Вы здесь

Пресс-центр Информаторий · ВНИИПРХ

Анонсы и информаторий

Предстоящие мероприятия, конференции, семинары и события Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО». Следите за афишей института.

Всего записей: 179

Все годы 179 2026 3 2025 4 2024 8 2023 11 2022 31 2021 32 2020 21 2019 28 2018 22 2017 17

18 декабря 2021

Содержание свинца в воде

Свинец (Pb) – это химический элемент, относится к IV группе периодической системе элементов Д. И. Менделеева, его атомный номер 82. Является ковким, сравнительно легкоплавким, не способным проводить электричество металлом. В воде свинец относится к классу токсичных тяжелых металлов. До конца прошлого века свинец использовался в составе при изготовлении труб, а также сантехники. Распространенной причиной наличия свинца в воде являются трубы, по которым она подает потребителям. В основном свинец в чистом виде встречается крайне редко. Зачастую он содержится в рудах и минералах, также способен вымывается и выветривается из горных пород. Загрязнение свинцом водных объектов обусловлено в основном антропогенной деятельностью. Постепенное накапливание свинца в организме человека приводит к серьезным заболеваниям. В случае отравления, проявляются следующие симптомы: слабость, головные боли, бессонница, повышенная раздражительность, головокружение, тошнота. Свинец может повредить нервную систему, даже низкое его содержание, приводит к повышенному давлению, анемии и повреждению внутренних органов. Химический анализ воды в лабораторных условиях способен выявить содержание концентрации свинца. На сегодняшний день современные технологии позволяют избавиться от загрязняющего вещества путем водоочистки с использованием систем фильтрации. <img width="500" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/7e2/28.11.2021.jpg" height="316"> <hr> Источник: Здрок А.В., начальник Отдела экологической токсикологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

28 ноября 2021

Процесс развития воспроизводительной системы у самцов осетровых рыб в индустриальных условиях на примере стерляди волжской популяции

В.А. Илясова1, Е.А. Мельченков1, В.В. Калмыкова1, Е.А. Данилова2, Арчибасов1, А.П. Воробьев1 1 Филиал по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ»), Московская область, пос. Рыбное, Россия 2 Дмитровский рыбохозяйственный технологический институт (филиал) ФГБОУ ВО «АГТУ», Московская область, пос. Рыбное, Россия E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a> Аннотация. В статье приведены особенности процесса развития воспроизводительной системы у самцов осетровых рыб на примере стерляди волжской популяции (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) в условиях индустриального предприятия отдела «Конаковский» филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ»). В результате выполненных исследований установлено, что I-II стадии зрелости гонад заканчиваются в возрасте 2 года при общей сумме тепла не менее 11 тыс. градусо-дней. Цитологическая дифференцировка пола происходит в сформированной железе и начинается в трехлетнем возрасте при сумме тепла более 15 тыс. градусо-дней. Критерием начала цитологической дифференцировки служат волны сперматогенеза, которые характеризуются интенсивным развитием III-VI стадий зрелости семенников. Для осетровых рыб характерен единовременный тип икрометания, поэтому волна сперматогенеза носит сезонный характер, что указывает на ограниченное во времени их участие в нерестовом сезоне в рыбоводных хозяйствах с естественной температурой воды. Знания особенностей процесса развития воспроизводительной системы у самцов осетровых рыб, рассмотренных на примере стерляди волжской популяции в индустриальных условиях, позволяют совершенствовать технологические приемы управления процессами сперматогенеза в условиях индустриальных хозяйств, обеспечивая получение половых продуктов высокого рыбоводного качества в нужные для предприятия сроки. Ориентируясь по набранной производителями (самцами) стерляди общей сумме тепла можно синхронизировать рыбоводные процессы (циклы) при получении половых продуктов от самок стерляди и обеспечивать в условиях хозяйств с регулируемой температурой воды (в течение календарного года) неоднократное получение от одних и тех же самцов половых продуктов. Ключевые слова: осетровые рыбы; стерлядь; сперматогенез; стадия зрелости; индустриальные условия. Development of industrial scale reproduction in male sturgeons using volga sterlet population as an example V.A. Ilyasova1, E.A. Melchenkov1, V.V. Kalmykova1, E.A. Danilova2, A.A. Archibasov1, A.P. Vorob'yov1 1Branch for Freshwater Fishery of Federal State Budgetary Scientific Institution “Russian Federation Research Institute of Fishery and Oceanography”, Moscow Region, Rybnoye, Russia 2Dmitrov Institute of Fishery Technology (branch) of the FSBEI of Higher Education Astrakhan State Technical University, Moscow Region, Rybnoye, Russia E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a> <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru"></a> <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru"></a> Abstract. The article describes special aspects of reproduction system development in male sturgeons using Volga sterlet population as an example (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) within industrial enterprise of the Konakovskiy coarse fishery branch of the FSBSI Russian Federation Research Institute Of Fishery and Oceanography (VNIRO). The study results showed that gonad maturation stage I–II is completed at the age of 2 years if the total thermal constant is at least 11 thousand degree-days. Cytological sex differentiation occurs in the formed gland and begins at the age of three years if the thermal constant is more than 15 thousand degree-days. The onset of cytological differentiation can be determined by spermatogenesis waves characterised by intensive development of the male gonad III-VI maturity stages. Semelparity is typical for sturgeons, thus, the wave of spermatogenesis is seasonal, which indicates their limited participation in the spawning season at fish farms with natural water temperature. The knowledge of reproductive system development aspects in male sturgeons as illustrated by Volga sterlet population in the setting of industrial enterprise allows improving the practice of spermatogenesis process management at industrial farms ensuring the production of reproductive products of high fish-breeding quality at the time required for the enterprise. Considering the thermal constants made up by sterlet (males) spawners, it is possible to synchronise fish breeding processes (cycles) when receiving reproductive products from female sterlet and ensure repeated production of reproductive products from the same males in the settings of farms with controlled water temperature (throughout a calendar year). Keywords: Sturgeon; sterlet; spermatogenesis; stage of maturity; industrial conditions. ВВЕДЕНИЕ Расширение масштабов формирования маточных стад осетровых рыб, в том числе одного из самых массовых видов, культивируемых в индустриальной аквакультуре России – стерляди Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758, требует непрерывного совершенствования технологий воспроизводства и разработки технологических приемов управления процессами сперматогенеза в условиях тепловодных хозяйств. С этой целью необходима полная информация о протекании процессов сперматогенеза у рыб и их зависимость от абиотических и биотических факторов среды [3-5, 14-17]. На ранних, I-II стадиях зрелости семенники анатомически сформированы, из половых клеток присутствуют первичные и в состоянии митотического размножения сперматогонии, а дифференцировка пола у рыб происходит в сформированной железе при переходе митотического цикла развития к мейотическому, что характерно для начала III стадии зрелости семенников [9, 11]. На скорость развития половых клеток в гаметогенезе у рыб существенное влияние оказывает температурный фактор и замедление темпа развития половых клеток, как правило, приходится, на II стадию зрелости семенника и на начало периода дифференцировки пола, которая характеризуется как попытка к сперматогенезу [6, 12, 15, 16]. Развитие воспроизводительной системы у самцов в разных экологических условиях - естественных, комбинированных и индустриальных влияет на репродуктивные качества осетровых рыб, показывая изменчивость в продолжительности хода созревания половых клеток в каждом отдельном случае [7, 10, 19]. Анализ особенностей процесса сперматогенеза и ритмов размножения у осетровых рыб покажет пути управления в искусственных условиях хозяйств с регулируемой температурой воды в необходимые для рыбоводных предприятий сроки получения половых продуктов. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ Рыба выращивалась в индустриальном предприятии отдела «Конаковский» Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ») со среднегодовой суммой тепла более 5600 градусо-дней. Для исследований брались различные группы рыб в возрасте от сеголетков до четырехгодовиков. Для анализа развития половых клеток у самцов стерляди волжской популяции использовались гистологические методы как высокоинформативные, чувствительные и фотодокументальные [8, 13]. Пробы гонад, не менее 5 шт. каждого возраста, фиксировали в 70%-ном спирте. После обезвоживания готовили парафиновые срезы толщиной 7-8 мкм на микротоме РОТМИК-2. Освобожденные от парафина срезы окрашивали железным гематоксилином по Гейденгайну с последующим обезвоживанием и заключением в бальзам [13]. Изучение и анализ 429-ти гистологических срезов фрагментов гонад осуществляли с использованием микроскопа Микромед-2 и цифровой камеры для микроскопа серии ToupCam. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ Семенники у осетровых рыб по строению относятся к циприноидному типу, где основным структурным элементом является система семенных канальцев, называемых цистами. Семенные канальцы берут свое начало в верхней части гонады. Мелкие, извитые канальцы постепенно объединяются в древовидную сеть, которая направляется к общему выводному протоку, расположенному в медиальной (серединной) части семенника [2]. Сперматогенез распадается на 4 стадии развития половых клеток: размножение сперматогоний, роста, созревания и формирования сперматозоидов (спермиогенез) [1, 14, 17]. Процессы развития половых клеток в семенниках и продолжительность стадий зрелости проанализированы от молоди до половозрелого состояния в возрасте 3 года при общей сумме тепла 16800 градусо-дней. У сеголетков стерляди гонады уже сформированы и выглядят в виде двух нитевидных тяжей (сумма тепла 4500 градусо-дней). На этом этапе развития появляются признаки половой дифференцировки морфологического характера (рис. 1). Изначально, в строме гонады присутствуют единичные первичные сперматогонии – светлые клетки размером от 8,5 до 10 мкм с широким слоем цитоплазмы и отчетливыми, крупными ядрами (рис. 2). <img width="700" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/af8/1.JPG" height="427"> В годовалом возрасте гонада у самцов подвешена на одном мезорхии, что свидетельствует о прохождении анатомической дифференцировки пола (рис. 3). В семенниках идет формирование канальцев и размножение сперматогоний, окруженных тонким слоем соединительной ткани. Каждый первичный сперматогоний подвергается серии митотических делений, что является важным источником пополнения запаса половых клеток, вторичных сперматогоний размером от 6,8 до 7,5 мкм, которые формируются по краям цист с небольшим количеством цитоплазмы и с крупными базофильными ядрами (рис. 4). <img width="700" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/810/2.JPG" height="481"> Таким образом, в цистах у годовалых самцов при сумме тепла 5700 градусо-дней происходят многократные митотические деления половых клеток – сперматогоний, которое соответствует I-II стадиям зрелости гонад. Заканчивается этот процесс в двухгодовалом возрасте (сумма тепла 11300 градусо-дней). У некоторых особей в семенниках II стадии зрелости наблюдается так называемая попытка к волне сперматогенеза (рис. 5), рост вторичных сперматогоний и превращение их в сперматоциты I порядка, которые при отсутствии естественной гормональной поддержки в дальнейшем подвергаются резорбции [15, 16]. <img width="450" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/eaa/3.JPG" height="480"> На III-IV стадиях зрелости в возрасте трех лет при общей сумме тепла 15200 градусо-дней семенные канальцы заполнены цистами с половыми клетками различных этапов сперматогенеза. Цитологическая дифференцировка пола происходит в сформированной железе. Показателем начала цитологической дифференцировки служат волны сперматогенеза. В цистах вторичные сперматогонии вступают в период роста и превращаются в сперматоциты I порядка. Сам период созревания начинается в хорошо развитых половых железах в трехгодовалом возрасте. Для гонад в этот период созревания характерны III, III-IV, IV, IV-V, V, V-VI и VI стадии зрелости. В цистах присутствует весь комплекс половых клеток. Волна сперматогенеза совершается асинхронно, происходит два последовательных мейотических деления половых клеток, которые хорошо различаются по размерам. В результате двух делений мейоза из каждого сперматоцита I порядка, размером от 5,0 до 6,8 мкм, образуется два сперматоцита II порядка, размер которых от 3,2 до 3,6 мкм, а потом – 4 сперматиды с гаплоидным набором хромосом и размером от 2,2 до 2,6 мкм. Активные процессы сперматогенеза и спермиогенеза характеризуются как IV стадия зрелости. Семенники на этой стадии развития имеют крупные парные железы белого цвета, они заполняют почти всю полость тела. Далее сперматиды вступают в период формирования зрелых сперматозоидов. Процесс волны сперматогенеза представлен на рисунках 6, 7. <img width="700" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/395/4.JPG" height="461"> <img width="700" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/d1d/5.JPG" height="381"> Сформированные сперматозоиды из цист выходят в семенные канальцы, которые направляются к общему выводному протоку, расположенному в верхней части семенника. Клетки фолликулярного эпителия смещаются в область выводных протоков и образуют их выстилку. Движущиеся сперматозоиды V стадии зрелости представлены на рис. 8. <img width="700" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/ecb/6.JPG" height="350"> После нереста (VI стадия, выбой, сумма тепла 17000 градусо-дней) наблюдается незначительное количество цист с разным количеством сперматозоидов, которые подвергаются резорбции под воздействием клеток фолликулярного эпителия, а в выводном протоке - неиспользованные сперматозоиды также подвергаются резорбции, сливаясь в сплошные непросвечивающие массы (рис. 9, 10). <img width="700" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/7cc/7.JPG" height="503"> ЗАКЛЮЧЕНИЕ Знания особенностей процесса развития воспроизводительной системы у самцов осетровых рыб, рассмотренных на примере стерляди волжской популяции в индустриальных условиях, позволяют совершенствовать технологические приемы управления процессами сперматогенеза в условиях индустриальных хозяйств, обеспечивая получение половых продуктов высокого рыбоводного качества в нужные для предприятия сроки. Ориентируясь по набранной производителями (самцами) стерляди общей сумме тепла можно синхронизировать рыбоводные процессы (циклы) по получению половых продуктов от самок стерляди и обеспечить неоднократное (в течение календарного года) получение от одних и тех же самцов половых продуктов. В возрасте 2 года при сумме тепла 11300 градусо-дней у самцов наблюдается I-II стадии зрелости гонад. При сумме тепла 16800 градусо-дней у трехгодовиков начинается цитологическая дифференцировка пола. Преддверием этого служат волны сперматогенеза и вступление половых клеток в мейоз, которые характеризуются интенсивным протеканием III, III-IV, IV, IV-V, V, V-VI и VI стадий зрелости семенников. Зрелые сперматозоиды из цист выходят в канальцы семенника, а затем в общий выводной проток с последующим выходом эякулята через генитальное отверстие. Это состояние половых продуктов характеризуется как V стадия зрелости. А после вытекания спермы из семенных канальцев наступает посленерестовое состояние – VI стадия зрелости, при которой неиспользованные сперматозоиды перезревают и подвергаются процессу резорбции, сливаясь в сплошную однородную массу. В гонадах у отнерестившихся самцов остается небольшое количество цист, которые заполнены зрелыми сперматозоидами. Известно, что для осетровых рыб характерен единовременный тип икрометания, поэтому волна сперматогенеза закономерно носит сезонный характер, одновременно с формированием половых продуктов у самок обеспечивая нерест в естественном ареале обитания. В условиях индустриальных хозяйств, особенно УЗВ, где как правило температура воды в рыбоводных бассейнах может поддерживаться на постоянном уровне в зоне оптимальных нерестовых температур, этот фактор дает возможность путем отслеживания и регулирования температуры воды в рыбоводных емкостях и при определенном наборе суммы тепла (градусо-дней) выводить самцов осетровых рыб в нерестовое состояние в необходимый период времени. Таким образом, надежные технологии по формированию и воспроизводству маточных стад стерляди в условиях тепловодных хозяйств могут быть созданы только при условии всестороннего изучения влияния абиотических и биотических факторов среды на весь процесс гаметогенеза, начиная от ювенального периода до полового созревания и получения половых продуктов. Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов. Conflict of interests. The authors declare no conflict of interest. Библиографический список 1. Алтуфьев, Ю.В. Методическое пособие к изучению развития половых желез у рыб (на примере семейства Acipenseridae – осетровых) / Ю.В. Алтуфьев, А.А. Романов, А.П. Долгопол. - Астрахань: Астраханский технический институт рыбной промышленности и хозяйства, 1986. – 57 с. 2. Анисимова, И.М. Строение и некоторые физиологические особенности рыб. Половая система / И.М Абросимова, В.В. Лавровский. - Учебник «Ихтиология». - М.: Изд-во Высшая школа, 1983. – 255 с. 3. Багров, А.М. Новые объекты акклиматизации в пресноводной аквакультуре: гаметогенез, половые циклы, рыбоводное освоение / А.М. Багров, В.А. Илясова, Е.А. Мельченков, В.В. Калмыкова // Рыбное хозяйство. – 2020. - №3. – С. 82-87. 4. Буцкая, Н.А. Некоторые особенности функции семенников у рыб с различными типами нереста / Н.А. Буцкая // Экологическая пластичность половых циклов и размножения рыб. - Л: ЛГУ, 1975. – С. 108-122. 5. Буцкая, Н.А. Об особенностях функции семенников у рыб различными типами нереста / Н.А. Буцкая // Докл. АН СССР. – 1955. - Т. 100, №4. – С. 809-812. 6. Корчунов, А.А. Влияние искусственной экосистемы на репродуктивные качества осетровых рыб в аквакультуре / А.А. Корчунов, М.Н. Сорокина, В.А. Григорьев, А.В. Ковалева // Известия Самарского научного центра Российской академии наук. – 2017. – Т. 19, № 5 (2). – С. 327-333. 7. Мельченков, Е.А. Сперматогенез стерляди (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) в условиях индустриального бассейнового хозяйства / Е.А. Мельченков, В.А. Илясова, А.П. Воробьев, Т.А. Канидьева, Е.Н. Бекина, А.А. Арчибасов // Сборник научных трудов ВНИИПРХ: Издательство Перо, 2020. - Вып. 91. – С. 4-11. 8. Микодина, Е.В. Гистология для ихтиологов. Опыт и советы / Е.В. Микодина, М.А. Седова, Д.А. Чмилевский, А.Е. Микулин, С.В. Пьянова, Щ.Г. Полуэктова. - М.: Изд-во ВНИРО, 2009. - 112 с. 9. Персов, Г.М. Дифференцировка пола у рыб / Г.М. Персов. – Л.: ЛГУ, 1975. – 147 с. 10. Персов, Г.М. Семенник севрюги в период нерестовой миграции, нереста и поката / Г.М. Персов // Тр. лаб. основ рыбоводства. - 1947. - Т.1. - С. 177-185. 11. Персов, Г.М. Сроки дифференцировки пола и темп полового созревания у осетровых / Г.М. Персов // Труды ЦНИОРХ. Осетровые СССР и их воспроизводство. – М.: Пищевая промышленность, 1971. - Т. 3. – С. 222-234. 12. Пономарева, Е.Н. Особенности развития репродуктивной системы донской стерляди в зарегулированных условиях водной среды / Е.Н. Пономарева, Г.Ф. Металлов, А.А. Корчунов, А.В. Ковалева // Известия Самарского научного центра Российской академии наук. – 2012. – Т. 14, №5. - С. 190-193. 13. Ромейс, Б. Микроскопическая техника. - М.: Иностранная литература, 1953. - 648 с. 14. Сакун, О.Ф. Определение стадий зрелости и изучение половых циклов рыб / О.Ф. Сакун, Н.А. Буцкая. - М.: Пищевая промышленность, 1963. - 36 с. 15. Селюков, А.Г. Ранний гаметогенез сиговых рыб Сибири / А.Г. Селюков, Е.В. Ефремова, Г.Н. Бондаренко, Е.В. Микодина. - М.: Изд-во ВНИРО, 2018. - 118 с. 16. Серебрякова, Е.В. Исследование гонад производителей осетра Волгоградского водохранилища / Е.В. Серебрякова // Труды ВНИРО. Осетровые южных морей Советского Союза. - 1964. - Т. 56, сб.3. – С. 117-130. 17. Трусов В.З. Некоторые особенности созревания и шкала зрелости половых желез осетра / В.З. Трусов // Труды ВНИРО. – 1964. - Т. 56, сб. 3. - С. 69-78. 18. Трусов В.З. Созревание половых желез волго-каспийского осетра Acipenser Guldenstadti Brandt в морской период жизни / В.З. Трусов // Труды ЦНИОРХа. Осетровые СССР и их воспроизводство. - М.: Пищевая промышленность, 1972. - Т. 4. - С. 95-122. 19. Чертихина, Е.А. Особенности гаметогенеза стерляди (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) при выращивании в комбинированных условиях / Е.А. Чертихина, В.А. Илясова, Е.А. Мельченков // Вопросы рыболовства. – 2012. – Т. 13, №3(51). – С. 554-559. References 1. Altuf'ev, Yu.V., Romanov, A.A., Dolgopol A.P. Metodicheskoe posobie k izucheniyu razvitiya polovyh zhelez u ryb (na primere semejstva Acipenseridae – osetrovyh) [Methodological guide to the study sex gland development in fish (as illustrated by Acipenseridae family — sturgeon)]. - Astrahan': Astrahanskij tekhnicheskij institut rybnoj promyshlennosti i hozyajstva, [Astrakhan: Astrakhan Technical Institute of the Fishing Industry and Economy], 1986. – 57 s. (In Russian). 2. Anisimova, I.M., Lavrovskij V.V. Stroenie i nekotorye fiziologicheskie osobennosti ryb. Polovaya sistema [The structure and some physiological peculiarities of fish. Reproductive system.]. - Uchebnik «Ihtiologiya» [Ichthyology textbook]. - M.: Izd-vo Vysshaya shkola [Moscow: Vysshaya shkola Publishing House], 1983. – 255 s. (In Russian). 3. Bagrov, A.M., Ilyasova V.A., Mel'chenkov E.A., Kalmykova V.V. Novye ob"ekty akklimatizacii v presnovodnoj akvakul'ture: gametogenez, polovye cikly, rybovodnoe osvoenie [New objects of acclimatization in freshwater aquaculture: gametogenesis, sexual cycles, fish-breeding development] // Rybnoe hozyajstvo [Fishfarm]. – 2020. - №3. – S. 82-87. (In Russian). 4. Buckaya, N.A. Nekotorye osobennosti funkcii semennikov u ryb s razlichnymi tipami neresta [Some aspects of the male gonad function in fish with different types of spawning] // Ekologicheskaya plastichnost' polovyh ciklov i razmnozheniya ryb [Ecological plasticity of sexual cycles and reproduction of fish]. – L: LGU, 1975. – S. 108-122. (In Russian). 5. Buckaya, N.A. Ob osobennostyah funkcii semennikov u ryb razlichnymi tipami neresta [On the peculiarities of spermary function in fish with different types of spawning] // Dokl. AN SSSR [Report of the Academy of Science of USSR]. – 1955. - T. 100, №4. – S. 809-812. (In Russian). 6. Korchunov, A.A., Sorokina M.N., Grigor'ev V.A., Kovaleva A.V. Vliyanie iskusstvennoj ekosistemy na reproduktivnye kachestva osetrovyh ryb v akvakul'ture [The influence of an artificial ecosystem on the reproductive qualities of sturgeon fish in aquaculture] // Izvestiya Samarskogo nauchnogo centra Rossijskoj akademii nauk [Izvestiya of Samara Scientific Center of the Russian Academy of Sciences]. – 2017. – T. 19, № 5 (2). – S. 327-333. (In Russian). 7. Mel'chenkov, E.A., Ilyasova V.A., Vorob'ev A.P., Kanid'eva T.A., Bekina E.N., Archibasov A.A. Spermatogenez sterlyadi (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) v usloviyah industrial'nogo bassejnovogo hozyajstva [The influence of an artificial ecosystem on the reproductive qualities of sturgeon fish in aquaculture] // Sbornik nauchnyh trudov VNIIPRH: Izdatel'stvo Pero [Collection of scientific papers of FSBSI Russian Federation Research Institute Of Fishery and Oceanography (VNIRO). - M.: Pero Publishing house], 2020. - Vyp. 91. – S. 4-11. (In Russian). 8. Mikodina, E.V., Sedova M.A., Chmilevskij D.A., Mikulin A.E., P'yanova S.V, Poluektova SHCH.G. Gistologiya dlya ihtiologov. Opyt i sovety [Histology for ichthyologists. Experience and recommendations]. - M.: Izd-vo VNIRO, 2009 [M.: Publishing house VNIRO]. - 112 s. (In Russian). 9. Persov, G.M. Differencirovka pola u ryb [Sex differentiation in fish]. – L.: LGU, 1975. – 147 s. (In Russian). 10. Persov, G.M. Semennik sevryugi v period nerestovoj migracii, neresta i pokata [Spermary of starred sturgeon during spawing migration, spawning and downstream migration] // Tr. lab. osnov rybovodstva [Tr. lab. of the basics of fishfarming]. - 1947. - T.1. - S. 177-185. (In Russian). 11. Persov, G.M. Sroki differencirovki pola i temp polovogo sozrevaniya u osetrovyh [Sex differentiation period and maturation rate in sturgeon] // Trudy CNIORH. Osetrovye SSSR i ih vosproizvodstvo [Scientific papers of the National Research Institute of Lake and River Fisheries Sturgeon of the USSR and their reproduction]. – M.: Pishchevaya prom., 1971 [M.: Food industry, 1971]. - T. 3. – S. 222-234. (In Russian). 12. Ponomareva, E.N., Metallov G.F., Korchunov A.A., Kovaleva A.V. Osobennosti razvitiya reproduktivnoj sistemy donskoj sterlyadi v zaregulirovannyh usloviyah vodnoj sredy [Features of the reproductive system development of the Don sterlet in overregulated conditions of the aquatic environment] // Izvestiya Samarskogo nauchnogo centra Rossijskoj akademii nauk [Izvestiya of Samara Scientific Center of the Russian Academy of Sciences]. – 2012. – T. 14, №5. - S. 190-193. (In Russian). 13. Romejs, B. Mikroskopicheskaya tekhnika [Microscopic engineering]. - M.: Inostrannaya literatura, 1953 [M.: Foreign Literature]. - 648 s. (In Russian). 14. Sakun, O.F., Buckaya N.A. Opredelenie stadij zrelosti i izuchenie polovyh ciklov ryb [Determination of maturity stages and study of reproductive cycles of fish]. - M.: Pishchevaya promyshlennost', 1963. [M.: Food industry, 1963]. - 36 s. (In Russian). 15. Selyukov, A.G., Efremova E.V., Bondarenko G.N., Mikodina E.V. Rannij gametogenez sigovyh ryb Sibiri [Early gametogenesis of whitefish in Siberia]. - M.: Izd-vo VNIRO, 2018 [M.: Publishing house VNIRO, 2018]. - 118 s. (In Russian). 16. Serebr yakova, E.V. Issledovanie gonad proizvoditelej osetra Volgogradskogo vodohranilishcha [Study of the gonads of sturgeon spawners in the Volgograd reservoir] // Trudy VNIRO. Osetrovye yuzhnyh morej Sovetskogo Soyuza [Scientifical papers of the National Research Institute of Lake and River Fisheries. Sturgeon of the southern seas of the Soviet Union]. - 1964. - T. 56, sb.3. – S. 117-130. (In Russian). 17. Trusov V.Z. Nekotorye osobennosti sozrevaniya i shkala zrelosti polovyh zhelez osetra [Some maturation features and the scale of gonads maturity of the sturgeon] // Trudy VNIRO. – 1964. - T. 56, sb. 3. - S. 69-78. (In Russian). 18. Trusov V.Z. Sozrevanie polovyh zhelez volgo-kaspijskogo osetra Acipenser Guldenstadti Brandt v morskoj period zhizni [Study of the gonads of sturgeon Acipenser Guldenstadti Brandt spawners in the Volgograd reservoir] // Trudy CNIORHa. Osetrovye SSSR i ih vosproizvodstvo. [Works of the National Research Institute of Lake and River Fisheries. Sturgeon of the USSR and their reproduction]. - M.: Pishchevaya promyshlennost', 1972 [M.: Food industry, 1972]. - T. 4. - S. 95-122. (In Russian). 19. Chertihina, E.A., Ilyasova V.A., Mel'chenkov E.A. Osobennosti gametogeneza sterlyadi (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) pri vyrashchivanii v kombinirovannyh usloviyah [Special characteristics of sterlet gametogenesis (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) when grown in combined conditions] // Voprosy rybolovstva [Fishery issues]. – 2012. – T. 13, №3(51). – S. 554-559. (In Russian). Сведения об авторах Вера Александровна Илясова — д-р биол. наук, старший научный сотрудник, главный специалист лаборатории осетроводства и акклиматизации, филиал по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» (ВНИИПРХ). Россия, 141821, Московская область, Дмитровский городской округ, поселок Рыбное, д. 40а.E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a>. ORCID: 0000-0003-2840-312Х. Евгений Алексеевич Мельченков — д-р биол. наук, старший научный сотрудник, заведующий лабораторией осетроводства и акклиматизации, филиал по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» (ВНИИПРХ). Россия, 141821, Московская область, Дмитровский городской округ, поселок Рыбное, д. 40а. E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a>. ORCID: 0000-0002-3336-165Х. Вера Вениаминовна Калмыкова – канд. биол. наук, главный специалист лаборатории осетроводства и акклиматизации, филиал по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» (ВНИИПРХ). Россия, 141821, Московская область, Дмитровский городской округ, поселок Рыбное, д. 40а. E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a>. ORCID: 0000-0002-6949-9335. Елена Анатольевна Данилова – доцент кафедры «Аквакультура и экология» Дмитровского рыбохозяйственного технологического института (филиала) ФГБОУ ВО «АГТУ». Россия, 141821, Московская область, Дмитровский городской округ, поселок Рыбное, д. 36. E-mail: <a href="mailto:Aljonad@bk.ru">Aljonad@bk.ru</a>. ORCID: 0000-0002-2841-5959. Артур Алексеевич Арчибасов — ведущий специалист лаборатории осетроводства и акклиматизации, филиал по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» (ВНИИПРХ). Россия, 141821, Московская область, Дмитровский городской округ, поселок Рыбное, д. 40а. E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a>. ORCID: 0000-0002-1576-4578. Александр Павлович Воробьёв — ведущий специалист лаборатории осетроводства и акклиматизации, филиал по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» (ВНИИПРХ). Россия, 141821, Московская область, Дмитровский городской округ, поселок Рыбное, д. 40а. E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a>. ORCID: 0000-0002-0025-4292. Information about the authors Vera Aleksandrovna Ilyasova — doctor of biological sciences, senior researcher, main specialist of the Laboratory of Sturgeon Breeding and Acclimatization, Branch for Freshwater Fisheries of the Federal State Budgetary Institution “VNIRO” (VNIIPRH). Russia, 141821, Moscow region, Dmitrov city district, Rybnoye settlement, house 40A. E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a>.ORCID: 0000-0003-2840-312X. Evgeny Alekseevich Melchenkov — doctor of biological sciences, senior researcher, head of the Laboratory of Sturgeon Breeding and Acclimatization, Branch for Freshwater Fisheries of the Federal State Budgetary Institution “VNIRO” (VNIIPRH). Russia, 141821, Moscow region, Dmitrov city district, Rybnoye settlement, house 40A. E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a>. ORCID: 0000-0002-3336-165X. Vera Veniaminovna Kalmykova, candidate of biological sciences, main specialist of the Laboratory of Sturgeon Breeding and Acclimatization, Branch for Freshwater Fisheries of the Federal State Budgetary Institution “VNIRO” (VNIIPRH). Russia, 141821, Moscow region, Dmitrov city district, Rybnoye settlement, house 40A. E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a>. ORCID: 0000-0002-6949-9335. Elena Anatol'evna Danilova, associate Professor of Aquaculture and Ecology Department of the Dmitrov Institute of Fishery Technology (branch) of the FSBEI of Higher Education Astrakhan State Technical University. Russia, 141821, Moscow region, Dmitrov city district, Rybnoye settlement, house 36. E-mail: <a href="mailto:Aljonad@bk.ru">Aljonad@bk.ru</a>. ORCID: 0000-0002-2841-5959. Arthur Alekseevich Archibasov — senior specialist of the Laboratory of Sturgeon Breeding and Acclimatization, Branch for Freshwater Fisheries of the Federal State Budgetary Institution “VNIRO” (VNIIPRH). Russia, 141821, Moscow region, Dmitrov city district, Rybnoye settlement, house 40A. E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a>. ORCID: 0000-0002-1576-4578. Aleksandr Pavlovich Vorob'yov — senior specialist of the Laboratory of Sturgeon Breeding and Acclimatization, Branch for Freshwater Fisheries of the Federal State Budgetary Institution “VNIRO” (VNIIPRH). Russia, 141821, Moscow region, Dmitrov city district, Rybnoye settlement, house 40A. E-mail: <a href="mailto:innovazii-vniiprh@mail.ru">innovazii-vniiprh@mail.ru</a>. ORCID: 0000-0002-0025-4292. <hr> Подготовили: лаборатория осетроводства и акклиматизации Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

18 ноября 2021

О необходимости и перспективах создания сети криобанков гидробионтов в России.

Необходимость создания системы криобанков гидробионтов в России диктуется целым рядом соображений. Наша страна приняла на себя обязательства по сохранению биоразнообразия животных и растений, включая водные организмы, подписав, в 1992 году Конвенцию ООН по сохранению биоразнообразия и ряд других документов, посвященных этой тематике. В России, как и в других странах многие виды и популяции рыб и других гидробионтов находятся в угрожаемом состоянии или на грани исчезновения. В Красную книгу России уже внесено 59 видов и популяций рыб, что почти в 10 раз больше, чем в 1983 году. Многие виды числятся в Красных книгах субъектов Российской Федерации или внесены в региональные списки редких и исчезающих видов и популяций. Многие виды и популяции рыб, ранее имевшие промысловое значение, находятся в деградированном состоянии как, например, некоторые виды и популяции осетров, лососей, сиговых и карповых рыб: печорская семга, онежский лосось и другие популяции атлантического лосося, некоторые сиги на Северо-западе России, белорыбица на Волге, азовская популяция белуги, байкальский осетр, сахалинский осетр, шип (уральская популяция), черноморская и каспийская популяции кумжи, сахалинский таймень, азово-черноморская шемая и многие другие виды России и сопредельных стран. Практически исчез атлантический осетр, обитавший на обширных акваториях ряда стран Европы, персидский и колхидский осетры, лжелопатоносы. Комитет по экологии Государственной Думы Российской Федерации в своем Решении (№42-5 от 21 июня 2001г) отметил, что при резком сокращении естественного воспроизводства биоресурсов и, более того, при возникновении опасности глобальной экологической катастрофы (а такие прогнозы появляются всё чаще и чаще), спасение генетического фонда животных и растений является стратегически важной задачей как для мирового сообщества, так и для Российской Федерации. Среди неотложных мероприятий, направленных на решение этой задачи названо формирование системы криобанков и формирование в них репрезентативных коллекций спермы и другого генетического материала. Оно тесно увязывается с формированием живых генетических коллекций в существующих аквахозяйствах, однако криотехнологии позволяют решать задачу сохранения генетических ресурсов в сжатые сроки и обеспечивать, в отличие от живых коллекций, более высокую степень репрезентативности сохраняемого генетического материала. Особенно велика роль криобанков в случае экологических и социаль¬ных катастроф. Именно поэтому работы по сбору и криоконсервации ге¬номов гидробионтов должны разворачиваться прежде всего в тех регио¬нах России, где такая угроза существует. Также низкотемпературные генетические банки в хозяйствах аквакультуры будут способствовать совершенствованию уровня селекционно-племен¬ной работы, сохранению редких пород и популяций от исчезновения или генетического обеднения. В России, а ранее в Советском Союзе, предпринимались попытки организации криобанков (криохранилищ) рыб и других гидробионтов, например региональные криобанки гидробиотнов были созданы в Московской области, Санкт-Петербурге, Астрахани, Карелии, на Дальнем Востоке, и Украине. Эти работы проводились в рамках научно-технической программы «Криобанк рыб 1999-2006 г.г., Национальной программы «Генетический криобанк гидробионтов» и других программ, в свое время разработанных Межведомственной ихтиологической комиссией (М.И.К.) и осуществляющей ее финансирование, а также другими научно-исследовательскими институтами и организациями. Однако из-за резкого уменьшения финансирования эти работы были в основном свернуты. На данный момент, сохранился и успешно действует криобанк Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ»), это самый крупный в Российской Федерации низкотемпературный генетический банк спермы рыб. Коллекция криобанка представлена 32 видами и 38 породами. В криобанке Института биофизики клетки РАН также хранится коллекция криоконсервированной спермы рыб (частично дублирующую коллекцию криобанка ВНИИПРХ). Криобанк спермы рыб также сформирован в Южном научном центре Российской академии наук, совместно с Астраханским государственным техническим университетом. Огромные территории нашей страны, включающие и морские акватории, большое биоразнообразие водных организмов, необходимость сохранения многих видов от уничтожения, развитие морской и пресноводной аквакультуры требуют создание системы криобанков (криохранилищ) и криослужбы. Исследовательские работы по разработке методов криоконсервации для спермы пресноводных, морских видов рыб и промысловых беспозвоночных необходимо сосредоточить в уже существующих криобанках, а также восстановить криохранилище в Центральной лаборатории по воспроизводству рыбных запасов ФГБУ «Главрыбвод». Необходимо предусмотреть создание для этой цели соответствующих научных групп (лабораторий) и криохранилищ в Волжско-Каспийском филиале ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («КаспНИРХ»), Якутском филиале ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ЯкутскНИРО»), Хабаровском филиале ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ХабаровскНИРО»), Полярном филиале ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ПИНРО» им. Н.М. Книповича), Атлантическом филиале ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («АтлантНИРО»), Азово-Черноморском филиале ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («АзНИИРХ»), Тихоокеанском филиале ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ТИНРО»), Тюменском филиале ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («Госрыбцентр») Сохранение биоразнообразия — это острейшая проблема уже сегод¬няшнего дня. Поэтому требуются незамедлительные меры по созданию необходимой сети криобанков, сбора и закладки в них генетических кол¬лекций гидробионтов. Низкотемпературные генетические банки должны стать частью мероприятий по поддержанию продовольственного и сырьевого потенциала страны на достаточном и безопасном уровне. Криобанк Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ») расположенный в Центральном Федеральном округе, обладающий уникальной коллекцией криоконсервированной спермы рыб, собственными критехнологиями, специалистами, имеет все основания стать головным отраслевым криобанком коллективного пользования. <img width="500" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/a26/DSC_04891.jpg" height="333"> <img width="500" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/632/DSC_0044%20(1)%20.jpg" height="333"> <hr> Подготовил: Ананьев Валентин Илларионович ведущий научный сотрудник лаборатории криобиологии, Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

28 октября 2021

Совершествование методов борьбы с заболеваниями объектов аквакультуры

Одной из важных черт (сторон) ихтиопатологии является ее практическая направленность. Развитие аквакультуры идет параллельно с совершенствованием нормативно-правовой базы по охране здоровья рыб, включая требования по обеспечению санитарной безопасности выращиваемой продукции. Известно, что болезни снижают эффективность работы рыбхозяйственных предприятий, вызывая не только прямую гибель разводимых объектов, негативно влияют на прирост их массы, упитанность, товарное качество продукции. Вылавливая рыба из естественных водоемов, может являться носителям эпидемиологически значимых возбудителей, личинок зоогельминтов. Интенсификация рыбоводства, многолетняя эксплуатация водного объекта, постоянные перевозки рыбы вызывают увеличение степени риска возникновения заболеваний. В этой связи у рыбоводов возникает необходимость привлечения государственных ветеринарных инспекторов-ихтиопатологов или специалистов-ихтиопатологов для оказания помощи в постановке диагноза и разработке лечебно-профилактических мероприятий по борьбе с возникающими болезнями. Профилактика болезней рыб находиться под контролем специалистов рыбоводных предприятий, и связана с организационно-техническими мероприятиями и инициативой на местах. Они должны поддерживать тесный контакт с районными государственными ветеринарными инспекторами, выдающими разрешение на ввоз и вывоз рыбопосадочного материала и товарной рыбы при ее реализации, согласовывать с ними ежегодные планы проведения профилактических мероприятий, вызывать их в случаях гибели рыбы. Свою деятельность они реализуют в соответствии с ЗАКОНОМ РФ «О ВЕТЕРИНАРИИ» от 14 мая 1993 г. N 4979-1 (в ред. от 02.07.2021 г.) и пакетом нормативных документов, объединенных в «Сборник инструкций по борьбы с болезнями рыб» (Сборник инструкций…, Ч.1, 1998; Сборник инструкций…, Ч.2, 1999). При этом следует отметить, что подготовленные ранее инструктивные материалы специалистами рыбохозяйственных и ветеринарных лабораторий, занимающихся изучением болезней рыб и разработкой методов борьбы с заболеваниями морально устарели и требуют существенной переработки с учетом современных нормативно-правовых требований. Для обеспечения биологической и пищевой безопасности выращиваемой рыбоводной продукции и ее оперативной поставки потребителю в РФ была разработана и с 01.07.2018 г. внедрена автоматизированная информационная система «Меркурий Ветсельхознадзор». Она работает по принципу электронной сертификации рыбоводных предприятий и обеспечивает прослеживаемость поднадзорных государственному ветеринарному надзору грузов, начиная с этапа их выращивания, оборота и перемещении по стране. Данная система позволяет сконцентрировать материалы по эпизоотическому состоянию и создать базу данных по регионализации заразных заболеваний рыб. Другой не менее важной стороной ихтиопатологических исследований является разработка и внедрение препаратов для борьбы с болезнями рыб. Разработанные в прошлом веке и включенные в инструкции по борьбе с болезнями рыб лечебные препараты потеряли свою актуальность. Это связано с тем, что требования ЕС и Евроазиатского экономического союза (ЕАЭС) в отношении безопасности использования лекарственных препаратов для ветеринарного применения и безопасности пищевого сырья значительно жестче, чем в России. В связи с разработкой национального законодательства в области обращения ветеринарных лекарственных средств, кормовых добавок, дезинфицирующих средств и т.д. (Государственный реестр…), многие из ранее рекомендованных препаратов в России, не могут быть использованы для лечения рыб. Усиление деятельности контролирующих органов позволяет своевременно выявлять экологические, ветеринарные и санитарно-эпидемиологические нарушения. Это означает, что в аквакультуре основное внимание должно уделяться рыбоводно-мелиоративным профилактическим мероприятиям, разработке и использованию экологически чистых препаратов (вакцин, биологически активных веществ, иммуностимуляторов и др.), позволяющим выращивать здоровую, экологически чистую, безопасную рыбную продукцию. В этой связи особенно значимы исследования связанные с использование вакцинных препаратов. <img width="306" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/d1a/18.10.2021.jpg" height="310"> <hr> Подготовили: лаборатория ихтиопатологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ») по материалам Научного аналитического обзора «Анализ состояния и перспективные направления развития аквакультуры». - М.: ФГБНУ «Росинформагротех», 2019. – 88 с.Подготовили: лаборатория ихтиопатологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ») по материалам Научного аналитического обзора «Анализ состояния и перспективные направления развития аквакультуры». - М.: ФГБНУ «Росинформагротех», 2019. – 88 с.

Читать

18 октября 2021

Важность использования жиров в кормлении рыб

Жиры, или липиды, как питательные вещества являются высококонцентрированными источниками энергии, в то же время они содержат в своем составе многие жизненно важные вещества, такие как незаменимые жирные кислоты, жирорастворимые витамины и т.д. Физиологическое значение жиров пищи для рыб не ограничивается их ролью как поставщиков энергии. По своим функциям в организме они служат структурными и рецепторными компонентами клеточных оболочек, а также являются передатчиками биологических сигналов. В живом организме процессы синтеза и распада жиров происходят непрерывно. Основную часть жиров составляют жирные кислоты. Известно, что жирнокислотный состав кормов является вторым после аминокислотного фактором, определяющим рост рыб. Как и аминокислоты, часть жирных кислот не может синтезироваться в организме. Этот ряд полиненасыщенных жирных кислот называют незаменимыми (эссенциальными) жирными кислотами. Незаменимые жирные кислоты принимают значительное участие в метаболизме рыб, поэтому они обязательно должны присутствовать в пище. К важным для организма рыб жирным кислотам относятся: полиненасыщеные ряда ω-3 (альфа-линоленовая, эйкозапентаеновая, докозагексаеновая), ω-6 (линолевая, арахидоновая), и мононенасыщеннная ω-9 (олеиновая). Дефицит незаменимых жирных кислот негативно отражается на липидном обмене рыб, проявляясь в повышении отложения жира в печени и на внутренних органах. Нарушается воспроизводительная функция, снижается иммунитет. В результате повышается восприимчивость рыб к инфекциям. Типичные признаки дефицита жирных кислот - снижение аппетита, замедление роста, заболевания кожи и плавников, повреждение хлоридных клеток жабр, осуществляющих осморегуляцию. Следует отметить, что недостаток жиров, кроме снижения общей калорийности корма, может оказать нежелательное влияние на белковую питательность кормов. Так существуют данные, согласно которым при отсутствии незаменимых жирных кислот в рационе наблюдается усиление экскреции (выделения) азота из организма, т.е. уменьшении количества белка в теле рыб. Таким образом липиды играют белок сберегающую роль. Содержащиеся в кормах жиры оказывают влияние на их химические свойства и структуру, включая прочность и водостойкость, на вкус и аромат, а также привлекательность для рыб. Характер липидной части корма определяется в основном качественным составом и количественным содержанием жиров в источниках сырья, подобранных в рецепт. Если после сопоставления их величин с потребностью рыб данного вида и возраста выясняется недостаточность общих липидов или отдельных незаменимых жирных кислот, то она устраняется путем дополнительного введения соответствующих количеств различных жиров (растительных, рыбьих, других гидробионтов) или их смесей. Недостаточность в кормовых смесях линолевой кислоты можно восполнить включением таких растительных масел, как подсолнечное, кукурузное, соевое, составе которых на ее долю приходится соответственно около 65, 60 и 50%. Источником линоленовой кислоты может служить льняное масло (> 75%). В качестве энергетической добавки обычно используют растительные масла, богатые олеиновой кислотой. К ним относятся оливковое (с содержанием ее около 76%), арахисовое (около 60%), рапсовое безэруковых сортов (40-48%). При количественном подборе следует учитывать, что переваримость незаменимых ненасыщенных кислот колеблется в пределах 85-90% вне зависимости от их уровня в корме. В филиале ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» «ВНИИПРХ» ведутся испытания комбикормов для радужной форели с различными липидными композициями, состоящими из рыбьего жира, рапсового и соевого масел. Рыбий жир характеризуется высоким содержанием важных омега-3-полиненасыщенных жирных кислот - эйкозапентаеновой и докозагексаеновой. В его состав также входят витамины А и D, йод, магний и кальций. Рапсовое масло - отличный источник омега-3 (линоленовая), омега-6 (линолевая) и омега-9 (олеиновая) жирных кислот. Является богатым источником витамина Е, который одновременно является антиоксидантом. Из минеральных веществ следует упомянуть про ценнейший магний, цинк, медь, кальций, фосфор, калий. Также рапс не обделён витаминами В-группы, ретинолом, витамином К. Соевое масло характеризуется высоким содержанием полиненасыщенных жирных кислот, особенно линоленовой (омега-3) и линолевой (омега-6). Одним из самых ценных компонентов масла из сои является лецитин, который нормализует работу клеточных мембран, обеспечивает защиту на клеточном уровне от различных негативных воздействий. Кроме этого, в нем в достаточном количестве присутствуют витамины группы В (холин), Е, К, минералы – цинк и железо. <img width="600" src="https://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/f22/08.10.2021.jpg" height="397"> <hr> Подготовлено: лабораторией физиологии и кормления рыб по материалам монографии М.А. Щербины, Е.А. Гамыгина «Кормление рыб в пресноводной аквакультуре» и информационных сайтов сети Интернет

Читать

28 сентября 2021

Современное состояние водных биоресурсов трансграничного участка реки Днепр в пределах Смоленкой области Российской Федерации и республики Беларусь

ВВЕДЕНИЕ Река Днепр крупнейший трансграничный, между Республикой Беларусь и Российской Федерацией (РФ), водоток, дренирующий Смоленскую область России и три области Республики Беларусь: Витебскую, Могилевскую и Гомельскую. Длина Днепра в естественном состоянии составляет 2201 км, в пределах Беларуси - около 700 км, в пределах России 485 км. Площадь водосборного бассейна 504 000 км². Средний расход воды в устье 1670 м³/с. Уклон реки 0,09 м/км [2, 14]. В 1960 х гг. исследования по составу ихтиофауны, биологическим характеристикам рыб и рыбохозяйственному значению отдельных видов в промышленном рыболовстве р. Днепр в пределах Республики Беларусь приведены в монографии П.И. Жукова [5] и диссертационной работе А.А. Костюченко [9]. Со стороны России рекогносцировочные ихтиологические исследования верхнего Днепра начали проводиться с 2008 г. Частично эти работы были связаны с изучением эффективности рыбозащитного устройства ГУП «Ярцевский литейно-прокатный завод». В этот же период в верхнем течении Днепра проводился сбор гидробиологического и ихтиологического материала на ярцевском и смоленском участках реки для разработки рыбоводно-биологического обоснования на реакклиматизацию стерляди [11]. С белорусской стороны аналогичные исследования проведены для проектирования РЗУ водозабора Оршанской ТЭЦ в 2006 г, а также в процессе проведения комплексных исследований по проекту «Исследовать влияние антропогенного загрязнения на гидробиоценозы трансграничной реки Днепр, разработать научные основы по их устойчивому функционированию и использованию» 2001-2005 гг. [13]. Речные воды системы на территории России и Беларуси испытывают негативное воздействие хозяйственной деятельности человека гидротехническое строительство, сельскохозяйственное освоение и урбанизация территории, рост рекреационной (рыболовной) нагрузки, влекущие изменение условий обитания ряда аборигенных видов рыб, изменение видового статуса на угрожаемый или исчезающий, сокращение биологического разнообразия и снижение рекреационной составляющей территории. Данное сообщение дополняет работу, которая была осуществлена в рамках программы совместных российско-белорусских комплексных исследований водных биоресурсов на трансграничном участке водотока Днепра в 2014-2018 гг. [8] результатами ихтиологических исследований, проведённых в водах реки Днепр в 2019 г. Цель работы - исследование современного состояния ихтиофауны трансграничного участка реки Днепр в пределах России и Республики Беларусь в рамках ихтиологического мониторинга в 2019 г. Материал и методы исследований Сбор материалов и научно-исследовательские учетные сетные съемки, для выполнения работ по мониторингу состояния водных биоресурсов, проводились на реке Днепр в рамках исследований в 2019 г по заранее запланированной сетке станций (рис. 1, 2). При осуществлении рыболовства в научно исследовательских целях на российском участке произведено 20 сетепостановок плавных рамовых сетей с общей протяжённостью 3600 м, с шагом ячеи от 30 до 60 мм. На белорусском участке выполнено 9 сетепостановок при осуществлении контрольных обловов силами исполнителей, длина одноразово выставляемых порядков сетей составляла от 140 до 600 м с шагом ячеи от 30 до 60 мм, а также проведено 3 анализа промысловых сетных уловов арендаторов рыболовных угодий. Биологический анализ, выловленных рыб, выполнен по стандартным методикам [12, 16]. <img width="500" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/56c/%D0%A0%D0%B8%D1%81.%201.jpg" height="270"> Риc. 1. Схема расположения станций (1-7) научно-исследовательских наблюдений на р. Днепр в 2019 г <img width="500" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/afa/%D0%A0%D0%B8%D1%81.%202.jpg" height="347"> Рис.2. Карта постановки сетных орудий лова на реке Днепр в пределах Республики Беларусь:стрелкой показаны точки сбора материала В настоящее время не выработано единого подхода к делению р. Днепр на участки. Исходя из строения речной долины, характера русла и скорости течения, целесообразно согласиться с А.А. Костюченко [9] о выделении в пределах Беларуси верхнего участка от границы с РФ и до г. Шклов, где река выходит за пределы Оршанско‑Смоленской возвышенности и подступает к пределам Приднепровской низменности. Таким образом, в пределах Беларуси Днепр от границы со Смоленской областью до г. Шклов представлен своим верхним течением, а ниже г. Могилев и до границы с Украиной ‑ средним течением. Надо отметить, что участок от г. Шклов до г. Могилев несет черты как верхнего, так и среднего течения, поэтому его целесообразно рассматривать как переходный. Участок реки ниже г. Могилев и до устья р. Сож следует полностью относить к среднему течению, тогда как ниже устья р. Сож, в пределах Брагинского района Гомельской области р. Днепр подпирается водами Киевского водохранилища и по своим характеристикам в настоящее время может быть отнесена к нижнему течению. Белорусские коллеги проводили ихтиологические исследования на четырех станциях, отвечающих делению реки на участки. Оценку относительной численности отдельных видов рыб в структуре ихтиоценов р. Днепр проводили по показателям встречаемости в уловах плавных рамовых сетей. Осредненный для разных видов рыб коэффициент уловистости плавной сети составлял 0,1 [15, 17]. Встречаемость вида в данном случае подразумевает долю вида в структуре улова по численности, пересчитанную в % по показателям среднего стандартизированного улова на усилие (количество экз. рыб на сеть площадью 50 м2 пойманной за 24 ч). Результаты исследований и их обсуждение По данным российских исследователей [3, 4] состав ихтиофауны верхнего Днепра на территории России представлен 35 видами рыб, относимых к 10 семействам. На территории Белоруссии ихтиофауна включает 38 видов, относящихся к 32 родам и 10 семействам [5, 6]. Из общего числа видов рыб ‑ три (усач Barbus barbus, рыбец Vimba vimba и стерлядь Acipenser ruthenus) являются объектами охранных списков рыб Беларуси и России [1, 7] и в силу ряда биологических особенностей могут рассматриваться как раритетные, 15 ‑ угрожаемыми, в том числе стерлядь признана глобально угрожаемым видом. По типу питания рыбное население верхнего и среднего Днепра представлено зоопланктофагами (синец Ballerus ballerus, уклейка Alburnus alburnus, быстрянка Alburnoides bipunctatus, гольян Phoxinus phoxinus, колюшка Pungitius platygaster, молодь остальных видов рыб на ранних этапах развития), бентофагами (стерлядь A. ruthenus, лещ Abramis brama, густера Blicca bjoerkna, пескарь Gobio gobio, ерши Gymnocephalus Bloch, голец Barbatula barbatula, усач B. barbus, сазан Cyprinus carpio, линь Tinca tinca, карась обыкновенный Carassius carassius, белоглазка Ballerus sapa, елец Leuciscus leuciscus , рыбец V. vimba, щиповка Cobitis taenia, бычки Gobiidae Cuvier, подкаменщик Cottus gobio, горчак Rhodeus sericeus), эврифагами (плотва Rutilus rutilus, голавль Squalius cephalus, язь Leuciscus idus, карась серебряный Carassius gibelio, чехонь Pelecus cultratus) и ихтиофагами (щука Esox lucius, судак Sander lucioperca, налим Lota lota, сом Silurus glanis, жерех Aspius aspius, отчасти речной окунь Perca fluviatilis). Типичным перифитонофагом в составе ихтиофауны Днепра является подуст Chondrostoma nasus [13]. На российском участке реки Днепр видовой состав составил 16 видов рыб, а на белорусском участке – 22 вида. На российском участке отсутствовали в уловах такие виды, как сом, красноперка Scardinius erythrophthalmus, белоглазка, карп Cyprinus Linnaeus, щука и чехонь. Основу вылова на российском участке составляют плотва- 29% и голавль – 20%, на белорусском участке лещ – от 3 до 46%, плотва – от 19 до 63% и густера – от 1,8 до 33%, в несколько меньшем количестве отмечен речной окунь (в среднем до 10%). Долевое значение плотвы и густеры имеет тенденцию к снижению от верхних участков к нижним, леща – наоборот к повышению, значение окуня примерно равное по всем участкам. Плотва. Плотва многочисленна на различных биотопах реки и обитает на всем протяжении Днепра и его придаточной системы. В контрольных уловах отмечены особи длиной от 12 до 28,5 см и массой от 34 до 625 г, в возрасте от 2+ до 11+. На российском участке в выборках плотвы было зафиксировано пять возрастных групп, из которых в сетных уловах преобладали рыбы в возрасте 5 лет (58% от всего улова), средний возраст составил 4,6 года. На белорусском участке отмечены десять возрастных групп, из которых в уловах наиболее встречаемы рыбы в возрасте 7 лет (30% всего улова) со средним возрастом 6,9 лет. На верхнем и переходном белорусских участках средний возраст плотвы фактически не отличался от российского участка и составил 4,7 года. На среднем и нижнем участках отмечается увеличение среднего возраста популяции (6,6 и 7,9 лет соответственно), что связано с использованием материалов из анализов промысловых уловов арендаторов, селективно применяющих порядки сетей с большим шагом ячеи. Так как половозрелые особи плотвы отмечаются в литературе в среднем от 14 см в возрасте 3 лет, факт наличия в р. Днепр крупных особей плотвы создает предпосылку хорошего воспроизводственного потенциала популяции. Средние размерно-возрастные показатели плотвы по российскому и белорусскому участкам исследований представлены в таблице 1. Численность популяции остается на хорошем уровне и не вызывает опасений. Промысловая ихтиомасса плотвы на обследованном в 2019 г. российском участке по результатам учетной съемки составила 26,8 кг/га, а по белорусскому участку промысловый запас колеблется в пределах от 4,7 кг/га (Могилевская область) до 18,0 кг/га (в пределах Витебской области). <img width="698" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/be0/%D0%A2%D0%B0%D0%B1%D0%BB%D0%B8%D1%86%D0%B0%201.JPG" height="529"> Таблица 1. Средние размерно-возрастные показатели плотвы по участкам исследований Примечание. Здесь и в табл.2, 3, 4, 5, 6: Над чертой – средняя длина, под чертой средняя масса, N – количество экземпляров. Лещ. Распространен лещ повсеместно на разных биотопах реки. Крупный лещ придерживается глубоких русловых участков реки и ям. В весенний период наблюдается массовая преднерестовая миграция половозрелого леща вверх по реке с участков Днепра, расположенных на территории Республики Беларусь. Половое созревание леща начинается в возрасте 4+ у самок и 3+ у самцов. Массовое половое созревание леща наблюдается в возрасте 5+ у самок и 4+ у самцов. В контрольных уловах отмечены особи длиной от 10,5 до 46 см и массой от 27 до 2322 г, в возрасте от 1+ до 11+. На российском участке в выборках леща было определено пять возрастных групп, из которых в уловах преобладали рыбы в возрасте 4 года (33% всего улова), средний возраст составил 5,3 года. На белорусском участке установлены десять возрастных групп, из которых в уловах наиболее встречаемы рыбы в возрасте 6 лет (30% всего улова) со средним возрастом 6,7 лет. В Беларуси на верхнем и переходном участках в уловах лещ немногочислен и встречается в контрольных уловах единичными экземплярами. На среднем и нижнем участках отмечается увеличение как долевого значения, так и среднего возраста популяции по сравнению с российским участком (9,1 и 6,8 лет соответственно). Последнее связано как с ростом емкости экологических ниш, так и с селективной направленностью рыболовства. Средние размерно-возрастные показатели леща представлены в таблице 2. Численность популяции леща остается на стабильном уровне. Промысловая ихтиомасса леща на российском участке по результатам учетной съемки составила 15,0 кг/га, а по белорусскому участку промысловый запас колеблется в направлении от верхних к нижним участкам в пределах 1,2-35,3 кг/га. <img width="711" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/7e6/%D0%A2%D0%B0%D0%B1%D0%BB%D0%B8%D1%86%D0%B0%202.JPG" height="576"> Таблица 2. Средние размерно-возрастные показатели леща по участкам исследований Густера. Обитает преимущественно в русловой части реки, предпочитает те же биотопы что и лещ. В уловах отмечены особи длиной от 14,5 до 31 см и массой от 68 до 668 г, в возрасте от 3+ до 12+. На российском участке в выборках густеры были выявлены пять возрастных групп, из которых в сетных уловах преобладали рыбы в возрасте 4-5+ (70% всего улова), средний возраст составил 4,9 года. На белорусском участке отмечены восемь возрастных групп, из которых в уловах наиболее встречаемы рыбы в возрасте 8 лет (40% всего улова) со средним возрастом 7,9 лет. На российском участке были зафиксированы увеличенные темпы роста в возрасте 5 – 8 лет. Это скорее всего, связано с выловом данных экземпляров густеры в осенний период, когда наблюдаются максимальные значения массы тела. На переходном, среднем и нижнем участках отмечается увеличение среднего возраста популяции по сравнению с российским участком (8,0 и 8,3 лет соответственно). Причины последнего аналогичны выше отмеченным. Половозрелость густеры на Днепре наступает в возрасте 2+ у самцов и 3+ у самок и то, что средний возраст популяции составляет 6 лет, создает предпосылку хорошего воспроизводственного потенциала популяции. Средние размерно-возрастные показатели густеры представлены в таблице 3. Состояние популяции густеры в целом оценивается как стабильное. Промысловая ихтиомасса густеры на российском участке по результатам учетной съемки составила 10,2 кг/га, а на белорусской части участка протекания р. Днепр в пределах рассматриваемых участков промысловая ихтиомасса густеры составляет от 1,4 до 12,0 кг/га. <img width="711" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/b28/%D0%A2%D0%B0%D0%B1%D0%BB%D0%B8%D1%86%D0%B0%203.JPG" height="532"> Таблица 3. Средние размерно-возрастные показатели густеры по участкам исследований Голавль. Многочисленный вид на русловых участках реки Днепр, но уже ниже г. Могилев малочисленный. В летний период голавль предпочитает участки русла с сильным течением, в солнечные дни прячется в тени прибрежных кустарников, за крупными камнями, корягами, под кронами нависающих над рекой деревьев. Половое созревание голавля начинается в возрасте 5+ у самок и + 4+ у самцов. Массовое половое созревание голавля наблюдается в возрасте 6+ - у самок и 5+ - у самцов. В уловах отмечены особи длиной от 11,9 до 33 см и массой от 32 до 762 г, в возрасте от 2+ до 7+. На российском участке в выборках голавля было зафиксировано пять возрастных групп, из которых в сетных уловах преобладали рыбы в возрасте 3 – 4 года (85% всего улова) и средний возраст составил 4 года. На белорусском участке исследований голавль отмечался единичными экземплярами. На верхнем участке длина особей голавля колебалась в пределах от 12,9 до 15,7 см, масса от 38 до 62 г, средний возраст 2,6 года. Средние размерно-возрастные показатели голавля представлены в таблице 4. Состояние популяции голавля в целом оценивается, как стабильное. Промысловая ихтиомасса голавля российском участке по результатам учетной съемки составила 2,4 кг/га, а на белорусской части участка промысловая ихтиомасса голавля составляет менее 1 кг/га на всех участках исследований. <img width="593" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/827/%D0%A2%D0%B0%D0%B1%D0%BB%D0%B8%D1%86%D0%B0%204.JPG" height="358"> Таблица 4. Средние размерно-возрастные показатели голавля по участкам исследований Речной окунь. Многочисленный на всех биотопах реки вид. Придерживается участков с пониженной скоростью течения, часто отмечается, в придаточных водоемах, имеющих связь с основным руслом. В уловах отмечены особи длиной от 13,9 до 31 см и массой от 48,3 до 502 г, в возрасте от 2+ до 10+. На российском участке в выборках окуня было определено пять возрастных групп, из которых в сетных уловах преобладали рыбы в возрасте 3-5 лет (90% всего улова) и средний возраст составил 4,3 года. На белорусском участке отмечены девять возрастных групп, из которых в уловах наиболее встречаемы рыбы в возрасте 6-7 лет (33% всего улова) со средним возрастом 4,2 года. На российском участке были зафиксированы увеличенные темпы роста в возрасте 5‑7 лет. На верхнем участке средний возраст речного окуня составил 2,4 года. Меньшие показатели среднего возраста окуня на сопредельном участке р. Днепр в Беларуси по сравнению со Смоленской областью могут объясняться селективным характером примененных орудий лова и относительно небольшим объемом выборки, что подтверждается материалами исследований на ниже расположенных участках. Половозрелость речного окуня на р. Днепр наступает в возрасте 2+ у самцов и 3-4+ у самок. Так факт наличия крупных особей окуня создает предпосылку хорошего воспроизводственного потенциала популяции. Средние размерно-возрастные показатели речного окуня представлены в таблице 5. Состояние популяции в целом оценивается как стабильное. Промысловая ихтиомасса речного окуня на российском участке по результатам учетной съемки составила 3,5 кг/га, а на среднем участке белорусской части промысловая ихтиомасса составляет 3,6 кг/га и незначительно изменяется по всем остальным. <img width="710" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/d5c/%D0%A2%D0%B0%D0%B1%D0%BB%D0%B8%D1%86%D0%B0%205.JPG" height="446"> Таблица 5. Средние размерно-возрастные показатели речного окуня по участкам исследований Заключение Ихтиофауна р. Днепр, в пределах исследуемого трансграничного участка отличается значительным видовым разнообразием. По результатам исследований размерной структуры выловленных видов рыб, наблюдается динамика с хорошим воспроизводственным потенциалом. Темп линейно-весового роста большинства рыб на российском участке реки Днепр не уступает аналогичным показателям особей, обитающих ниже по течению реки в Республике Беларусь. Состояние популяций большинства ресурсных видов рыб характеризуется как стабильное, а их относительная численность определяется емкостью экологических ниш. Колебания концентрации и ихтиомассы отдельных видов могут объясняться сезонными и межгодовыми факторами в изменении среды обитания (прежде всего гидрологическими). Данные научно-исследовательских работ о состоянии водных биологических ресурсов реки Днепр послужат основой для разработки материалов прогноза рекомендованной добычи (вылова) водных биоресурсов. Для рационального использования реки Днепр необходимо продолжить углубленное всестороннее изучение состояния и среды обитания водных биологических ресурсов для оценки тенденций и динамики происходящих изменений. Библиографический список 1. Атлас пресноводных рыб России: в 2 т. / под ред. Ю.С. Решетникова, 2-е изд. – М.: Наука, 2003. – Т. 1. – 379 с. 2. Блакiтная кнiга Беларусi: Энцiклапедыя (Водныя аб,екты Беларусi) / Белaруская Энцiклaпедыя: рэдкал. Н.А. Дзiсько (i iнш.). – Мiнск: БелЭн, 1994. – С. 144–145. 3. Быков, А.Д. Современное состояние ихтиофауны верхнего течения реки Днепр в границах Смоленской области / А.Д. Быков (и др.). // Вопросы рыболовства. – 2017. – Т. 18, № 1. – С. 65–76. 4. Быков, А.Д. Современный состав ихтиофауны верхнего течения реки Днепр в пределах Смоленской области / А.Д. Быков, Ю.А. Митенков, К.В. Пшеничный // Экологические проблемы пресноводных рыбохозяйственных водоемов России: всерос. науч. конф. с междунар. участием. – Санкт-Петербург, 2011. – С. 55–58. 5. Жуков, П.И. Рыбы Белоруссии / П.И. Жуков. – Минск: Наука и техника, 1965. – 415 с. 6. Зубей, А.В. Изменение видового состава рыб в бассейне р. Днепр на территории Беларуси / А.В. Зубей, В.К. Ризевский // Современные экологические проблемы устойчивого развития Полесского региона и сопредельных территорий: наука, образование, культура: материалы III междунар. науч.-практ. конф.: в 3 ч. – Мозыр. гос. пед. ун-т (и др.). – Мозырь, 2007. – Ч. 1. – С. 123–126. 7. Костные рыбы // Красная Книга Республики Беларусь. Животные: редкие и находящиеся под угрозой исчезновения виды диких животных / Министерство природ. ресурсов и охраны окружающей среды, Нац. акад. наук Беларуси. – Минск: Беларуская энцыклапедыя, 2004. – С. 181–195. 8. Костоусов, В.Г. Состояние и структура рыбного населения трансграничного участка реки Днепр / В.Г. Костоусов, Г.П. Прищепов, С.Ю. Бражник (и др.) // Вопросы рыбного хозяйства Беларуси. – 2019. – Вып. 35. – С. 173–189. 9. Костюченко, А.А. Рыбы Днепра: (в пределах Белорусской ССР) 03.00.00 Биология: автореф. дис. … кандидата биологических наук // А.А. Костюченко; Белорус. гос. ун-т. – Минск, 1963. – 21 с. 10. Методика изучения биоценозов внутренних водоёмов / по ред. Ф.Д. Мордухай-Болтовского. – М.: Наука, 1975. – 658 с. 11. Отчет о НИР. Результаты российских комплексных исследований водных биоресурсов на трансграничном водотоке р. Днепр в 2015 г. М.: Фонды ФГУП ВНИРО, 2015а. 75 с. 12. Правдин, И.Ф. Руководство по изучению рыб / И.Ф. Правдин. – М.: Пищевая промышленность, 1966. – 376 с. 13. Прищепов, Г.П. Состояние популяций рыб в Днепре в условиях антропогенного воздействия / Г.П. Прищепов, Г.П. Воронова // Проблемы воспроизводства аборигенных видов рыб. – Киев: изд-во «Свiт рибалкi», 2005. – С. 137–142. 14. Ресурсы поверхностных вод СССР. Описание рек и озер. Белоруссия и Верхнее Поднепровье. – Л.: Гидрометеоиздат, 1971. – Т. 5. Ч. 1. – С. 99–112. 15. Трещев, А.И. Интенсивность рыболовства / А.И. Трещев. – М.: Лег. и пищ. пром-сть, 1983. – 236 с. 16. Чугунова, Н.И. Руководство по изучению возраста и роста рыб / Н.И. Чугунова. – М.: Изд. АН СССР, 1959. – 163 с. 17. Чурунов, В.Н. К вопросу об уловистости мальковых конусных сетей, неподвижно устанавливаемых в реках / В.Н. Чурунов // Вопросы рыболовства. – 2002. – Т. 3. №3. – С. 323–328. <hr> Авторы: А.И. Никитенко1, Д.В. Горячев1, В.Г. Костоусов2, Г.П. Прищепов2, В.К. Ризевский3, О.В. Корабельникова1, Н.Н. Клец1 1Филиал по пресноводному рыбному хозяйству Всероссийского научно-исследовательского института рыбного хозяйства и океанографии (ВНИИПРХ), Россия, Московская область, Рыбное 2 Республиканское унитарное предприятие «Институт рыбного хозяйства», Беларусь, г. Минск 3 Государственное научно-производственное объединение «Научно-практический центр Национальной Академии наук Беларуси по биоресурсам», Беларусь, г. Минск DOI:<a href="https://doi.org/10.33920/sel-09-2107-01">10.33920/sel-09-2107-01</a> <a href="https://doi.org/10.33920/sel-09-2107-01"></a> <a href="https://panor.ru/articles/sovremennoe-sostoyanie-vodnykh-bioresursov-transgranichnogo-uchastka-reki-dnepr-v-predelakh-smolenskoy-oblasti-rossiyskoy-federatsii-i-respubliki-belarus/64148.html"></a>

Читать

18 сентября 2021

Нормативные требования для питьевой воды

Нормативные значения к качеству питьевой устанавливаются в зависимости от её группы. Питьевую воду разделяют на следующие группы: Источники централизованного водоснабжения. К данной группе относятся источники водопровода населенных пунктов (городов, поселков, поселений и др.). В связи с этим к качеству питьевой воды применяются ужесточенные нормативы, требования. Контроль качества воды осуществляют Водоканалы, которые осуществляют поставку питьевой воды в трубопровод, а также управляющие компании, которые обслуживают водопроводную сеть помещений жилого объекта. СанПиН (Санитарно-эпидемиологические правила и нормативы) 2.1.4.1074-01 "Питьевая вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения. Контроль качества" — это нормативный документ, который устанавливает гигиенические требования к качеству питьевой воды, а также правила контроля качества воды, производимой и подаваемой централизованными системами питьевого водоснабжения населенных мест. Бутилированная вода. Продукт, представляющий собой воду, разлитую бутылки для розничного распространения. Согласно ГОСТ Р 52109-2003, расфасованную воду, в зависимости от качества водоподготовки, подразделяют на две категории: питьевая вода первой категории и питьевая вода высшей категории (к такой воде предъявляются более жёсткие требования к процессу водоподготовки, химическому составу, органолептическим, радиологическим и другим показателям). Качество бутилированной воды нормируется СанПиН 2.1.4.1116-2002 «Гигиенические требования к качеству воды, расфасованной в емкости». Данные санитарно-эпидемиологические правила и нормативы устанавливают гигиенические требования к качеству питьевой воды, расфасованной в ёмкости для питьевых целей и приготовления пищи, а также требования к организации контроля её качества. Источники нецентрализованного водоснабжения. К данной группе относятся подземные воды для общего и индивидуального пользования. Нормативы качества воды для данной группы более слабые, так как к источникам нецентрализованного водоснабжения относятся частные колодцы и скважины - воду из которых употребляют в пищу небольшое количество человек, поэтому считается, что риск для всего населения невелик. Нормативы качества воды представлены в СанПиН 2.1.4.1175-02 "Гигиенические требования к качеству воды нецентрализованного водоснабжения. Санитарная охрана источников», нормативный документ устанавливает. <img width="500" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/676/18.09.2021%201.jpg" height="223"> <img width="450" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/e00/18.09.2021%202.jpg" height="300"> <hr> Источник: Здрок А.В., начальник Отдела экологической токсикологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

8 сентября 2021

Как определить с молоками селедка или с икрой

Кому-то нравится икра, кому-то молока, кто-то не ест ни то, ни другое. Многие предпочитают мясо именно самцов, считая, что оно вкуснее и жирнее, поскольку самка тратит ресурсы на вынашивание икринок. Как же выбрать селедку, точно зная какого она пола, сообщает сетевое издание для рыболовов «Рыбком. Рыболовный компас». «Простой, но очень эффективный способ определения пола селедки при покупке. Гарантия не 100%, но 95 — точно! Бывают, конечно, самцы с крупными молоками и самки с небольшим количеством икры, но в целом способ работает», — сообщает источник. Самец: Спинка покатая и горбатая, нос узкий, вытянутый, брюшко поджато, на ощупь мягкое. Самка: Спинка ровная, почти прямая, нос короче и круглее, брюшко объемное, как бы свисает, на ощупь плотное. На иллюстрации наглядно видно, что самец и самка практически зеркально отличаются друг от друга! <img width="500" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/209/a56e18629bdd36ac17bbf6c7057b1c5b.jpg" height="500"> <hr> Источник: <a href="https://rusfishjournal.ru/news/">журнал "Русская рыба"</a> Фото: <a href="https://rusfishjournal.ru/news/">журнал "Русская рыба"</a>

Читать

29 августа 2021

Гибриды серебряного карася с карпом

Карасекарповые гибриды представляют существенный интерес с рыбохозяйственной точки зрения, поскольку совмещают в себе ценные качества обоих родительских видов: повышенную устойчивость к неблагоприятным факторам среды, свойственную серебряному карасю и высокую скорость роста, характерную для карпа. Гибриды обладают высокой толерантностью к дефициту кислорода (Балашов, Рекубратский, 2011), что позволяет получать рыбную продукцию при использовании заморных водоемов. Они более устойчивы, чем карп к болезням и другим неблагоприятным факторам среды. Мясо гибридов обладает высокими диетическими качествами и поэтому эти рыбы пользуются повышенным спросом у населения. Получаемые от скрещивания серебряного карася и карпа гибриды F1 в основном стерильны. Однако встречаются отдельные плодовитые самки (Головинская и др., 1965). Проведённые кариологические исследования (Черфас, 1969; Емельянова, 1984) показали, что такие самки полиплоидны и продуцируют яйцеклетки с диплоидным набором хромосом. Поскольку гибридные самцы стерильны, воспроизводство карасекарпов осуществляют с помощью индуцированного гиногенеза. К настоящему времени получено уже седьмое последовательное поколение гиногенеза (рис. 1). Репродуктивная функция гибридных самок при этом значительно улучшилась, что даёт возможность их практического использования для получения стерильных триплоидных гибридов (Черфас и др. 1981). <img width="600" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/84c/20.07.2021%201.jpg" height="305"> Рис. 1. Самка карасекарпа (седьмое поколение гиногенеза) В настоящее время на экспериментальной базе «Якоть» имеется три формы карасекарповых гибридов: диплоидная гиногинетическая форма (самки) и две триплоидные стерильные формы, получаемые от возвратного скрещивания диплоидных гиногинетических самок с самцами карпа (Fbк) или карася (Fbск) (рис 2). <img width="600" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/094/20.07.2021%202.jpg" height="450"> Рис. 2. Схема получения триплоидных гибридов Триплоидные гибриды значительно превосходят карпа по выживаемости на первом и втором годах жизни (рис. 3), что соответственно положительно отражается на выходе товарной продукции. <img width="600" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/924/20.07.2021%203.jpg" height="450"> Рис. 3. Сравнение стерильных триплоидных гибридов с исходными формами: серебряным карасём и карпом Стерильных триплоидных гибридов можно выпускать в естественные водоемы без нанесения ущерба аборигенным видам рыб. Под воздействием мужского гормона гиногинетичиские самки могут быть превращены в нормально функционирующих самцов, также способных давать диплоидные половые клетки. При скрещивании таких самцов-инверсантов с гиногинетическими самками можно получить тетраплоидное плодовитое потомство. Среди возвратных на серебряного карася гибридов встречаются отдельные фертильные особи, продуцирующие триплоидные яйцеклетки. При скрещивании таких самок с обычными самцами карпа получено тетраплоидное потомство, представленное плодовитыми самками и самцами. Фактически, экспериментально получен новый полиплоидный вид рыбы, объединяющий в себе хромосомные комплексы двух исходных видов: карася и карпа. Результаты этих исследований имеют важное научное значение, так как вскрывают механизм одного из эволюционных путей возникновения новых полиплоидных видов рыб. Из книги Породы и кроссы карпа и карасекарповые гибриды селекции ВНИИПРХ / Катасонов В.Я, Поддубная А.В., Рекубратский А.В, Дементьев В.Н., Симонов В.М., Шарт Л.А. //. Рыбное, 2013. С. 20-23. <hr> Литература Балашов Д.А., Рекубратский А.В. Отношение гибридов карпа Cyprinus carpio и серебряного карася Carassius auratus к дефициту кислорода // Вопр. ихтиологии. – 2011. – Т. 51, № 5. – С. 665-669. Головинская К.А. Ромашов Д.Д. Черфас Н.Б. Однополые и двуполые формы серебряного карася (Carassius auratus gibelio Bloch) // Вопросы ихтиологии, 1965. Т. 5. вып 4(37). С. 614-629. Емельянова О.В. Цитологическое исследование процессов созревания и оплодотворения у гибридов серебряного карася с карпом. // Цитология. 1984. Т. 26. С. 1427-1433. Черфас Н.Б. Основные итоги цитогенетического анализа однополой и двуполой форм серебряного карася // Генетика селекция и гибридизация рыб. М.: Наука, 1969. С.85-98. Черфас Н.Б., Гомельский Б.И., Емельянова О.В., Рекубратский А.В. Триплоидия у возвратных гибридов серебряного карася с карпом // Генетика. 1981. Т. 17. С. 1136-1138.

Читать

19 августа 2021

Черная львинка: перспективы использования

Основным источником белков при кормлении свиней, птицы и рыбы является рыбная мука и продукты переработки сои (шрот, концентрат). Рыбная мука – важный компонент корма птиц, свиней и рыб, однако ее стоимость из года в год неуклонно растет, а увеличение объемов производства в связи с истощением водных ресурсов ограничено. Соевые продукты – это растительные белки, которые не являются полноценной заменой белкам животного происхождения. Кроме того, климатические особенности России не позволяют выращивать сою в нужном объеме, делая отечественное животноводство зависимым от импортных поставок. Все это вынуждает ученых и кормопроизводителей искать альтернативные источники белка. В настоящее время в рыбной комбикормовой промышленности интенсивно ведутся поиски нового качественного сырья, источника животного протеина, заменителя рыбной муки. Предпринимаются попытки использовать производные сои, всевозможные растительные белковые концентраты, животные белковые концентраты, полученные не из рыбного сырья, в том числе кормовых добавок из насекомых. Речь идет о таком виде насекомом, как муха черная львинка. Муха Черная львинка (Hermetia illucens, или Черный солдатик – Black Soldier Fly) – это крупная американская муха из семейства львинок (Stratiomyidae). Муха Черная львинка – насекомое, вызывающее большой научный и практический интерес. Личинки мухи полезны не только как корм для домашних животных, но и как корм для рыбных ферм и сельскохозяйственных представителей. Черная львинка является наиболее перспективным для промышленных масштабов производства. Это обосновано биологическими особенностями этого вида, которые и становятся его преимуществами. Разводить насекомых очень просто и к тому же быстро: необходимо 20 дней для выращивания личинки. Для полного цикла воспроизводства потребуется полтора месяца. Этот вид обладает способностью питаться почти всеми видами пищевых и сельскохозяйственных отходов. Насекомые полностью безопасны и безвредны для человека: взрослые особи малоподвижны, не имеют развитого ротового аппарата, вследствие чего не питаются, не кусаются, не разносят болезни. Личинки содержат в среднем 40% белка и 35% жира, и отличаются богатым химическим составом жирных кислот и аминокислот. Был проведен ряд исследований по использованию сырья из личинок мухи львинки в кормлении ценных видов рыб (осетр, форель, тиляпия). Было показано, что кормовое сырье обладает высокими питательными свойствами и хорошими показателями переваримости питательных веществ у указанных видов рыб. Использование сушеной личинки мухи черная львинка в роли кормовой добавки может способствовать увеличению прироста животных и рыб и снижению кормовых затрат. Личинки способны эффективно перерабатывать органические отходы, в том числе экскременты свиней и птиц, накапливая в своем организме комплекс веществ, процентное содержание которых зависит от диеты питания. Субстрат, в котором находились личинки, в результате их питания и роста преобразуется в биоудобрения. По мимо всего прочего из взрослых особей (мух) можно выделять природные полимеры — хитин и меланин. Из хитина можно производить хитозан и использовать в кормлении животных, фармацевтике, химической промышленности. Это очень ценный материал, который называют полимером будущего. Хитин и хитозан используются как антидотные добавки и средство для лечения некоторых заболеваний рыб. Хитозансодержащие препараты обладают выраженным адгезионным действием и, будучи введены в состав гранулированных кормов, способствуют существенному улучшению их физико-механических свойств. Меланины находят широкое применение в медицине, фармакологии, пищевой и других отраслях промышленности. Из личинок также изготавливают протеиновую муку, которая может быть использована как альтернатива белковым добавкам для спортсменов. Возможно использование жира личинок в косметических средствах, производстве твердого и жидкого мыла. На сегодняшний день уже наработаны технологии получения и производства протеиновой муки, липидов и удобрений из личинок мухи. В настоящее время ВНИРО ведет работу по разработке новых рецептур с использованием протеиновой муки из черной львинки. Таким образом использование личинок мухи львинки является перспективным не только в кормопроизводстве для сельскохозяйственных животных, птиц и рыб, но и в целом возможность использования этих насекомых многогранна. <img width="300" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/c07/19.08.2021%201.jpg" height="200"> <img width="300" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/91c/19.08.2021%202.jpg" height="200"> <hr> Подготовили: лаборатория физиологии и кормления рыб, по материалам электронных сельско-хозяйственных журналов и информационных сайтов сети Интернет

Читать

9 августа 2021

Скромное обаяние бессловесных

В Санкт-Петербурге, в саду Института экспериментальной медицины на Аптекарском острове установлен памятник Собаке в честь научных экспериментов и подопытных животных. По замыслу инициатора его установки, академика И.П. Павлова собака, как основной объект при проведении исследований заслужила благодарность человечества за участие в тяжелых испытаниях, пройденных ею на пути познания научной истины. «Пусть собака, помощница и друг человека, с доисторических времён приносится в жертву науке, но наше достоинство обязывает нас, чтобы это происходило непременно и всегда без ненужного мучительства» - такие слова ученого начертаны на постаменте памятника верному помощнику. Четвероногий друг человечества хоть и терпел ради науки вмешательство в свою частную жизнь, но оно протекало куда как в более комфортных условиях, нежели те испытания, которые проходят объекты рыбоводства, участвующие в разработке новых технологий, кормов, средств лечения и профилактики болезней. Еще бы! Ведь даже для самых простых морфометрических измерений рыбу надо достать из привычной среды обитания, переместить в совершенно непригодную для нее воздушную среду, где ей нечем дышать и невозможно защититься от смены температуры и довольно жестких манипуляций со стороны более сильного внешнего хозяина положения. Да еще неприятность - в безмолвном состоянии никак не оповестить о своем бедственном положении того, кто над тобой. Тут, поневоле мобилизуешь все свои силы и возможности, чтобы выжить, что рыба и делает каждый раз, как только ее извлекают из воды. Правда, надо сказать, что объекты аквакультуры довольно существенно отличаются в своих реакциях на человека от диких сородичей в силу своей предрасположенности к «одомашниванию». Более предрасположенные к мирному сосуществованию с человеком не только выживают в созданной им рукотворной среде, но еще и успешно размножаются. Примером тому служат производители сибирского осетра ленской популяции, приютившиеся на Конаковском осетровом заводе. Некоторые старородящие самки, сами рожденные за 12 лет до начала текущего века, продолжают более 25 лет кряду покорно отдавать черную икру под нажимом упорных рыбоводов и химических стимуляторов, не заглядывая в глаза самцам, отдающим сперму неизвестно кому при том же посреднике. Сколько новых поколений сибирских осетров и их промышленных гибридов, рожденных от этих самок и самцов, заполнили собой производственные мощности рыбоводных предприятий на просторах нашей родины. Медаль осетровой матери-героини могла бы украсить их грудь, да вешать не на что. Согласно популярной теории Г. Селье о стрессе и его последствиях, которая нашла свое подтверждение в практике медицины и животноводства, пребывание в состоянии стресса имеет два исхода: стимулирование развития защитной реакции организма на любые вмешательства в ординарный ход физиологических процессов, либо угнетение систем защиты от вмешательства, если возмущающее действие стрессора велико по силе и/ или продолжительности. Применить рекомендацию И.П. Павлова об упразднении ненужного мучительства при работе с рыбой ученым-ихтиологам и рыбоводам вряд ли удастся - в разных средах сосуществуем - а вот понять проблемы своих подопечных объектов, постараться их учесть и по возможности смягчить, задача трудная, но выполнимая. И, решая ее, никак не обойтись без знаний в области физиологии рыб, которые были добыты и постоянно пополняются тем же самым образом, которым совершал свои открытия великий физиолог- то есть методом научного эксперимента. Экспериментальные условия в рыбоводстве – это моделирование в небольших объемах воды и с небольшим количеством рыбы тех или иных нововведений в рыбоводный процесс, которые осуществляются, чтобы превзойти уже освоенные рыбоводами достижения (в части рыбоводной эффективности, изменения товарных характеристик объектов, повышения их устойчивости к действию повреждающих факторов). Сопоставить нововведение с предшествующим аналогом и оценить достигнутый эффект можно разными способами: по конечному рыбоводному результату, по текущим изменениям продукционных показателей, наблюдаемым в ходе контрольных рыбоводных мероприятий, по интегральным параметрам физиологического благополучия, без которого не бывает успешного завершения рискованных предприятий. О физиологическом благополучии чаще всего судят на основе физиолого-биохимического анализа крови и других тканей рыб (половых желез, мышц, печени, селезенки и т.д.) отражающего вектор текущих изменений в организме. Получение этих данных – дело хлопотное в силу выше перечисленных обстоятельств, требует соблюдения определенных правил и часто связано со вскрытием рыбы, то есть летальным исходом для объекта. Из тканей, доступных для анализа прижизненно, только кровь и гонады могут быть изъяты без причинения рыбе существенного урона. Но и здесь для получения достоверного результата нужно соблюдать основные правила минимизации вмешательства – « не навреди», то есть действуй быстро и нежно. Для ослабления обловного стресса и воздействия манипуляций в последние годы все чаще используются анестетики, в числе которых неплохо зарекомендовала себя суспензия гвоздичного масла. Эта уловка на некоторое время обездвиживает рыбу, но не избавляет от неприятностей по восстановлению функций в полном объеме после анестезии (как это наблюдается и с человеком, или теплокровными животными, прошедшими через процедуру общего наркоза). Поэтому, при всем удобстве работы с анастезированной рыбой, нельзя забывать о времени, в течение которого не работают ее жабры, и искать способы их искусственной вентиляции по аналогии с наркотизированным человеком, за которого работает аппарат ИВЛ. Некоторые исследователи используют для этих целей орошение жаберных полостей водой, обогащенной кислородом. После повреждения покровных тканей любое кровотечение в водной среде может сохраняться довольно продолжительно. Эволюция постаралась оградить рыбу от летальной кровопотери при случайных или умышленных повреждениях, расположив на поверхности ее тела внушительный слой слизи с веществами, способствующими свертыванию крови. Поиск компромисса между тем, что мы хотим, и тем, что можем себе позволить в отношении нашего объекта исследования привел к появлению следующих простых и проверенных правил работы. Поимка рыбы из мест привычного обитания должна проходить быстро с немедленным перемещением в ведро с водой, взятой из той же экспериментальной емкости. Рабочее место исследователя необходимо максимально приблизить к привычному для рыбы месту обитания. Извлечение объекта из ведра желательно проводить с использованием салфетки, смоченной в той же воде, ею оборачивают переднюю часть туловища рыбы вместе с головой, смягчая тем самым осушение на воздухе кожных покровов и жабр, а также возможный на воздухе температурный перепад. Для пункции хвостовых сосудов используют одноразовую стерильную инъекционную иглу малого диаметра (исключается инфицирование тканей, не мешает поверхностная слизь). Сразу после получения крови место прокола затирается слизью, богатой тромбокиназой – ферментом, способствующим остановке кровотечения, и рыба переносится в садок для контроля за ее состоянием. Свежеполученная кровь пастеровской пипеткой переносится в пробирку с антикоагулянтом и на часовое стекло для взятия пробы на концентрацию гемоглобина. По капле крови требуется для анализа содержания глюкозы, лактата и триглицеридов, на изготовление мазка для подсчета форменных элементов. На все - про все уходит не более 1 минуты. В течение этого времени механизмы проявления вторичной стрессовой реакции (увеличение уровня глюкозы и лактата в крови) не успевают сработать, и обнаруженные значения показателей отражают состояние рыбы в экспериментальной среде обитания, где ведущими факторами влияния являются те самые нововведения, которые мы исследуем. Вот так последовательно, шаг за шагом осуществляется мониторинг физиологического состояния рыбоводных объектов. В сопоставлении с традиционными физиологическими (поведенческой реакцией, объемом вентиляции, оценкой внешнего вида) и продукционными показателями (скорость роста, рыбопродуктивность, выживаемость, оплата корма и проч.) дается заключение о целесообразности изменения технологии, рецептов кормов, лекарственных препаратов, пробиотиков и т.д. Хочется верить, что в обозримом будущем на территории нашего института по аналогии с собакой Павлова, появится наш собирательный образ рыбы-страдалицы, кормилицы, труженицы, испытавшей на себе все тяготы существования в качестве объекта аквакультуры, и оплатившей труд ихтиолога-рыбовода, корпевшего над ее проблемами, рекордными производственными показателями. <img width="500" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/03b/09.08.2021%201.jpg" height="375"> Рисунок 1 - Экспериментальные бассейны <img width="281" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/83b/09.08.2021%202.jpg" height="375"> Рисунок 2 – Перемещение объекта из водной среды в воздушную <img width="281" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/b58/09.08.2021%203.jpg" height="375"> Рисунок 3 – Объект во влажной салфетке готов к отдаче крови <img width="281" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/863/09.08.2021%204.jpg" height="375"> Рисунок 4 – Пункция одноразовой иглой за анальным плавником <img width="281" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/818/09.08.2021%205.jpg" height="375"> Рисунок 5 – Останавливаем кровотечение легким массажем места прокола с окружающей слизью <img width="281" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/949/09.08.2021%206.jpg" height="375"> Рисунок 6 – Определяем концентрацию глюкозы в крови объекта на гемометре <img width="281" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/99b/09.08.2021%207.jpg" height="375"> Рисунок 7 – Отмер крови для определения концентрации гемоглобина <img width="499" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/64c/09.08.2021%208.jpg" height="375"> Рисунок 8 – Выпуск объектов в привычную среду <hr> Подготовили: лаборатория осетроводства и акклиматизации Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

30 июля 2021

Питательные среды для лабораторной диагностики бактериозов рыб

В лабораториях, проводящих микробиологические исследования, основными целями являются поддержание жизнеспособности, восстановление жизнеспособности, выращивание и/или подсчет широкого спектра микроорганизмов. Во всех традиционных методах микробиологического культивирования, а также во многих альтернативных методах используют питательные среды. Питательная среда - однокомпонентный или многокомпонентный субстрат, применяемый для культивирования микроорганизмов или культур клеток высших организмов. Классификация микробиологических питательных сред В микробиологии питательные среды разделяют на: 1. Натуральные (естественные) среды, которые состоят из продуктов животного или растительного происхождения и имеют неопределенный химический состав. К таким средам относятся овощные и фруктовые соки, животные ткани, кровь, молоко, яйца, желчь, сыворотка крови, а так же отвары и экстракты, полученные из различных природных субстратов. 2.Полусинтетические среды, в состав которых наряду с веществами неопределенного состава входят соединения известной химической природы. 3. Синтетические среды, содержат только химически чистые соединения в точно указанных концентрациях, т.е. состав их полностью известен. Преимущества таких сред - стандартность и воспроизводимость с высокой степенью точности. Их используют, главным образом, для экспериментального изучения метаболизма микроорганизмов, реже - для аналитических целей, диагностики, хранения культур. По назначению различают: 1. Питательные среды общего назначения (базовые питательные среды) - пригодны для выращивания многих видов микроорганизмов и могут применяться в качестве основы для приготовления специальных питательных сред. 2. Специальные элективные (избирательные) среды применяются для выделения микроорганизмов из мест их естественного обитания или получения накопительных культур. Эти среды обеспечивают преимущественное развитие одного вида или группы микроорганизмов, что достигается путем создания оптимальных условий для развития для одних микроорганизмов, т.е. положительной селекцией, или угнетением роста других, т.е. методом отрицательной селекции. 3. Специальные дифференциально-диагностические среды- применяют для изучения биохимических свойств и дифференцировки одного вида (рода) микроорганизмов от другого по характеру их ферментативной активности. Дифференцирующие свойства питательной среды создаются путем внесения субстрата, к которому определяется отношение микроорганизма, и соответствующих рН-индикаторов. 4. Специальные консервирующие (транспортные) среды - используются в клинической практике для сохранения жизнеспособности микроорганизмов в период от момента взятия биоматериала до посева, основная цель использования - сохранение жизнеспособности возбудителя и подавление размножения сопутствующей флоры в период транспортировки образцов. По консистенции различают: 1. Жидкие среды - применяют для изучения биохимических и физиологических свойств микроорганизмов, для накопления биомассы или продуктов обмена, хранения микроорганизмов, плохо развивающихся на плотных средах. 2. Полужидкие среды - используют для хранения культур, реже - для накопления биомассы. 3. Плотные среды - используют для выделения чистых культур, морфологии колоний, диагностических целей, хранения культур, количественного учета, изучения антагонистических свойств. 4. Сыпучие среды - используются для хранения посевного материала, культур-продуцентов в микробиологической и медицинской промышленности. 5. Сухие питательные среды - представляют собой гигроскопические порошки влажностью до 10%, использующиеся для приготовления готовых питательных сред. Свойства питательных сред Питательная среда должна обладать определенным набором свойств: 1. Содержать достаточное количество питательных веществ, микроэлементов, минеральных солей; 2. Иметь определенную вязкость; 3. Иметь определенные влажность и/или кислотность; 4. Быть изотонической, то есть не нарушать нормальное функционирование клеток, проницаемость клеточных мембран; в большинстве случаев, среда должна быть прозрачной. Наиболее широко используемые питательные среды 1. Среда Эндо-дифференциально-диагностическая питательная среда, предназначенная для выделения энтеробактерий. Обладает слабыми селективными свойствами, компоненты среды подавляют рост грамположительных бактерий 2. Эритрит агар - используют для выработки бруцелл. Среда является питательной основой, которая обеспечивает бактерии всеми необходимыми веществами. Кроме того, тиамин и эритрит выступают факторами роста бруцелл. В лабораторной практике можно добавлять различные антибиотики для предоставления среде селективных свойств. 3. Энтерококк агар - позволяет селективно выработать энтерококки и идентифицировать редукцию ТТХ (трифенилтетразолий хлористый). Селективный эффект достигается благодаря присутствию в составе среды азида натрия, который ингибирует рост грамотрицательных и некоторых грамположительных бактерий. Бактерии способные к редукции ТТХ накапливают внутри клеток фармазон, который придает колониям красный цвет 4. Агар Анакера-Ордала - предназначен для культивирования и поддерживания штаммов Flexibacter. 5. Агар Клиглера - предназначен для дифференциации бактерий по способности их ферментировать глюкозу, лактозу и образовывать сероводород. 6. Среда Хью-Лейфсона-предназначена для определения способа утилизации глюкозы или других углеводов у микроорганизмов по аэробному (окисление) и анаэробному пути (ферментация). 7. Висмут-сульфит агар - используют для селективного выделения и дифференциации сальмонеллы. Состав среды вызывает угнетение роста посторонней микрофлоры, а колонии выросшие имеют зеленовато-коричневый цвет. При этом стимулируется рост сальмонелл, а их способность к восстановлению висмута позволяет определить их по почернению колоний и среды под ними. 8. Агар для определения ДНКазы, ГРМ бульон, Мясопептонный агар (МПА), Среды Гисса с углеводами, Реактив Андреде, Среда Сабуро, и.т.д. Этапы приготовления питательной среды 1. Взвешивание: отбирают навески компонентов питательной среды на аналитических весах; 2. Растворение: компоненты питательной среды растворяют в предварительно нагретой до 70 °С дистиллированной воде. 3. Кипячение: растворы питательных сред кипятят в течении 2 мин. 4. Установление pH: ориентировочно производят с помощью индикаторной бумаги, для точного определения пользуются потенциометром. При стерилизации pH снижается на 0,2, поэтому сначала готовят более щелочной раствор. 5. Розлив сред: питательные среды разливают не более чем на 3/4 емкости, так как при стерилизации могут намокнуть пробки и среды утратят стерильность. 6. Стерилизация: для стерилизации питательный сред используют термический способ: стерилизация насыщенным паром под давлением (автоклавирование), дробная стерилизация (тиндализация), кипячение. Режим стерилизации зависит от состава среды и указан в её рецепте. При автоклавировании 3–5 % жидкости теряется в результате испарения, поэтому рекомендуется в приготавливаемые среды добавлять сверх объема примерно 5 % дистиллированной воды. Тогда после стерилизации среда будет иметь требуемую концентрацию. 8. Контроль: • для контроля стерильности среды ставят на 2 суток в термостат, после чего их просматривают. • химический контроль окончательно устанавливает pH, содержание общего и амминого азота, пептона, хлоридов. • для биологического контроля несколько образцов среды засевают специально подобранными культурами, и по их росту судят о питательных свойствах среды. <img width="278" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/d10/30.07.2021%20-%204.jpg" height="181"> <img width="271" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/535/30.07.2021%20-%201.jpg" height="181"> <img width="230" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/3fb/30.07.2021%20-%202.jpg" height="181"> <img width="240" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/fda/30.07.2021%20-%203.jpg" height="181"> <hr> Подготовил: лаборатория ихтиопатологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО» («ВНИИПРХ»)

Читать

Вы представитель СМИ?

Для получения комментария учёных, организации интервью или съёмок на объектах института напишите в пресс-службу — ответим в течение рабочего дня.

Запрос в пресс-центр Правила работы со СМИ