брачный наряд": тело покрывается эпителиальными бугорками, так называемой жемчужной сыпью, которая исчезает сразу же после нереста. В настоящее время вырезуб стал редкой рыбой. Вид в целом (подвиды вырезуб и кутум) занесен в "Красную книгу МСОП" и в "Красную книгу России". В связи с этим основной целью проведенных исследований являлась разработка биотехники разведения и метода воспроизводства вырезуба. Кроме того в качестве вспомогательных данных были получены сведения о биологических особенностях вырезуба в условиях индустриальных хозяйств. МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЯ Наша работа была начата в 2007 году, все исследования и измерения проводились на индустриальном хозяйстве ООО "Биоакустик". В нашей работе мы использовали инкубаторы "Вейса", для подращивания молоди использовались Ейские лотки, пластиковые ванны объемом 2,5х3 м. Для кормления использовались живые корма (мотыль, трубочник, рыбный фарш), а также стартовые и продукционные комбикорма "Scretting" и "Raisio". Для контроля кислорода и температуры в емкостях использовался термоксиметр "Oxigard". Для анестезии использовали гвоздичное масло. После работы с производителями применялись современные антибиотики (клофоран). На данный момент работа по формированию ремонтно-маточного стада вырезуба в условиях индустриального хозяйства в РФ ведется только на ООО "Биоакустик". Нами же ведется работа по разработке методов, позволяющих снизить воздействие стресса на вырезуба, а так же помогающих в короткие сроки адаптировать его к индустриальным условиям. Представленные ниже материалы носят рекомендательный характер для практического использования. Формирование маточного стада из "диких" производителей Заготовку производителей вырезуба в местах их естественного обитания можно осуществлять поздней осенью (октябрь, ноябрь) и весной (апрель, май). Отлов производится в ночное время плавными сетями. Для этой работы лучше привлекать коренное население, т.к. каждая река имеет особенности, которые знают только местные рыбаки. Перевозят выловленных особей в пакетах с кислородом, но лучше на специальной живорыбной машине при низких температурах. Осенью при транспортировке вода должна быть равна температуре в реке, откуда была выловлена рыба, а весной чтобы избежать перезревания икры - на 2-3 градуса ниже. При осенней заготовке рыбу после перевозки необходимо обработать метиленовым синим из расчета 2 г на м³, а зимовку проводить при температуре не выше 2ºС. При этой температуре вырезуб ведет себя тихо, не проявляя беспокойства. При весенней заготовке значение имеет каждый час. После перевозки рыбы необходимо в течение одних-двух суток вывести температуру воды на нерестовую и сразу получать икру, иначе возникает риск ее перезревания под действием стресса, также высока вероятность гибели производителей. Для формирования стада вырезуба из особей, отловленных из естественных мест обитания, необходимо получить разрешительные документы. Получение половых продуктов Созревание половых продуктов у производителей вырезуба в естественной среде обитания происходит при температуре воды 12-14ºС. при этой же температуре происходит нерест. Поэтому для получения половых продуктов в искусственных условиях воду нужно подогреть до 14ºС, при этом желательно, чтобы подъем температуры совпадал с естественным прогревом реки. Если вырезуб был выловлен из естественного водоема при нерестовой температуре, то высока вероятность, что самки в течение нескольких часов могут дать икру без инъекции. Если этого не происходит, то икру можно получить при помощи гипофизарной инъекции. Лучше сделать дробную инъекцию из расчета 8 мг на 1 кг массы рыбы: сначала предварительную (0,6-0,8 мг/кг), а затем через 12 ч - разрешающую (7 мг/кг). С самцами все намного проще, как правило. они начинают давать сперму при легком нажатии на брюшко уже при температуре воды 9ºС, и поэтому с получением половых продуктов у самцов проблем не бывает. Однако инъекция гипофиза (2 мг/кг) дает 100%-й результат, а кроме того, увеличивается объем эякулята и качество получаемых половых продуктов. Полученную икру оплодотворяют "сухим" способом. Обесклеивание икры лучше проводить молоком вручную в эмалированныцх или пластиковых тазах в течение 45-50 минут. При работе с производителями желательно применять анастезию. В нашем исследовании было использовано гвоздичное масло из расчета 4 мл масла на 100 л воды. Сначала следует добавить его в небольшую бутылочку с теплой водой, тщательно перемешать, затем содержимое вылить в емкость с водой, где еще раз перемешать. Перед любой манипуляцией с рыбой мы сначала проводим анастезию (релаксацию), для этого опускаем вырезуба в ванну с анестетиком на 1-1,5 мин. Как только вырезуб начинает переворачиваться, его нужно вынуть из ванны и можно приступать к работе. После работы с рыбой ее необходимо поместить в проточную воду, где она восстанавливается в течении 5 минут. Также мы рекомендуем после получения половых продуктов сделать укол антибиотика (цефотаксим, цефтриаксон) из расчета 50 мг/кг. Такие меры предохранят производителей от гибели. Наш опыт показал, что при соблюдении этих правил вырезуб не погибает, в то время как пренебрежение ими приводит к гибели ценнейших рыб. Инкубация икры и подращивание личинок Для инкубации икры вырезуба лучше всего подходят аппараты Вейса. Нужно учитывать, что икра вырезуба крупнее карповой, поэтому норму загрузки лучше делать ниже, чем для карпа. Желательно не более 500 г икры на восьмилитровый аппарат. В природных условиях при температуре воды 8-16ºС инкубация икры длится 12-15 суток. В искусственных условиях при температуре воды 20ºС продолжительность инкубаци икры составляет 5-6 суток. Длина личинки при выклеве составляет 6 мм. После выхода из аппарата Вейса личинки практически сразу становятся на плав. Спустя 2-3 суток личинки переходят на внешнее питание. Лучшим кормом в первые 5-7 дней с момента начала питания являются науплиусы рачка артемии. С пятого дня кормления можно добавлять сухие стартовые корма. С 10-го дня личинок полностью переводят на сухие корма (можно использовать осетровые). Через 15 суток с момента начала кормления личинки достигают массы 50-70 мг. Такой размер при высадке личинок в пруды обеспечивает их высокую выживаемость. Выращивание сеголетков вырезуба в прудах Зарыблять пруды личинками вырезуба целесообразно после подращивания их до 20 мг и выше, что позволит получить высокую выживаемость. Личинки такого размера очень активны и способны питаться мелкими формами зоопланктона. Исследование кишечника личинок показывает, что они питаются детритом, фитопланктоном, зоопланктоном. При этом они охотно поедают и карповые корма. Вырезуба в прудах можно выращивать как в монокультуре, так и совместно с другими видами рыб. В 2009 году на экспериментально-производственной базе ВНИИР (Алимов, 2010) был проведен опыт по выращиванию личинок вырезуба в поликультуре с растительноядными рыбами и сомом. В июне выростной пруд площадью 0,4 га зарыбили 2-мя тысячами личинок вырезуба средней массой 24 мг, 50 тысячами трехсуточных личинок белого амура и белого толстолобика и пятисуточными личинками сома. По результатам осеннего облова средняя масса вырезуба составила 10,5 г при выживаемости 91,8%, сома - 59%, в то время как выживаемость растительноядных рыб не превысила 10%. Эксперимент показал принципиальную возможность выращивания сеголетков вырезуба в поликультуре с другими видами рыб в условиях прудового хозяйства. Следовательно, вырезуб может быть перспективным объектом отечественной аквакультуры (Алимов, 2010). Выращивание и формирование ремонтно-маточного стада вырезуба в индустриальных условиях Начиная с 2006 г., ведется работа по формированию ремонтно-маточного стада вырезуба в индустриальных условиях. Проводятся исследования по разработке методов доместикации вырезуба. В возрасте 14 мес. вырезуб имел среднюю массу 6 г. До этого момента молодь выращивали в пруду. Адаптация к новым условиям индустриального хозяйства проходила сложно, рыба постоянно подвергалась стрессам, отказывалась от стартовых сухих кормов, сбивалась в кучи в темных углах емкостей. Для того чттобы поддерживать жизнедеятельность молоди, ее приходилось подкармливать живыми кормами (трубочник, мотыль). И все же в малых дозах рыба потребляла искусственный корм. Для снижения факторов стресса затеняли емкости, пересаживали молодь в емкости, где нет шумового воздейтвия и контакта с персоналом. Все это не давало ощутимого результата - рыба крайне плохо росла и периодически погибала. Ситуация кардинально изменилась после того, как оставшиеся особи в количестве 24 штук были пересажены в емкость объемом 2,5 м³ с интенсивным освещением сверху. Оказалось, что если поместить лампы дневного освещения в емкостях в непосредственной близости от поверхности воды, вырезуб перестает беспокоиться, начинает активно потреблять пищу и перемещается по всей площади емкости. За период с июля 2006 г. по сентябрь 2011гг. масса рыб с 6 г возросла до 1 кг и более, ежегодный прирост составлял от 18 до 239 г. Накопленный опыт работы с вырезубом был перенесен на сеголетков вырезуба, выращенных в пруду и привезенных на завод осенью 2009 г. (Мышкин и др., 2010). Всего было привезено 107 особей средней массой 10,7 г. Для перевода рыбы на сухой корм мы использовали емкости с интенсивным освещением лампами дневного света, расположенными непосредственно над самой емкостью. В результате этого в течение семи дней нам удалось перевести всю молодь вырезуба на питание сухим кормом. Дальнейшее выращивание происходило при температурах от 14 до 24ºС. Наилучшщий темп роста вырезуба был при температуре воды 24ºС. После полной адаптации вырезуба пересадили на выращивание в бассейны к осетру, при этом плотность посадки осетра составляла от 10 до 15 кг на 1 м³, кормление - круглосуточное, с интервалом в 3 ч. При сравнении двух поколений вырезуба, которые в настоящее время выращиваются на хозяйстве, видно, что молодь поколения 2009 г. имеет более высокий темп роста, чем поколение 2006 г. Разницу в темпе роста можно объяснить тем, что поколение 2009 г. не нахдилось под длительным воздействием стресса и в кратчайшие сроки было переведено на сухие корма. Необходимо отметить, что во время работы с "дикими" производителями (отловленными из мест естественного обитания) нужно проявлять аккуратность и осторожность и учитывать также то, что вырезуб сильная но крайне неустойчивая к стрессам рыба. В то же время он нерпихотлив к условиям содержания. ЗАКЛЮЧЕНИЕ На основании проведенных исследований можно сделать следующие выводы: 1. Воздействие стресса является основным сдерживающим фактором выращивания вырезуба в условиях индустриального хозяйства. 2. При выращивании в индустриальных условиях с применением гранулированных кормов с раннего возраста (0+) вырезуб способен формировать половые продукты. 3. У половозрелых самок "диких" особей, содержащихся на заводе, не происходило повторное созревание икры в течении нескольких лет. В то время, как в прудах, самки созревали повторно. 4. В природных условиях вырезуб обладает более высоким темпом роста. РЕКОМЕНДАЦИИ 1. При работе с вырезубом, во избежание гибели особей, рекомендуем использовать анастезию. 2. В качестве корма для выращивания вырезуба возможно использование осетровых стартовых и продукционных комбикормов. 3. После получения половых продуктов, диких производителей целесообразно пересаживать на нагул в пруды с етественной кормовой базой. 4. Необходима длительная работа по доместикации этого ценного вида рыб. <hr /> Автор: А.В. Мышкин, Р.С.Ражуков Источник: Вопросы рыболовства,2012, том 13, №3(51), с. 643-651

Читать

10 октября 2018

Нанофиет - захватчик Приамурья

<img alt="Nanophyetus schikhobalowi" src="/sites/default/files/images/announcement/18/10/567.jpg" style="margin-right: 10px; margin-left: 10px; font-size: 13.008px; text-align: justify; width: 238px; height: 176px; float: left;" title="Nanophyetus schikhobalowi" /> Нанофиет (лососевый сосальщик) - это паразит, который вызывает болезнь нанофиетоз. Nanophyetus schikhobalowi представляет собой желто-белого плоского глиста, имеющего грушевидную форму, покрытую шипами. Отличается крохотным размером (длина - 0,5-1 мм, ширина - до 1 мм). Личинки приобретают инвазивность в тканях мускулатуры и внутренних органах рыб семейства хариусовых и лососевых. <img alt="Барсук" src="/sites/default/files/images/announcement/18/10/234.jpg" style="width: 238px; height: 176px; float: right; margin-left: 10px; margin-right: 10px;" title="Барсук" /> Окончательным хозяином паразита становятся: Человек, собака, барсук, кошка, волк, норка, росомаха и другие животные, которые питаются рыбой. Взрослые (половозрелые) особи гельминта, вызывающие заболевание, ведут паразитирующий образ жизни в организме млекопитающих животных и человека, в рационе которых присутствует рыба. Опасности заражения нанофиетом подтвержен и человек, особенно в таких рыбных регионах: <ul> <li style="text-align: justify;">Дальний Восток</li> <li style="text-align: justify;">Сахалин</li> <li style="text-align: justify;">Приморский край</li> <li style="text-align: justify;">Хабаровский край</li> <li style="text-align: justify;">Восточная Азия</li> <li style="text-align: justify;">Сибирь</li> <li style="text-align: justify;">Высокий показатель этой болезни наблюдается у притоков Хори, Амура и УССУРИ, а также в Северной Америке, Китае, Монголии.</li> </ul> Вышедшие с калом окончательного хозяина яйца для последующего развития должны попасть в воду температурой не ниже 20ºС. В течение 162-163 дней внутри яйца развивается личинка первой личиночной стадии - мирацидий. Мирацидий покидает яйцо и, плавая в толще воды, начинает поиск первого промежуточного хозяина - улитки. Внедрившись в тело моллюска, мирацидий продолжает свое развитие, трансформируясь в материнскую спороцисту - вторую личиночную стадию. Внутри спороцисты из зародышевых клеток рождаются несколько десятков редий - третья личиночная стадия трематод. Когда материнская спороциста лопается, редии выходят в организм промежуточного хозяина (улитки) и принимаются активно поглощать его ткани. Внутри редий, тем временем, начинается развитие четвертой личиночной стадии - церкариев, количество которых в одной редии может достигать 76 экземпляров. Церкарии, по своему строению напоминающие головастиков, покидают тело улитки и начинают поиск второго промежуточного хозяина - рыбы. Найдя подходящую рыбу, церкарии внедряются в её тело через кожу, попадают в кровеносную систему и достигают почек или тканей в основании хвоста. Там они отбрасывают свои плавательные хвосты, покрываются защитной цистой и превращаются в личинок пятой стадии - метацеркариев. <img alt="Жизненный цикл Nanophyetus schikhobalowi" height="250" src="/sites/default/files/images/announcement/18/10/123.jpg" title="Жизненный цикл Nanophyetus schikhobalowi" width="336" /> Жизненный цикл Nanophyetus schikhobalowi Метацеркарии становятся инвазионными (т.е. способными заразить окончательного хозяина) на 12-й день пребывания в рыбе. Внутри её организма они способны длительное время сохранять жизнеспособность, а рыба между тем заражается новыми церкариями - их количество в одной особи иногда превышает 2000 экземпляров. Медицине известны случаи, когда инфицированние гельминтом происходило через плохо помытые руки после разделки рыбы, которые случайно попали в ротовую полость человека. Желудочный сок разрушающе воздействует на цисту метацеркарии, тем самым способствуя выходу личинок, которые обживаются в верхнем отделе тонкой кишки. Через 8 дней эти личинки достигают своей последней фазы развития - марит (половозрелые особи паразита), которые начинают откладывать яйца. Далее яйца выходят с фекалиями и, попав в водоемы, начинают свой жизненный цикл. Продолжительность жизненного цикла взрослой особи нанофиета - около 35-60 дней. Однако, на сегодняшний день, данных о последовательности (патогенезе) и клинических особенностях нанофиетоза совершенно недостаточно. Достоверно известно только то, что гельминт механически влияет на слизистую оболочку ЖКТ, а продукты их жизнедеятельности провоцируют аллергические проявления и интоксикацию человеческого организма. Клиническая картина в организме человека: <ul> <li style="text-align: justify;">Тошнота</li> <li style="text-align: justify;">Отсутствие аппетита</li> <li style="text-align: justify;">Диарея сменяется запорами</li> <li style="text-align: justify;">Рвота</li> <li style="text-align: justify;">Головная боль</li> <li style="text-align: justify;">Бледность кожных покровов</li> <li style="text-align: justify;">Стремительная потеря веса</li> <li style="text-align: justify;">Резкая и приступообразная боль в животе</li> <li style="text-align: justify;">Вздутие и урчание кишечника</li> <li style="text-align: justify;">Болезненный дискомфорт в районе расположения желчного пузыря</li> <li style="text-align: justify;">Увеличение печени</li> <li style="text-align: justify;">Общая слабость</li> </ul> <img alt="Внимание" src="/sites/default/files/images/announcement/18/10/untitled.png" style="margin-left: 10px; margin-right: 10px; float: left; width: 51px; height: 76px;" title="Внимание" /> Помимо того, что у детей симптомы нанофиетоза сопровождаются нервными расстройствами, в том числе эпилептическим приступом, который считается самым тяжким. Ввиду того, что жизнь паразита в организме человека сравнительно недолгая (1-2 месяца), через какое-то время признаки проявления болезни исчезают. Однако, не стоит надеятся на то, что произошло самоизлечение. Такое легкое протекание недуга свойственно только людям. В том случае, когда зараженную рыбу съел домашний питомец, обязательно покажите его ветеринару, иначе через 15-20 дней животное может погибнуть от бактерии Neorickettsia helminthoeca, носителем которой является червь нанофиет. Особенности лечения Терапия патологии назначается после получения результатов обследований и анализов. Специалист собирает подробный анамнез (стараясь выяснить, был ли больной в эндемических районах болезни, употреблял ли лососевых), обстоятельно изучает клиническую картину и лабораторные результаты (обнаружены ли в кале яйца паразита). Когда диагноз болезни будет подтвержден, прописывается терапевтическое вмешательство. Чего следует знать о профилактике болезни <img alt="Внимание" src="/sites/default/files/images/announcement/18/10/felkialtojel.jpg" style="width: 51px; height: 76px;" title="Внимание" /> Для предупреждения заражения нанофиетозом необходимо придерживаться правил обработки сырой рыбы: <ul> <li style="text-align: justify;">При 20-22 градусном морозе личинки паразита погибают только на десятый день. Хранение зараженной рыбы в холодильнике/морозилке, в надежде на то, что паразиты погибнут, не является надежным вариантом, так как свою жизнеспособность личинки сохраняют 1 месяц.</li> <li style="text-align: justify;">При варке рыбы, моллюсков, необходимо предварительно разделать ее на порционные куски, а длительность кипячения должна быть не менее 20-25 минут.</li> <li style="text-align: justify;">При приготовлении жареных рыбных блюд, рыбу также разделывают на куски, а сам процесс жарки - не менее 20 минут.</li> <li style="text-align: justify;">При засолке рыбы необходимо помнить о том, что гельминты в соленой среде гибнут только через 15 суток.</li> <li style="text-align: justify;">При замораживании рыбы, личинки глиста погибнут только через 2-3 дня.</li> <li style="text-align: justify;">Любителям суши, роллов и других экзотических блюд, в составе которых присутствует сырая рыба, следует быть предельно осторожными.</li> <li style="text-align: justify;">После контакта с сырой рыбой, после разделки и окончания ее приготовления - обязательно мыть руки с мылом.</li> <li style="text-align: justify;">Не следует покупать рыбу на стихийном рынке, а также не заказывать рыбные блюда в заведениях с сомнительной кухней. Отдавайте предпочтение супермаркетам, в которых продукты отвечают сертификатам качества и безопасности. </li> <li style="text-align: justify;">Если все же инфицирование произошло, не затягивать поход к инфекционисту, чем быстрее будет назначена терапия, тем меньший вред будет нанесен здоровью человека.</li> </ul> <hr /> Автор: Маркова Е.О., младший научный сотрудник лаборатории ихтиопатологии

Читать

1 октября 2018

Формирование низкотемпературного генного банка спермы рыб (состояние, развитие, перспективы)

<a href="/sites/default/files/images/announcement/18/10/chto-takoe-vnutrimatochnaya-inseminaciya-i-kak-provodyat-proceduru-13.jpg" title="Криобанк"><img alt="Криобанк" src="/sites/default/files/images/announcement/18/10/chto-takoe-vnutrimatochnaya-inseminaciya-i-kak-provodyat-proceduru-13.jpg" style="width: 417px; height: 197px;" title="Криобанк" /></a> Острейшей проблемой природы, в том числе и современного рыбоводства, является сохранение генетического разнообразия рыб. Эта проблема важна как для редких и исчезающих видов, так и для объектов аквакультуры. Достигнутые успехи в консервации спермы рыб, позволяют подойти к решению проблемы создания в рыбоводстве банков криоконсервированной спермы, как этто широко практикуется в животноводстве. Создание промышленных банков даст возможность поставить селекционно-племенную работу на качественно новый уровень. Сохраняемый в низкотемпературных банках генетический материал может быть использован в селекционных работах при выведении новых пород, для сохранения стандарта породы, получения гибридов, в том числе гибридов рыб, имеющих разные сроки созревания половых продуктов, для получения потомства при отсутствии или недостатке зрелых самцов, а также для обмена замороженной спермой между рыборазводными заводами. Наличие банков криоконсервированной спермы позволитселекционеру оперировать со значительно большим разнообразием генетического материала, обеспечивая тем самым более широкие возможности для синтетической селекции. Большие перспективы предоставляются и для работ по промышленной гибридизации, выявлению наиболее эффективных гетерозисных комбинаций и их быстрейшему внедрению. При этом обеспечение спермой для проведения селекционных работ и промышленной гибридизации может осуществляться централизованно из ограниченного числа низкотемпературных банков. Основной задачей иследований по низкотемпературной консервации половых продуктов является усовершенствование базовых и разработка новых эффективных методов криоконсервации спермы рыб с целью сохранения генетического разнообразия редких, исчезающих рыб и промышленного получения жизнестойкого потомства объектов промысла и аквакультуры, создание банка криоконсервированной спермы, осуществление сбора коллекции спермы генетически ценных видов рыб, а также разработка способов реализации сохраненной в криобанке генетической информации с использованием достижений молекулярной биологии и биологии развития. На протяжении ряда лет на рыбоводных базах ВНИИПРХ проводилось выращивание карпа и осетров, полученных с использованием замороженной спермы. Оказалось, что потомства карпа, полученные с использованием криоконсервированной спермы, имели некоторые преимущества (массонакопление, выживаемость, плодовитость) по сравнению с полученными традиционным методом. Анализ гематологических (концентрация гемоглобина, белка, количество эритроцитов) и биохимических показателей мышц указывает на хорошее физиологическое состояние рыб. Аналогичные результаты получены и при выращивании осетров от личинки до восьмигодовалого возраста на Конаковском живорыбном заводе. Проведение серии опытов по выращиванию молоди карпа по специально разработанной программе с использованием общего контроля на протяжении ряда лет показало преимущества потомков, полученных с помощью криоконсервированной спермы, по устойчивости к неблагоприятным условиям (соленость воды от 1 до 5%, температура воды 12-13ºС и 35-37ºС, острая и хроническая гипоксия, воздействие гексахлорциклогексана) по сравнению с контролем (Цветкова и др., 2001а). В результате многочисленных экспериментов установлено, что криоустойчивость сперматозоидов в значительной степени зависит от условий содержания производителей. Нарушения кислородного и температурного режимов, кормления, передержки и пересадки производителей карповых и осетровых рыб приводят к неспособности спермиев переносить процедуры замораживания-оттаивания даже при использовании эффективных криозащитных сред. Отмечено, что сперма севрюги, стерляди, веслоноса, сазана, обитающих в естественных водоемах, более криоустойчива, чем у этих же видов рыб, выращенных в искусственных условиях. В связи с этим вопрос сертификации и стандартизации образцов замороженной спермы, хранящихся в криобанках, может быть решен только после стандартизации и соблюдении всех рыбоводных норм выращивания и содержания производителей. Успех криоконсервации спермы определяется одновременным действием множества факторов: качеством нативной спермы, которое в значительной степени зависит от условий содержания производителей, качеством и количеством веществ, входящих в состав применяемой криозащитной среды, подбором видоспецифичных криопротекторов, режимом замораживания и оттаивания. В результате исследования влияния этих факторов были разработаны криопротективные среды и практические приемы консервации спермы лососевых, карповых и осетровых рыб, обеспечивающие сохранение жизнеспособности до 70-90% сперматозоидов, которые изложены в технологии криоконсервации и хранения в низкотемпературном банке спермы рыб. Были испытаны криозащитные среды со сложными и простыми солевыми добавками. Оплодотворяющая способность спермиев сохранялась как при замораживании в средах с большим количеством солей, так и с малым. Добавление в среды спермосана, глицина, простагландинов, фитогормона, АТФ, резорцина, формамида, вытяжки из слизи стрессоустойчивых рыб показало повышение криоустойчивости сперматозоидов при использовании АТФ, спермосана, фитогормона эпибрассинолида. Остальные добавки не дали значимого эффекта, так же, как и антиоксиданты токоферол и тонарол, использованные при криоконсервации спермы карпа. Нами совместно с сотрудниками Института биофизики клетки РАН исследована возможность крипротективного влияния антифризных гликопротеинов (АФГП), выделенных из сыворотки крови атлантической трески и камбалы, мучногохрущака, гаммаруса, обеспечивающих их выживание после зимних минусовых температур, на криоустойчивость спермы радужной форели, стальноголового лосося, карпа, осетров. При использовании АФГП в криозащитных средах значительно снижаются внутриклеточные повреждения, повышается выживаемость и оплодотворяющая способность спермиев после дефростации. В результате криоконсервирования в клетках могут возникнуть криоповреждения, причинами которых является образование в цитоплазме кристаллов льда, разрушающих внутриклеточные структуры. В процессе криоконсервации важно обнаружение летальных и нелетальных повреждений которые возникают в клетке как на этапах перехода в состояние глубокого холодового анабиоза, так и последующем возврате к условиям нормотермии, при которых часть клеток обладает способностью репарировать эти повреждения. Если среда оказывается токсичной для клеток или организмов, в них начинаются патологические процессы той или иной степени тяжести. При повреждении клеток, вызванных различными причинами, развивается неспецифический "окислительный стресс", включающий развитие цепных реакцийперекисного окисления липидов, образование супероксид-радикалов, повреждающих мембранные структуры клетки, а также генетический материал, а на более поздних стадиях изменение (как правило снижение) активности мембранно-связанных ферментов, а также ферментов антиокислительной защитной системы клетки. Для определения уровня криптоповреждений сперматозоидов рыб нами разработан способ, ориентированный на метаболический критерий - интенсивность свободно-радикальных реакций. Способ позволяет определить криоповреждения перед закладкой проб на долгосрочное хранение в криобанк и способствует сокращению объема коллекции за счет выбраковки образцов низкого качества и расходов на обслуживание биохранилищ. С использованием разработанных методов создана единственная в Российской Федерации генетическая коллекция спермы и тканей, представленная почти 2000 образцами спермы более 50 видов и популяций карповых, сиговых, осетровых и лососевых рыб. Общий объем спермы, хранящейся в криобанке, составляет около 20 л. Для формирования коллекции отбираются образцы спермы и тканей, относящиеся к различным категориям селекционных достижений, в том числе внесенных в Государственные реестры, экспериментальных линий, а также редких и исчезающих видов и популяций, внесенных в Красные книги России или региона, в списки видов, нуждающихся в особом режиме охраны. Криобанк работает в экспериментальном режиме. Замороженная сперма используется в основном для специальных селекционных, биохимических и генетических исследований. проверка спермиев некоторых видов рыб, заложенных на хранение в криобанк в разные годы, показала в целом высокую сохранность клеток в исследованных образцах. Было установлено, что длительность хранения не снижает оплодотворяющую способность криоконсервированных сперматозоидов. ВНИИПРХ приступил к выполнению принципиально нового направления исследований - разработке способов реализации сохраненной в спермиях генетической информации с использованием методов молекулярной биологии и биологии развития. Начато изучение возможного сочетания методов диспермного андрогенеза и криоконсервации спермы для восстановления редких и исчезающих видов рыб. Комбинированное использование этих методов является альтернативным замораживанию эмбрионов подходом к сохранению биоразнообразия рыб. данный подход позволяет получать потомство с исходным уровнем генетической изменчивости даже, в том случае, если восстанавливаемый вид полностью вымер, а сохранилась только его криоконсервированная сперма. В предварительно проведенных опытах от некоторых видов осетровых рыб были получены жизнестойкие андрогенетические потомства. Сохранение генофонда различных видов рыб и их генетического разнообразия в настоящее время возможно с использованием в качестве генетического материала банков спермы и яйцеклеток близкородственных видов. <hr /> <blockquote> ЗАКЛЮЧЕНИЕ </blockquote> <blockquote> Таким образом, разработанные криотехнологии позволят создать страховые запасы спермы исчезающих и генетически ценных видов рыб. Важным и существенным способом реализации результатов является минимизация затрат на сохранение генофонда редких и исчезающих видов рыб. Сохраняемый генетический материал может широко использоваться в селекционной работе: в породообразовании - криоконсервированная сперма генетически ценных самцов, которые погибли несколько лет назад; для получения жизнестойкого потомства; для гибридизации рыб при отсутствии самцов; в разработках по оптимизации технологии криоконсервации; для восстановления генотипов исчезающих видов рыб с использованием метода индуцированного андрогенеза. </blockquote> <hr /> <a class="colorbox colorbox-insert" href="/sites/default/files/images/announcement/18/10/dsc_0360.jpg" title="Работа в криобанке"><img alt="Работа в криобанке" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/18/10/dsc_0360.jpg" style="width: 238px; height: 176px;" title="Работа в криобанке" /></a> <a class="colorbox colorbox-insert" href="/sites/default/files/images/announcement/18/10/dsc_0104_2.jpg" title="Хранящиеся образцы"><img alt="Хранящиеся образцы" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/18/10/dsc_0104_2.jpg" style="width: 238px; height: 176px;" title="Хранящиеся образцы" /></a> <a class="colorbox colorbox-insert" href="/sites/default/files/images/announcement/18/10/dsc_0097.jpg" title="Работа в криобанке"><img alt="Работа в криобанке" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/18/10/dsc_0097.jpg" style="width: 238px; height: 176px;" title="Работа в криобанке" /></a> <a class="colorbox colorbox-insert" href="/sites/default/files/images/announcement/18/10/dsc_0108_2.jpg" title="Работа в криобанке"><img alt="Работа в криобанке" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/18/10/dsc_0108_2.jpg" style="width: 189px; height: 245px;" title="Работа в криобанке" /></a> <a class="colorbox colorbox-insert" href="/sites/default/files/images/announcement/18/10/dsc_0135.jpg" title="Работа в криобанке"><img alt="Работа в криобанке" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/18/10/dsc_0135.jpg" style="width: 189px; height: 245px;" title="Работа в криобанке" /></a> <hr /> Автор: Л.И. Цветкова, Н.Д. Пронина, О.Б. Докина, А.В. Рекубратский, В.А. Парнышков Источник: Вопросы рыболовства, 2012, том 13, №3 (51), с. 538-545 Фото: информационно-аналитический отдел

Читать

19 сентября 2018

Сравнительная рыбоводно-биологическая характеристика молоди сибирского осетра Acipenser baerii Brandt различных поколений доместикации

<a class="colorbox colorbox-insert" href="/sites/default/files/images/announcement/18/09/acipenser_baeri_hf5792.jpg" title="Осётр"><img alt="Осётр" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/18/09/acipenser_baeri_hf5792.jpg" style="width: 396px; height: 227px;" title="Осётр" /></a> Доместикацией, то есть одомашниванием диких растений и животных, в том числе рыбы, человечество занимается со времени своего становления. Всё это время велась селекция (отбор) на продуктивность, выживаемость, выносливость в зависимости от потребностей и условий жизнедеятельности человека. При этом, несомненно, происходило изменение фенотипа объектов одомашнивания. В наших исследованиях модельным объектом явился сибирский осетр ленской популяции, изъятый из естественной среды (бассейн реки Лены) и помещённый в нехарактерные (экстремальные) для данного вида условия, с коренным изменением абиотических и биотических факторов среды (температура, питание, плотность посадки и т.д.). В результате многолетних (более 30 лет) работ мы получили материал, находящийся в данных условиях в течение пяти поколений доместикации. Это дало возможность провести исследования по оценке степени влияния процесса одомашнивания на морфо-физиологические, биохимические показатели у рыб и целесообразности использования молоди, полученной от производителей, длительное время находящихся в искусственных условиях, для реакклиматизации в естественные водоемы. Половые продукты получали от производителей I и V поколений доместикации, выращенных в условиях ФГБНУ ВНИИПРХ "Конаковский завод по осетроводству" (КЗпО). При этом самки и самцы, используемые в скрещивании, соответствовали одному поколению доместикации. Для проведения работ на основании анализа состояния половых продуктов (зрелости ооцитов) были отобраны наиболее подготовленные к нересту самки - одна самка первого поколения (генерация 1985 г.) и три самки (генерация 2003г.) пятого поколения доместикации. Преднерестовое выдерживание производителей до и после гормональной стимуляции проводили в бассейнах специализированного участка предприятия. Температуру воды поддерживали на уровне 14ºС. В качестве гормональных препаратов использовали гипофизы осетровых рыб. Контроль за созреванием самок проводили в соответствии с расчётным временем и характерными признаками созревания (присутствие на дне бассейна отдельных икринок, повышенная подвижность производителей). Получение половых продуктов осуществляли методом прижизненного взятия икры. Оплодотворение икры осуществляли полусухим способом, обесклеивание - танином. Инкубацию проводили в аппаратах "Осётр". Средняя масса икринки от многократно нерестующей самки первого поколения доместикации составила 21,2 мг, от самок пятого - 16,4 мг. Вылупление эмбрионов произошло на восьмые сутки инкубации. Роение личинок, полученных от самки первого поколения доместикации, началось на сутки раньше, чем у более молодых самок. Температура воды в этот период составила 17ºС. Перевод личинок на смешанное питание продолжался в течение пяти дней и закончился, когда все предлечинки выбросили меланиновые пробки. Для проведения экспериментальных работ от двух самок разных поколений доместикации были отобраны по 16 тысяч предличинок. Выдерживание проводилось при температуре воды 15,5 - 16,5 ºС. В результате аварийной ситуации произошло отключение водоподачи, что вызвало понижение температуры воды до 10ºС , снижение содержания кислорода, а также ухудшение токсилогической обстановки. Это вызвало задержку перехода на смешанное питание и отразилось на выживаемости личинок, которая составила у I и V поколений, соответственно, 68,8% и 56,3%. При достижении массы 3 г. выживаемость молоди от самки первого поколения доместификации составила 21% , пятого - 23,5%. Почти на всех начальных этапах выращивания рост молоди, полученной от старшей самки , превышал рост молоди от впервые нерестующей, что связано, по-видимому, с исходной массой икры. Однако, несмотря на принятые профилактические и лечебные меры, заболевание миксобактериоз, наблюдавшееся с 14 апреля по 24 мая, наиболее губительно отразилось на молоди от самки первого поколения доместикации. По-видимому, молодь, полученная от самок пятого поколения, унаследовала определенный иммунитет к этому заболеванию, сформировавшийся в процессе доместикации, что и отразилось на её росте. Выращивание молоди в условиях водоёма. Для изучения адаптационных возможностей молоди осетровых рыб, полученной от производителей разных поколений доместикации и выращенной в бассейновом индустриальном хозяйстве, к условиям естесственного водоёма с КЗпО было завезено 175 особей сибирского осетра, из которых 39 штук (ср. масса 41 г) от самок первого поколения и 136 штук (ср. масса 50 г) - пятого поколения доместикации. Транспортировку молоди осуществляли в пакетах с кислородом по 30 шт/пакет при температуре воды 16ºС. Эксперимент проводили в выростном пруду площадью 0,25 га при плотности посадки 700 шт/га. При выпуске помеченной молоди в пруд температура воды составила 17,5ºС. Опыт продолжался в течение 50 суток. С целью моделирования условий, приближенных к естественному водоёму, использовали не подготовленный для рыбоводных целей пруд, большая часть которого была покрыта высшей водной растительностью и вегетирующими луговыми и болотными травами. Не заросшими оказались отдельные участки дна в центральной части пруда. Осетры располагались в основном на участках, свободных от растительности. В пруду постоянно поддерживали водообмен, расход воды составлял от 10 до 50 л/мин., температура воды колебалась от 15 до 22,4ºС. Вегетирующие водные растения формировали напряженный кислородный режим в пруду, что можно оценить по показателям его концентрации в районе водослива (у донного водоспуска). Содержание кислорода в поступающей воде составляло 6,3 мг/л, у водоподачи среди водной растительности оно уменьшалось в среднем на 25% и равнялось 4,8 мг/л, а у водослива снижалось на 54% до 2,9 мг/л. Кислородный режим на таком уровне поддерживался благодаря водообмену. Характеристика кормовой базы. В водоёме сформировалась хорошая естественная кормовая база, представленная зоопланктоном и бентосом. Для её оценки каждую декаду перед контрольным обловом брали пробы зоопланктона. Бентос из-за сильного развития луговой и другой растительности взять не удалось. В видовой состав зоопланктона в в основном входили ветвистоусые рачки с преобладанием Daphnia longispina и Bosmina longirostris, реже встречались Polyphemus, Ceriodaphnia, Chidorus. Из веслоногих в пробах присутствовали циклопы Cyclopidae и их науплии, из коловраток наиболее многочисленна была Asplanchna. Максимальное развитие зоопланктона наблюдалось в конце июня и составило 34 г/м3 . Сравнительная физиолого-биохимическая оценка. В комплекс сравнительной оценки физиолого-биохимических показателей молоди различных поколений доместикации включили общий химический состав мышц осетровых рыб. Условия пруда позволили молоди повысить в мышцах уровень белка, чего не удавалось достичь при её выращивании в бассейновых условиях, где при сохранении высоких запасов жира отмечалось его низкое содержание в мышцах. Установлено, что при идентичных условиях выращивания молодь различных поколений доместикации сохранила одинаковую способность к потреблению искусственной и естественной пищи, что отразилось на динамике физиолого-биологических показателей этих покалений молоди. Гаметогенез молоди. С целью изучения влияния длительного процесса доместикации на гаметогенез у осетровых рыб и возможности использования молоди, полученной от доместицированных производителей, для реакклиматизации её в естественные водоёмы, а также создания самовоспроизводящихся маточных стад у молоди в возрасте 6 месяцев проводили гистологический анализ гонад. Для этого гонады с участком брюшной стенки фиксировали, так как выделить их в этом возрасте без повреждения сложно (коэффециент зрелости составляет менее 0,09%). После фиксации осуществляли дальнейшую обработку и изготовление препаратов в соответствии с общепринятыми методиками по гистологической технике. Гонады сеголетков осетра в этом возрасте визуально представлены тонкими тяжами (толщиной около 1 мм), тянущимися вдоль боковых стенок. По гистологической картине у исследуемых рыб наблюдалась I-ая стадия зрелости и период анатомической дифференцировки. Следует отметить, что в этом возрасте происходит формирование гонады в сторону самца или самки и ещё не у всех исследованных особей на препаратах чётко выражены половые отличия. Половые клетки представлены гониями, размеры которых находяться в пределах 12-18 мкм. У самок выражена щель-борозда (рисунок 2), отмечается развитие соединительной ткани, формирующей строму гонады. На гонадах также заметно накопление жировой ткани, что особенно выражено у будущих самцов. Семенник имеет овальную форму и выглядит более компактным (рисунок 3). <a class="colorbox colorbox-insert" href="/sites/default/files/images/announcement/18/09/ris_2_k_state_melchenkova_e.a._i_dr._v_ryb_hoz.jpg" title="Поперечный разрез яичников сибирского осетра в возрасте 6-ти месяцев"><img alt="Поперечный разрез яичников сибирского осетра в возрасте 6-ти месяцев" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/18/09/ris_2_k_state_melchenkova_e.a._i_dr._v_ryb_hoz.jpg" style="width: 366px; height: 292px;" title="Поперечный разрез яичников сибирского осетра в возрасте 6-ти месяцев" /></a> Рис.2 Поперечный разрез яичников сибирского осетра в возрасте 6-ти месяцев (ув. 20х0,9х7) <a class="colorbox colorbox-insert" href="/sites/default/files/images/announcement/18/09/ris_3_k_state_melchenkova_e.a._i_dr._v_ryb_hoz.jpg" title="Поперечный разрез семенников сеголетков сибирского осетра в возрасте 6-ти месяцев"><img alt="Поперечный разрез семенников сеголетков сибирского осетра в возрасте 6-ти месяцев" class="colorbox colorbox-insert" src="/sites/default/files/images/announcement/18/09/ris_3_k_state_melchenkova_e.a._i_dr._v_ryb_hoz.jpg" style="width: 366px; height: 292px;" title="Поперечный разрез семенников сеголетков сибирского осетра в возрасте 6-ти месяцев" /></a> Рис.3 Поперечный разрез семенников сеголетков сибирского осетра в возрасте 6-ти месяцев 1-половые клетки (гонии), 2- жировая ткань (ув. 20х0,9х7) У десяти особей, полученных от производителей пятого поколения доместикации, при средней массе 91,6 мг наблюдалась анатомическая диффреренцировка гонад и I-ая стадия зрелости ооцитов. У четырёх сеголетков средней массой 66,9 г, полученных от производителей первого поколения доместикации, наблюдается I-ая стадия зрелости ооцитов, дифференцировка пола выражена только у двух особей. В литературных источниках показано, что у сибирского осетра ленской популяции при содержании в лабораторных условиях дифференцировка гонад в женском направлении наступает в возрасте 1-1,5 лет (анатомическая) и 1,5-2 лет (цитологическая) при массе особей, соответственно, 13,5-79 г и 69-90 г и длине 15,0-28,5 см и 27,0-30,5 см. При выращивании в индустриальных условиях (КЗпО) дифференцировка гонад происходит в течение первого года жизни. Наши исследования показали, что у сеголетков в условиях экспериментального выращивания молоди по схеме "тепловодное хозяйство - пруды" в возрасте 6-ти месяцев анатомическая дифференцировка гонад уже началась, показателем её служит появление щели-борозды у будущих самок, что различимо на гистологических препаратах. Отсутствие борозды у других особей, особенно с наименьшей массой, не свидетельствует, что эти самцы, так как процесс дифференцировки гонад ещё не завершён. В целом можно отметить несколько ускоренное развитие гонад относительно лабораторных уловий (указанных в литературных источниках). Гаметогенез у молоди первого и пятого поколений доместикации протекает без отклонений и аномалий. Оценка гетерогенности по полиморфным локусам. При электрофоретическом анализе Конаковского стада сибирского осетра ленской популяции в течение нескольких лет полиморфизм был обнаружен в 10 из 23 аллозимных локусов. Прижизненно в сыворотке и эритроцитах крови удалось исследовать полиморфизм ферментов лактатдегидрогеназы (номер КФ-1.1.1.27), локус LDH-4*; малатдегидрогеназы (1.1.1.37) - локус MDH-1,2*; 6-фосфоглюконатдегидрогеназы (1.1.1.44), локус PGDH-1,2*; фосфоглюкомутазы (5.4.2.2.), локусы PGM-1,2* и PGM-3,4*. При интерпретации электрофоретических картин принимали во внимание особенности, связанные с тетраплоидным происхождением осетровых, в частности сибирского осетра. Электрофоретический анализ проб крови осуществляли согласно методическим указаниям. Подтверждена возможность получения удовлетворительных результатов при использовании метода диск-электрофореза в вертикальных пластинах полиакриламидного геля по Девису и окрашивания полученных электрофореграмм для получения спектров малатдегидрогеназы, фосфоглюкомутазы и 6-фосфоглюконатдегидрогеназы. <blockquote> Заключение. Проведённый на разных этапах онтогенеза сравнительный морфо-биологический анализ молоди, полученной от производителей сибирского осетра первого и пятого поколений доместикации, показал отсутствие достоверных различий по исследуемым морфометрическим признакам. При сравнительном анализе гаметогенеза молоди осетровых рыб можно отметить несколько ускоренное развитие гонад, так как основную часть жизни (100 суток) молодь провела в условиях индустриального тепловодного хозяйства. Показано, что гаметогенез у молоди первого и пятого поколений доместикации протекает без отклонений и аномалий. Молодь всех поколений хорошо адаптируется к условиям естественного водоёма, практически полностью в течение суток переходит на питание естественным кормом, обеспечивая тем самым хорошую выживаемость. </blockquote> <blockquote> Физиолого-биохимический анализ молоди, выращенной в различных условиях, позволил подтвердить вывод о том, что при идентичных условиях выращивания молодь различных поколений доместикации сохранила одинаковую способность к потреблению искусственной и естественной пищи, что отразилось на динамике её физиолого-биохимических показателей. </blockquote> <blockquote> В целом проведённые исследования позволили сделать вывод, что длительное нахождениеосетровых в течение ряда поколений (более 30 лет) в условиях индустриального хозяйства на искусственных кормах не оказало негативного влияния на рыб. Производители продуцируют икру, гетерогенное потомство хорошего рыбоводного качества, что позволяет рекомендовать его для использования в рыбоводных хозяйствах различного типа с целью формирования маточных стад, получения товарной продукции, а также реакклиматизации в естественные водоемы. </blockquote> <hr /> Автор: Е.А. Мельченков, Т.А. Канидьева, Н.В. Дёмкина, Е.А. Данилова, А.П. Воробьёв

Читать

6 августа 2018

"Скафандр" для гаммаруса

В далёком 2012-м году, мной был поставлен опыт с раками бокоплавами рода Gammarus (рис.1). Так как опыт прошёл не совсем с показательным результатом - публиковать его не стали, но несколько интересных моментов для себя в нём я почерпнула и хочу поделиться ими с Вами. <img alt="Граммарус" src="/sites/default/files/images/announcement/18/08/risunok_1.png" style="width: 411px; height: 308px;" title="Граммарус" /> Рисунок 1 - Гаммарус Целью опыта было выяснить, как влияет осевшая взвесь на гаммарусов. В задачи опыта входило завалить гаммарусов донными отложениями и посмотреть их реакцию. Гаммарусы были приобретены на "Птичьем рынке" и содержались в течении одного месяца в аквариуме с внешним фильтром. Подкармливали рачков прелыми листьями и ветвистоусыми рачками - дафниями. Для опыта были использованы 4 аквариума (3 опытных и 1 контрольный). В каждом аквариуме дно было устлано опавшими листьями и сосновыми веточками, для создания более привычной для гаммаруса "атмосферы" (рис. 2). <img alt="Перед началом опыта" src="/sites/default/files/images/announcement/18/08/risunok_2.jpg" style="width: 411px; height: 308px;" title="Перед началом опыта" /> Рисунок 2 - Перед началом опыта В аквариумы было внесено одинаковое количество рачков и одинаковые порции донных отложений супесчанного состава (грунт из пруда). При попадании большого количества взвеси в воду в самом начале эксперимента гаммарусы моментально "почуяли неладное" и заметались по аквариумам в поисках убежищ. Вот тут-то и началось самое интересное - одни подползли под линейки (рис. 3), приставленные внутри аквариума для измерения толщины осадка, выпадающего на дно на протяжении опыта, другие - соорудили в углах аквариума из поверхностной плёнки воды, что-то типа "скафандра" (рис. 4,8). Таким образом, гаммарусы пытались пережить "пылевую бурю", периодически выходя на охоту за дафниями (рис.5). Хочеться отметить,что из-за высокой мутности воды дафнии потреблялись граммарусами значительно медленнее, видимо из-за сложности распознания жертвы. <img alt="Убежище под линейкой" src="/sites/default/files/images/announcement/18/08/risunok_3.jpg" style="height: 308px; width: 411px;" title="Убежище под линейкой" /> <img alt=""Скафандр" в углу аквариума" src="/sites/default/files/images/announcement/18/08/risunok_4.jpg" style="width: 411px; height: 308px;" title=""Скафандр" в углу аквариума" /> Рисунок 3 - Убежище под линейкой Рисунок 4 - "Скафандр" в углу аквариума <img alt="Гаммарус "обедает" дафнией" src="/sites/default/files/images/announcement/18/08/risunok_5.png" style="width: 411px; height: 308px;" title="Гаммарус "обедает" дафнией" /> Рисунок 5 - Гаммарус "обедает" дафнией" (снимок в чашке Петри) <img alt="Гаммарус "обедает" дафнией во время опыта" src="/sites/default/files/images/announcement/18/08/risunok_6.jpg" style="width: 411px; height: 308px;" title="Гаммарус "обедает" дафнией во время опыта" /> <img alt="Перед завершением опыта" src="/sites/default/files/images/announcement/18/08/risunok_7.jpg" style="width: 411px; height: 308px;" title="Перед завершением опыта" /> Рисунок 6 - Гаммарус "обедает" дафнией во время опыта Рисунок 7 - Перед завершением опыта Опыт закончился на том, что произошла гибель двух особей при линьке в опытных аквариумах и гибель одной особи в контрольном аквариуме по непонятным причинам (рис. 7), остальные раки начали спариваться (рис. 8). <img alt="Спаривающаяся пара граммарусов" src="/sites/default/files/images/announcement/18/08/risunok_8.jpg" style="width: 411px; height: 308px;" title="Спаривающаяся пара граммарусов" /> <img alt=""Скафандр" под линейкой" src="/sites/default/files/images/announcement/18/08/risunok_9.jpg" style="width: 411px; height: 308px;" title=""Скафандр" под линейкой" /> Рисунок 8 - Спаривающаяся пара гаммарусов Рисунок 9 - "Скафандр" под линейкой - вместе веселее Из этой истории я смогла почерпнуть для себя следующее - "никогда не сдавайся - ищи свой скафандр"! <hr /> Автор: С.С. Ускова, старший научный сотрудник лаборатории гидробиологии Фото: С.С. Ускова, старший научный сотрудник лаборатории гидробиологии

Читать

2 июля 2018

Нитраты

<a class="colorbox colorbox-insert-image" href="http://testslab.ru/images/stati/4.1.jpg" style="text-decoration-line: underline; font-size: 13.008px; text-align: center;" title="Нитраты в питьевой воде"><img alt="Нитраты в питьевой воде" class="colorbox colorbox-insert-image" longdesc="http://www.vniiprh.ru/sites/default/files/images/announcement/18/07/4.11.jpg" src="/sites/default/files/images/announcement/18/07/4.11.jpg" style="height: 238px; width: 456px;" title="Нитраты в питьевой воде" /></a> Применение в сельском хозяйстве азотсодержащих удобрений, как правило повышает плодовитость культур, но тем не менее ухудшает качество воды. С сельскохозяйственных угодий в больших количествах химические вещества, прежде всего это нитраты, попадают в открытые и подземные воды совместно со стоками, атмосферными осадками, хозяйственно-бытовыми, а также промышленными стоками, что является неблагоприятным для здоровья населения. Нитрат (лат. nitras; устар. селитры) - соль азотной кислоты, содержит однозарядный анион NO3. Устаревшее название - селитры, в настоящее время используется преимущественно в минерологии, как название для минералов, а также для удобрений в сельском хозяйстве. Нитраты обладают токсичностью для организма человека. Наибольшее содержание нитратов наблюдается в водных объектах, скважинах, колодцах и т.д. Накопленные в организме человека нитраты вступают в реакцию с гемоглобином, тем самым образуя метгемоглобин - данное вещество не транспортирует кислород по органам. это приводит к кислородному голоданию тканей. В следствии ухудшается самочувствие, появляется слабость и вялость. В организме, при содержании от 20 до 50% метгемоглобина - появляется отдышка, тахикардия в следствии может возникнуть потеря сознания, при содержании более 50% - приводит к летальному исходу. Нитраты воздействуют на организм человека, губительно влияют на нервную, и сердечно-сосудистую систему, наносят вред желудочно-кишечному тракту и другим органам. Повышенное содержание нитратов в питьевой воде предтавляет опастность для маленьких детей, так как у них еще не сформирована восстановительно-ферментная система, поэтому необходим контроль за содержанием нитратов в воде и продуктах питания. Содержание нитратов в воде можно определить при проведении химического анализа в лабораторных условиях. при содержании нитратов в оде более 45 мг/дм3 (нормативы по СанПин 2.1.4.1074-01) необходимо принять незамедлительные меры по эффективной системе очистки воды. <a class="colorbox colorbox-insert-image" href="/sites/default/files/images/announcement/18/07/2012_07_18_voda_01.jpg" title="Питьевая вода"><img alt="питьевая вода" class="colorbox colorbox-insert-image" src="/sites/default/files/images/announcement/18/07/2012_07_18_voda_01.jpg" style="width: 238px; height: 169px;" title="Питьевая вода" /> </a> <hr /> Автор: Здрок А.В., заведующий лабораторией экологической токсикологии

Читать

Вы представитель СМИ?

Для получения комментария учёных, организации интервью или съёмок на объектах института напишите в пресс-службу — ответим в течение рабочего дня.

Запрос в пресс-центр Правила работы со СМИ