Вы здесь

Пресс-центр Информаторий · ВНИИПРХ

Анонсы и информаторий

Предстоящие мероприятия, конференции, семинары и события Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ «ВНИРО». Следите за афишей института.

Всего записей: 179

Все годы 179 2026 3 2025 4 2024 8 2023 11 2022 31 2021 32 2020 21 2019 28 2018 22 2017 17

22 марта 2021

Мониторинг качества и безопасности водных биологических ресурсов

Ухудшение экологического и санитарного состояния водоемов может привести к снижению качества и безопасности водных биологических ресурсов (гидробионтов). В последние годы при осуществлении экологического мониторинга качеству водных биоресурсов уделяют особое внимание. <img width="1000" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/e54/22.03.2021%20-%203.jpg" height="354"> Промысловых гидробионтов (это рыба и раки), поступающих в торговую сеть, проверяют в соответствии с законодательными документами. Другая часть водных биологических ресурсов, вылавливаемая рыбаками-любителями, используется населением без всякого контроля. В рыбохозяйственных водоемах Центральном федеральном округе (ЦФО) обитает более 30 видов рыб, наиболее многочисленны лещ, плотва, чехонь, густера, синец, судак, налим, щука и окунь. По экспертным оценкам, объемы промыслового вылова во внутренних водоемах очень незначительны и находятся в пределах от 2 до 2,5 тыс. т в год, при этом рыбаками-любителями вылавливается значительно больше - около 10 тыс. т рыбы. Учитывая, что ежегодно количество любителей рыбалки возрастает, люди, употребляющие в пищу выловленную ими рыбу, подвергаются риску, так как она не проходит санитарно-гигиенический контроль. Эпидемиологически значимыми гельминтозами на территории ЦФО являются описторхоз, псевдамфистомоз и дифиллоботриоз. Возбудитель описторхоза Opisthorchis felineus (семейство Opisthorchidae) относится к наиболее патогенным гельминтам, живущим в желчных протоках печени у теплокровных животных и человека и вызывающим паразитарную желтуху. В водоемах средней полосы России из-за неблагоприятных условий среды обитания к настоящему времени произошло резкое снижение численности первых промежуточных хозяев описторхид - моллюсков рода Codiella, что привело к уменьшению очагов описторхоза. Близким к O. felineus является Pseudamphistomum truncation (семейство Opisthorchidae), возбудитель псевдоамфистомоза. Первым промежуточным хозяином этого вида служат моллюски Bithynia tentaculata и В. producta. Вторые промежуточные хозяева гельминта — многие виды карповых рыб. Окончательные хозяева — различные виды преимущественно плотоядных млекопитающих, а также человек. Другим распространенным эпидемиологически значимым гельминтом является широкий лентец - Diphyllobothrium latum (отр. Pseudophyllidae). Употребление в пищу рыбы или икры, зараженной личинками (плероцеркоидами) этого паразита, может привести к возникновению дифиллоботриоза. Развитие гельминта протекает с участием планктонных рачков родов Diaptomus и Cyclops – первых промежуточных хозяев. Рыба заглатывает зараженного рачка и заражается сама. Существенное значение в эпидемиологии дифиллоботриоза имеет загрязнение водоема яйцами широкого лентеца, которые могут поступать со сточными водами. В водоемах ЦФО имеются все условия для циркуляции возбудителя дифиллоботриоза. Распространителями плероцеркоидов D. latum служат преимущественно щука, окунь и ерш. В последние годы в ЦФО возникла опасность заражения людей апофаллезом и россикотремозом. В водоемах Московской области (Химкинское и Пяловское водохранилища) зарегистрированы высокие показатели зараженности метацеркариями трематод Apophallus muehlingi у плотвы и густеры, Rossicotrema donicum у окуня и ерша. Метацеркарии этих трематод по численности являются одним из ведущих компонентов в гельминтофауне карповых рыб Волги и Северного Каспия. Строительство Волго-Донского канала, вероятно, способствовало расширению ареала первых промежуточных хозяев этих гельминтов – брюхоногих моллюсков литоглифов, которые встречаются в малопродуктивных по бентосу песчаных и песчаноилистых грунтах. В рамках проведения мониторинговых работ при паразитологическом анализе рыб из водоемов ЦФО (Белгородской, Тамбовской, Липецкой, Брянской и Тверской областей) обнаружено 2 вида гельминтов потенциально опасных для теплокровных животных и человека - Pseudamphistomum truncatum (Trematoda: Opisthorchidae) и Apophallus muehlingi (Trematoda: Heterophyidae). Заражение P. truncatum отмечено у карповых рыб (леща, плотвы, карася серебряного, густеры, жереха, чехони, язя) в Тамбовском, Белгородском, Старооскольском водохранилищах и реках Цна, Дон, Воронеж, Десна. В мышцах рыб обнаружены цисты размером 0,40-0,54 х 0,39-0,45 мм, содержащие метацеркария с темным экскреторным пузырем овальной формы, занимающим нижнюю треть тела. <img width="400" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/1c0/22.03.2021%20-%202.jpg" height="300"> Встречаемость зараженных рыб (Э.И.) варьировала по годам и составляла от 8,3 до 86%, максимальная отмечена в р. Воронеж Липецкой области у красноперки (86%) и плотвы (67%). В среднем интенсивность инвазии (И.И. ср.) составляла 10 экз./рыбу, наибольшая достигала у плотвы (40 экз./рыбу). Метацеркарии P. truncatum, попадая в живом виде с недостаточно или не должным образом приготовленной рыбой в пищеварительный тракт теплокровного животного и человека, способны развиваться до стадии мариты и долгое время паразитировать в организме, вызывая заболевание. Половозрелые трематоды локализуются у дефинитивных хозяев в желчных протоках, реже в желчном пузыре и поджелудочной железе. У больного отмечается боль в эпигастрии и правом подреберье различной интенсивности, характера и частоты возникновения, в крови – гипербилирубинемия и эозинофилия. При слабой инвазии отмечается расширение желчных внутрипечёночных протоков с утолщением их стенок. При высоком уровне заражения наблюдается закупорка желчных протоков. Диагноз ставится на основании клинических данных и копрологических исследований. Второй вид гельминтов Apophallus muehlingi выявлен у карповых и окуневых рыб. В лучах плавников и хвоста были обнаружены цисты размером 0,20-0,29 х 0,14-0,26 мм с метацеркариями A. muehlingi. Стенка цисты двухслойная, тело метацеркария свернутое в кольцо, имеется темный экскреторный пузырь, вокруг цист откладывается черный пигмент. <img width="300" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/61d/22.03.2021%20-%201.jpg" height="400"> Окунь, зараженный Apophallus muehlingi Дефинитивными хозяевами A. muehlingi являются чайковые птицы, но этот гельминт представляет и потенциальную опасность для теплокровных животных и человека. Личинки трематоды в организме человека паразитируют в тонком кишечнике, не достигая половозрелой стадии. В связи с этим диагностика апофаллеза затруднена. Официальная информация о регистрации заболевания людей апофаллёзом в РФ отсутствует. Для оценки безопасности рыбного сырья и выявления зараженностью его биогельминтами в соответствии с СанПиНом 3.2.3215-14 достаточно обнаружить одну личинку, чтобы продукция перешла в категорию условно годная. Для обеззараживания рыбы от личинок биогельминтов необходимо применение режима низкотемпературного воздействия (в соответствии с требованиями санитарных правил СанПин 3.2.3215-14 «Профилактика паразитарных болезней на территории Российской Федерации»). Основное значение в борьбе с биогельминтозами людей имеют следующие профилактические мероприятия: - исключение из пищи строганины, сырой, полусырой, малосоленой и недостаточно провяленной и термически плохо обработанной рыбы; - защита водоемов от загрязнения яйцами эпидемиологически значимых гельминтов, для чего необходима эффективная работа очистных сооружений, очистка дворовых уборных в сельской местности; сточные воды с животноводческих комплексов, звероферм не должны попадать в водоемы; - информирование населения о методах обработки рыбы и санитарно-гигиенических правилах. В связи возрастающим загрязнением вод внутренних водоемов Центральной полосы России существует вероятность накопления в мышцах рыб токсических элементов и прежде всего тяжелых металлов. Они поступают в организм гидробионтов преимущественно с водой и кормом и там аккумулируются. <hr> Источник: Романова Н.Н., заведующий лаборатории ихтиопатологии, к.б.н., доцент; выдержки из статьи Головина Н.А., Романова Н.Н., Головин П.П., Здрок А.В. «Мониторинг качества и безопасности водных биологических ресурсов из водоемов Центрального федерального округа Российской Федерации» Научно-практический журнал «Гигиена и санитария» Том 99, 2020 г. №3. С.246-252. DOI: <a href="https://dx.doi.org/10.33029/0016-9900-2020-99-3-246-252">https://dx.doi.org/10.33029/0016-9900-2020-99-3-246-252</a> Фото: Романова Н.Н. заведующий лаборатории ихтиопатологии, к.б.н., доцент

Читать

12 марта 2021

Рост обыкновенного судака sander luciperca (percidae) в Матырском водохранилище Липецкой области

Род Sander включает 5 видов [1, 2], из которых наиболее крупных размеров до 75,0 см (FL, длина по Смиту) достигает обыкновенный судак Sander lucioperca [1, 3, 4]. S. lucioperca распространен во всех крупных речных и озерных водоемах Европы и восточной Азии от 36° до 67° с.ш. и аклиматизирован в Испании, Англии, Франции, Германии, Швеции, Турции и Казахстане, в России – в Карелии, Крыму, Приморском крае, Новосибирской, Архангельской и Вологодской областях [3, 5, 6]. Два вида, берш S. volgensis и морской судак S. marinus, данного рода также обитают восточном полушарии Земли: первый – в реках Каспийского, Азовского и Черного морей; второй – в Каспийском и северозападной части Черного морей [3, 5]. Остальные два вида, светлоперый судак S. vitreus и канадский судак S. canadensis, распространены в западном полушарии реках и водоемах США и Канады [1, 8]. Рыбы рода Sander давно привлекают внимание специалистов, которыми исследованы особенности морфологии, экологии, пищевого поведения, репродуктивной биологии и т.д. [3, 8–14 ]. Однако, приводимые в литературе сведения об особенностях роста популяций судаков в конкретных водоемах остаются не полными [9, 14–17]. Изученность и знание конкретной экосистемы помагает в сохранении биологическго разнообразия и в оценке предельных допустимых объемов выпуска с целью искусственного воспроизводства [18–20]. Использование знаний о росте конкретной популяции рыб в размерных математических моделях позволяют вычислять индикаторы промысловой эксплуатации, биомассы и численности, которые совпадают с независимой оценкой [21, 22]. Темп роста S. lucioperca сильно различается в пределах ареала в зависимости от температурного режима и кормности водоема. Также на продуктивность водоема оказывают влияние условия обитания, так как обыкновенный судак – засадный хищник, он предпочитает песчаное и галечное дно с укрытиями [9, 11]. Целью нашей работы является определение особенностей роста обыкновенного судака S. lucioperca в Матырском вдхр Липецкой области, возникшие в процессе адаптации к условиям обитания. Материал и методика Материал собран в период исследовательских работ ВНИИПРХ с 2018 по 2019 гг. на Матырском вдхр. Липецкой области. Матырское вдхр. располагается в Грязинском районе Липецкой области на р. Матыре, которая является крупнейшей по площади бассейна (5180 км2) и длине притока (180 км) р. Воронеж (бассейн Дона). Крупнейшее водохранилище региона было создано в 1976 г., имеет общую протяженность береговой линии 86 км и площадь водного зеркала – 38,8 км2. Мелководный водоем долинного типа с умеренноизвилистой береговой линией и замедленным водообменом. По гидрохимическим показателям вода в водохранилище характеризуется превышениями предельно допустимых концентраций [23, 24]. Методика проведения исследований на водоемах общепринята ВНИИПРХ [25–27]. Видовую идентификацию рыб в уловах осуществляли по рекомендованным определителям [3]. Материал был собран набором ставных сетей длинной от 30 до 75 м с шагом ячеи от 25 до 70 мм. Всего за период наблюдений на Матырском вдхр. выполнено и учтено 60 шт. сетепостановок. Полевые работы ВНИИПРХ выполнялись с мая по октябрь в 2018 и 2019 гг. Объектами настоящего исследования послужили самки и самцы обыкновенного судака Sander lucioperca с длиной по Смитту (FL) от 15 до 58 см. Длина (FL, см) и масса тела (W, г) (весы CAS, Южная Корея) были измерены с точностью 0,1 см и 1 г соответственно. Общее число биоанализов всех выловленных рыб составило 165 экз. Зависимость длины и массы была расчитана степенным уравнением роста рыб (1): W = a×FL^b , (1) где W - общий вес (в г), FL fork length – длина по Смиту (в см), a - коэффициент перехвата и b - коэффициент наклона регрессии [28,29]. Данные о размерном распределении и возрасте обыкновенного судака в разные годы проанализированы с использованием компьютерного программного пакета TropFishR в среде программирования R [30]. Пакет TropFishR дополняет традиционный метод электронного анализа размерного распределения ELEFAN (Electronic Length-Frequency Analysis) и включают определение параметров уравнения (2) роста фон Берталанфи [31]. L_t=L_inf×(1-〖exp〗^(-K(t-t_0))┤┤ ┤) (2) где Lt - длина в возрасте t (в см), Linf - предельная длина (в см), К - коэффициент роста, а t0 - коэффициент теоретического возраста. Результаты и обсуждение Различные популяции S. lucioperca в пределах ареала распространения обитают в солноватых и пресных водоемах и представляют пелагических хищников. Кормность водоема, помимо температурного режима, оказывает влияние на предел и темп роста обыкновенного судака. Так для молоди важными объектами питания являются зоопланктон и нектобентические ракообразные, для взрослого судака – молодь других рыб [3, 11]. В Рыбинском вдхр. к 7 годам судак достигает 47,4 см, в Куйбышевском вдхр. – 50,7 см, в Саратовском вдхр. – 56,8 см [32, 33], а в исследуемом Матырском вдрх. – 55,6 см (табл. 1). Коэфициент упитанности судака на 7 году жизни составляет 1,32, что несколько выше чем в возрасте 1-3 гг. – 1,27. Следовательно, можно предположить о достаточном обилии пищи в Матырском вдхр., как для молоди, так и для взрослого судака. Таблица 1 Длина и масса тела судака разных возрастных классов из уловов в Матырском водохранилище 2018-2019 гг. <img width="911" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/54c/1%20%D1%80%D0%B8%D1%81%D1%83%D0%BD%D0%BE%D0%BA.JPG" height="319"> Примечание. Над чертой - пределы варьирования показателя, под чертой - среднее значение; n - число исседованных рыб В Матырском вдхр. максимальный отмеченный возраст 7 лет, в котором встречаются особи от 53 до 58 см. В Рыбинском и Саратовском вдхр. отмечаются особи, достигшие 8 лет и длины 53.8, 60.7 см, соответвенно [32, 33]. В редких случаях в водоемах наблюдаются особи судака 9-и и 10-и летнего возраста [34, 35]. Необходимо отметить, что крупные размеры одновозрастных рыб в приводимых водоемах замечены в южных районах обитания с более теплыми температурными условиями. Указанные различия в размерах также обусловлены экологическими условиями, в которых обитают эти популяции. Условия водоемов, отмеченные выше, влияют на упитанность рыб. Связь между размерами и массой судака Матырского вдхр. можно описать аллометрическим соотношением (3-5). Рассчитанные уравнения зависимости показывают положительный гипераллометрический коэффициент b, который характеризует форму тела как более упитанную (b > 3) для самцов и для самок. В разных регионах зависимость роста судака отличается, это может быть связано как с особеностями физиологического состояния, так и с различиями в условиях окружающей среды [36–38]. <img width="675" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/370/4%20%D1%80%D0%B8%D1%81%D1%83%D0%BD%D0%BE%D0%BA.JPG" height="84"> Теоретически предельная длина роста судака Матырского вдхр. рассчитана и построен график роста популяции (уравнение 6, рис. 1). Так, параметры роста по уравнению фон Берталанфи (6) составили: 100,3 см – предельная длина (Linf), 0,099 – коэффициента роста (K) и 0,756 – коэффициент теоретического возраста (t0). При этом максимальный рассчитанный возраст (tmax) при массовом половом созревании (tm) в 3 года у судака Матырского вдхр. состявляет 10 лет (7). Следовательно, при наблюдаемом массовом половом созревании судака в 3 года предельный возраст может составлять 10 лет, в котором судак будет достигать 66,3 см или 3,7 кг. Тогда показатель оптимальной вылавливаемой длины (Lopt) составит 42,1 см, при которой значение биомассы будет равно точке максимальной устойчивой биомассы (8). <img width="666" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/b2d/3%20%D1%80%D0%B8%D1%81%D1%83%D0%BD%D0%BE%D0%BA.JPG" height="86"> Расчитанные параметры роста и уравнение зависимости между длинной и массой позволили реконструировать рост судака по годам (рис. 1). Мальковый период и период созревания наблюдаются в возрасте от 1+ до 3+ лет. В эти периоды половые органы не развиты, а энергетические ресурсы расходуются главным образом на рост [39]. В возрасте 3+ судак Матырского вдхр. достигает 29,9 см длины и 325,7 г массы, прирост составляет 9,98 см и 108,6 г в год. <img width="760" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/09c/2%20%D1%80%D0%B8%D1%81%D1%83%D0%BD%D0%BE%D0%BA.JPG" height="444"> Рис. 1. Рост обыкновенного судака S. lucioperca в Матырском вдхр. Липецкой области 2018-2019 гг. Половозрелые особи судака отмечаются в возрасте 3+ с длиной от 24 до 34 см. До возраста 7+ приросты судака в длину характеризуются высокими темпами, поэтому период половой зрелости охарактеризован в возрасте от 3+ до 7+ лет. В этот период энергия расходуется преимущественно на развитие половой системы и создание запасов для поддержания жизнедеятельности [39]. За этот период судак приростает на 23,8 см и 1616,6 г, в результате ежегодные приросты длины снижаются у половозрелых особей до 5,9 см, а приросты массы возрастают до 404,1 г в год. Затем наступает период старости, в котором половая функция затухает и рост в длину замедляется. Если предположить, что судак Матырского вдхр. доживает до максимального возраста 10+, в этот период от 7+ до 10+ особь приростает на 12,6 см и 1750,2 г, а ежегодные приросты составляют не более 4,2 см и 583,4 г в год. Заключение Результаты изучения роста обыкновенного судака S. lucioperca в Матырском вдхр. Липецкой области свидетельствуют о наличии крупноразмерных особей одного возраста в сравниваемых водоемах. Так в исследуемом Матырском вдрх. судак к 7 годам достигает 55,6 см (табл. 1) или 53,7 см по уравнению Берталанфи, что выше чем в Рыбинском (47,4 см) или Куйбышевском (50,7 см) вдрх., но ниже чем Саратовском вдхр. – 56,8 см [32, 33]. При половом созревании судака в Матырском вдхр. на 3 году жизни позволило определить максимальный возраст – 10 лет. Данный факт сопостовим с редкими случаями наблюдений судака в 9-и и 10-и летнем возрасте [34, 35]. Факт отсутсвия поимок судака старше 7+ лет в Матырском вдхр. может быть связан с небольшой численностью крупноразмерных особей и коротким периодом исследований, а также любительским рыболовством. При вылове и изъятии судака с длиной по Смиту 42,1 см и выше рыбаками любителями, представляется возможность иметь максимально устойчивую биомассу в Матырском вдхр. Параметры роста рассчитаные по уравнению фон Берталанфи (6): 100,3 см – теоритически предельная длина (Linf), 0,099 – коэффициента роста (K) и 0,756 - коэффициент теоретического возраста (t0) позволили реконструировать рост судака по годам (рис. 1). Таким образом, в мальковый период и период созревания до 3+ лет судак достигает 29,9 см длины и 325,7 г массы, а приросты у неполовозрелых особей составляют 9,98 см и 108,6 г в год. Половозрелый судак в возрасте от 3+ до 7+ лет приростает на 23,8 см и 1616,6 г или на 5,9 см и 404,1 г в год. В период старости будут наблюдаться минимальный прирост длины на 12,6 см и наибольший прирост массы 1750,2 г, а ежегодные – не более 4,2 см и 583,4 г. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ 1. Спановская В. Д. Семейство Окуневые (Percidae) // Жизнь животных. Том 4. Часть 1. Рыбы. М.: Просвещение, 1971. – 655 с. 2. Froese R. and D. Pauly. Editors. FishBase. – Sander Oken. – 2020. Accessed through: World Register of Marine Species at: <a href="http://www.marinespecies.org/aphia.php?p=taxdetails&id=151307">http://www.marinespecies.org/aphia.php?p=taxdetails&amp;id=151307</a> on 2020–08–26. 3. Атлас пресноводных рыб России: В двух томах. // Под ред. Ю.С.Решетникова. М.: Наука, 2002. – Т.2. – 251 с. 4. Andreu-Soler A., Oliva-Paterna F. J., Torralva M. A review of length-weight relationships of fish from the Segura River basin (SE Iberian Peninsula) // Journal of Applied Ichthyology. – 2006. –295–296p. 5. Решетников Ю.С., Шакирова Ф.М. Зоогеографический анализ ихтиофауны Средней Азии по спискам пресноводных рыб // Вопр. ихтиологии. – 1993. –Т.33. – С. 37–45. 6. Kottelat M. European freshwater fishes. – B.: Biologia, 1997. –271 p. 7. Список рыбообразных и рыб пресных вод России / Ю.С. Решетников, Н.Г. Богуцкая, Е.Д. Васильева, Е.А. Дорофеева и др. //Вопр. ихтиологии. – 1997. – Т. 37. – вып. 6. – С. 723–771. 8. Page L. M., Burr B. M. A field guide to freshwater fishes: North America north of Mexico. – Houghton Mifflin Company. Boston, 1991. – 544 p. 9. Берг Д.С. Рыбы пресных вод СССР и сопредельных стран // М.-Л.: АН СССР. – 1949. – Т.3. – С. 930–1381. 10. Константинов К.Г. Сравнительный анализ морфологии и биологии окуня, судака и берша на разных этапах развития //Работы по этапности развития костистых рыб. М.: АН СССР. Тр. ИМЖ АН СССР. – 1957. – Вып. 16. – С. 181–236. 11. Фортунатова К. Р., Попова О. А. Питание и пищевые взаимоотношения хищных рыб в дельте Волги. – М.:Наука, 1973. – 298 с. 12. Becker G.C. Fishes of Wisconsin. – University of Wisconsin Press, Wisconsin, 1983. – 1052 p. 13. Sublette J. E., Hatch M. D., Sublette M. The fishes of New Mexico. – Press: Albuquerque, New Mexico, 1990. – 393 p. 14. Евланов И. А., Козловский С. В., Антонов П. И. Кадастр рыб Самарской области. – Тольятти: ИЭВБ РАН, 1998. – 222 с. 15. Beverton R.J.H., Holt S.J. A review of the lifespans and mortality rates of fish in nature, and their relation to growth and other physiological characteristics // CIBA Foundation colloquia on ageing: the lifespan of animals. – 1959. – V. 5. – P. 142–180. 16. Staras M., Cernisencu I., Navodaru I. Studiul cresterii principalelor specii de pesti din complexul Razim-Sinoe // Aquaropi. – 1995. – P. 417–420. 17. Age structure and mortality of walleyes in Kansas reservoirs: use of mortality caps to establish realistic management objectives / M.C. Quist, J.L. Stephen, C.S. Guy, R.D. Schultz // North Am. J. Fish. Manage. – 2004. P. 990–1002. 18. Конвенция о биологическом разнообразии от 05.06.1992. 19. Федеральный закон от 20.12.2004 № 166–ФЗ «О рыболовстве и сохранении водных биологических ресурсов». 20. Аквакультура в Белгородском водохранилище на примере обыкновенного леща Abramis brama, его оценки численности и рекомендации выпуска молоди / Д.В. Артеменков, Д.В. Горячев, Н.Н. Клец, П.К. Афанасьев // Рыбоводство и рыбное хозяйство. – 2020. – № 5 (172). – С. 36-45. 21. Gulland J. A., Rosenberg A.А. A review of length-based approaches to assessing fish stocks. – FAO Fisheries Technical Paper, Rome.: FAO. – 1992. – V.323. – 100 p. 22. A new approach for estimating stock status from length frequency data. / R. Froese, H. Winker, G. Coro, N. Demirel et al. // ICES Journal of Marine Science. – 2018. – V. 75. – I. 6. – P. 2004-2015. 23. Мишон В. М., Двуреченский В. Н., Пешкова Н. В. Матырское водохранилище и его бассейн : водные ресурсы, использование и охрана. – Инфол, 2002. – 144 с. 24. Научно-популярная энциклопедия «Вода России» – Матырское водохранилище [Electronic resource]. – URL: <a href="http://water-rf.ru/">http://water-rf.ru/</a> (дата обращения: 26.08.2020 г.). 25. Правдин И.Ф. Руководство по изучению рыб. – М.: Пищевая промышленность, 1966. –376 с. 26. Кушнаренко А.И., Лугарев Е.С. Оценка численности рыб по уловам пассивными орудиями // Вопр. ихтиологии. – 1983. – Т. 23. – №6. – С. 921-926. 27. Чугунова Н.И. Руководство по изучению возраста и роста рыб. – М.: Изд-во АН СССР, 1959. – 164 с. 28. Винберг Г.Г. Линейные размеры и масса тела животных // Журн. общ. биол. – Т.32. – № 6. – 1971. – С.714–723. 29. Froese R. Cube law, condition factor and weight-length relationships: History, meta-analysis and recommendations // Journal of Applied Ichthyology. – 2006. – Vol. 22 – № 4. – P. 241–253. 30. R Core Team. R: A language and environment for statistical computing // R Foundation for Statistical Computing. – Retrieved from: <a href="http://www.R-project.org/">http://www.R-project.org/</a> Accessed on 05 June 2018 31. Haddon M. Modelling and Quantitative Methods in Fisheries. – 2nd ed. London: Chapman & Hall/CRC Press, 2011. – 449 p. 32. Стрельников А.С., Володин В.М., Сметанин М.М. Формирование ихтиофауны и структура популяций рыб в водохранилищах // Биологические ресурсы водохранилищ. – Наука. – 1984. – С. 161–204. 33. Кузнецов В.А. Эффективность размножения, размерно-возрастная структура и рост судака Stizostedion lucioperca в Волжском плесе Куйбышевского водохранилища за время его существования // Вопр. рыболовства. – 2010. – Т. 11. – С. 89–99. 34. Семенченко Н.Н., Подорожнюк Е.В. Обыкновенный судак Sander lucioperca (L) р. Амур: результаты акклиматизации // Чтения памяти В. Я. Леванидова. – 2014. – Вып. 6. – С. 611–618. 35. Крайнюк В.Н., Асылбекова С.Ж., Исбеков К.Б. Рост судака Sander lucioperca (Percidae) в водохранилищах канала им. К.Сатпаева // Вестник АГТУ. – Сер. Рыбное хозяйство. – 2018. – № 1. – С. 59-68. 36. Li Q., Xu R., Huang J. Length-weight relations for 20 fish species from the Pearl River, China. Acta Ichthyologica et Piscatoria. – 2013. – Vol. 43 – № 1. – P. 65–69. 37. Length-weight relationships of nine fish species from the Tetulia River, southern Bangladesh. / M. Y. Hossain, S. R. M. Sayed, R. M. Mosaddequr, M. M. Ali, M. A. Hossen, A. M. Elgorban, Z. F. Ahmed , J. Ohtomi // Journal of Applied Ichthyology. – 2015. – Vol. 31. – P. 967– 969. 38. Length-weight relationships of freshwater fishes of the AltoMadre de Dios River (Manu Biosphere Reserve, Peru). / I. Tobes, R. Miranda, A. Pino-del-Carpio, J. M. Araujo- Flores, H. Ortega // Journal of Applied Ichthyology. – 2016. – Vol. 32 – № 6. – P. 1256–1258. 39. Анисимова И.М., Лавровский В.В. Ихтиология. – М.: Агропромиздат, 1991. – 288 с. <hr> Подготовили: А. И. Никитенко, Д.В. Артеменков, Д. В. Горячев, Н. Н. Клец. <a href="http://bmf.klgtu.ru/materialy-foruma/">http://bmf.klgtu.ru/materialy-foruma/</a> <a href="http://bmf.klgtu.ru/materialy-foruma/"></a>

Читать

2 марта 2021

Возраст самого старого карпа "Кои" в мире - 226 лет

Средняя продолжительность жизни карпов кои за пределами Японии составляет 15 лет, в Японии они могут доживать до 40-70 лет. Но продолжительность жизни карпов-рекордсменов может исчисляться сотнями лет. Самый старый кои на планете носил имя Ханако и дожил до 226 лет. <img width="500" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/246/2239342.png" height="327"> Карп кои Ханако была самкой карпа кои красно-оранжевого цвета. В свои 226 лет она стала самой старой рыбой за всю историю человечества. Имя Ханако с японского переводится как «Девушка-цветок». Ханако появилась на свет в 1751 году и умерла в июле 1977 года. Возраст карпа определили по кольцам на чешуе — у карпов, как у деревьев, с каждым годом прибавляется по одному кольцу, количество которых можно подсчитать через микроскоп. <img width="300" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/b1b/5574434.jpg" height="368"> Чешуйка Ханако Всю свою долгую жизнь Ханако провела в пруду неподалеку от горной деревни Хигаши-Ширакава. Чтобы подсчитать точный возраст карпа, профессору Масайоши Хиро из Университета Нагоя понадобилось два месяца. <img width="300" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/736/2797866.jpeg" height="218"> Ханако — самый старый карп кои в мире Доктор Комеи Кошихара, владелец пруда, где жила Ханако, был очень удивлен столь преклонному возрасту карпа. В 1966 году доктор Кошихара рассказал по национальному радио историю Ханако. Тогда карп был еще жив, ему было 215 лет и он весил 7.5 килограммов. По словам доктора Кошихара, Ханако досталась ему в наследство от бабушки, а бабушке — от ее предков. После Ханако в пруду доктора Кошихары остались жить еще пять карпов. Возраст каждого из них составлял более 100 лет. <hr> Источник: <a href="http://www.lllolll.ru">www.lllolll.ru</a>

Читать

20 февраля 2021

Роль зоопланктона в пищевой цепочке водных экосистем

<img width="330" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/b0c/20.02.2021%201.jpg" height="248"> <img width="330" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/296/20.02.2021%202.jpg" height="248"> <img width="331" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/753/20.02.2021%203.gif" height="248"> Зоопланктон – водные животные, которые не могут противостоять течениям и пассивно переносятся вместе с водными массами. В составе зоопланктона встречаются представители большинства типов животного царства. В большинстве водоёмов самая многочисленная группа зоопланктона - мелкие ракообразные. В состав зоопланктона входят также личинки многих животных, пелагическая икра рыб. Организмы зоопланктона питаются фитопланктоном, бактериопланктоном, детритом или более мелкими представителями зоопланктона. Зоопланктон - основа пищевых цепочек в биоценозах пресных водоёмов. Это звено пищевых цепей, связывающее фитопланктон, который образовывает первичную продукцию, с более крупными нектонными и бентосными животными. <img width="299" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/b9c/20.02.2021%204.jpg" height="160"> Рисунок 1 – Трофическая пирамида Одними из самых распространённых организмов зоопланктона пресных вод, являются дафнии, босмины, диаптомусы и циклопы. Исследования роли консументов (организмы не производящие питательные вещества самостоятельно) в формировании структуры и функционировании экосистем в пресных водоемах интенсивно ведутся в течении нескольких десятилетий. Теоретической основой этого направления служат представления о «контроле с верху» трофической пирамиды (рис.1), согласно которым численность и биомасса организмов определенного трофического уровня определяется не только количеством доступных ресурсов, но также прессом организмов последующего трофического уровня. Основная масса зоопланктона представлена видами с фильтрационным типом питания. На их долю в пресных водоемах приходится до 80% общей массы зоопланктона (Петипа, 1981; Иванова, 1985). Именно они играют ведущую роль в трансформации вещества и передаче энергии по трофической цепи от фитопланктона к рыбам. Поэтому изучение участия ракообразных в метаболизме планктона служит важнейшим средством для выяснения всей системы трофических связей в водоеме. Изучая зоопланктон безрыбных и зарыбляемых прудов, в первых доминируют крупные кладоцеры Daphnia, в то время как в зарыбляемых прудах зоопланктон представлен мелкими ракообразными. В отсутствие рыб-планктофагов крупный зоопланктон монополизирует имеющиеся ресурсы, а мелкие виды элиминируются из состава сообщества (Brooks, Dodson, 1965) Крупный зоопланктон очень чувствителен к прессу позвоночных хищников. Следуя из этого, крупные виды зоопланктона вырабатывают различные приспособления для уменьшения эффективности их пресса, например, совершают вертикальные миграции, при которых они в дневное время мигрируют в нижние слои воды, куда свет не достигает и где они становятся невидимыми для рыб, а в ночное время поднимаются в верхние трофогенные слои для питания. Это помогает им избегать планктофагов и поддерживать высокую плотность популяции даже при высокой численности рыб в водоеме. Однако вертикальные перемещения требуют затрат энергии, а при погружении за пределы эвфотной зоны зоопланктеры оказываются в слоях, бедных пищей, что снижает скорость воспроизводства их популяции (Morin, 1987; Gliwicz, 2003) Таким образом, рыбы-планктофаги могут быть важным регулятором структуры и интенсивности потоков энергии в пелагиали водоемов, включая изменения в обмене веществом и энергии между поверхностными и природными слоями водоема. Несомненно, в природе пищевые связи разграничены не так четко. Чаще всего в водоеме одновременно присутствует и тот, и другой варианты пищевой цепи. Говоря о пастбищной или детритной пищевой цепи, здесь имеется в виду преобладание одной из них над другой. Показано, что в низкопродуктивных водоемах основную роль играют пастбищные пищевые цепи, а в высокопродуктивных, большое значение приобретают детритно-бактериальные. Следует также иметь в виду, что первичная продукция, использованная в пищу фильтраторами, частично возвращается в среду в виде продуктов обмена (жидких и твердых выделений), которые в дальнейшем разлагаются бактериями до биогенных элементов. У фитофагов иногда до 90% общего количества потребленной пищи не усваивается и выделяется в виде экскрементов. Мертвое органическое вещество (детрит) и фекальные пеллеты используются в пищу как микроорганизмами, так и самим же зоопланктоном. Копрофагия в водных экосистемах играет важную роль в пищевых цепях (Секи, 1986). Минимальный размер частиц, потребляемых фильтраторами, определяется густотой фильтрующего аппарата. В зависимости от способности отфильтровать одиночные бактериальные клетки, ракообразных-фильтраторов условно разделяют на «тонких» и «грубых» фильтраторов. «Тонкие» фильтраторы являются активными потребителями одиночных бактериальных клеток и могут довольно долго существовать на этом виде корма, тогда как минимальный размер частиц, потребляемых «грубыми» фильтраторами, часто выше, чем размер бактерий. Они потребляют в лучшем случае агрегированные бактериальные клетки. К «тонким» фильтраторам относят основную массу Cladocera, к «грубым» - многие Copepoda с фильтрационным типом питания (Lampert, 1974). Отмечено, что во время массового развития крупных колониальных форм водорослей, несмотря на одновременное увеличение численности кормовых водорослей, снижались плодовитость и численность многих видов ракообразных. Крупные колонии водорослей могут быть токсичными или неполноценными в пищевом отношении для планктонных ракообразных, или засорять их фильтрационный аппарат. Это снижает потребление кормовых водорослей и уменьшает рацион животных. Снижение потребления пищи дафниями является одной из причин, из-за чего происходит снижение плодовитости рачков в водоеме при увеличении количества цианобактерий (Gliwicz, 2003). Однако на увеличение концентрации крупных цианобактерий разные виды кладоцер реагируют неодинаково. Как уже отмечалось выше, потребление колониальных форм водорослей в естественных условиях зависит от размера колоний. Последние определяются состоянием популяции тех или иных видов водорослей, динамичностью водных масс и многими другими факторами. Размеры колоний водорослей в водоемах колеблются в широких пределах, от «съедобных» до «несъдобных». В зависимости от доминирования тех или иных размерных групп они с разной интенсивностью будут потребляться фильтраторами. Таким образом, интенсивность пресса зоопланктона на фитопланктон является важным фактором, определяющим продуктивность и состав сообщества планктонных продуцентов. В ходе сезонной сукцессии наблюдается закономерная смена весеннего планктона с преобладанием мелких продуцентов (мелких быстро растущих видов водорослей) и консументов (инфузорий и коловраток) с высокой скоростью оборота биомассы, на летний планктон с преобладанием крупных организмов (крупных и колониальных видов водорослей и рачкового зоопланктона). Трофодинамическим следствием этой сукцессии служит переход от весеннего сообщества с одними-двумя трофическими уровнями к летнему сообществу с двумя-тремя уровнями, а также от высокой весенней продуктивности к более низкой летней. ЛИТЕРАТУРА · Иванова М.Б. Продукция планктонных ракообразных в пресных водах . - Л.: ЗИН АН СССР, 1985.- 222 с. · Петипа Т.С. Трофодинамика копепод в морских планктонных сообществах. Закономерности потребления и превращения вещества и энергии у особи. – Киев: Наукова Думка, 1981.- 243 с. · Секи Х. Органическое вещество в водных экосистемах. - Л.: Госкомгидромет, 1986.- 199 с. · Broocks J.L., Dodson S.I. (1965) Predation, body size and composition of plankton. Science 150: 28 -35 · Gliwicz Z.M.(2003) Zooplankton. In: O,Sullivan P.E., Reynolds C.S. (eds.) The lakes handbook. Vol. 1. Limnology and limnetic ecology. Malden, Oxford: Blackwell Publishing, p. 461-516. · Lampert W. A method for determining food selection by zooplankton. - Limnol. and. Oceanogr.- 1974.- 19, N 6.- рр.995-998. Интернет источники: · <a href="https://ru.wikipedia.org/wiki/">https://ru.wikipedia.org/wiki/</a> <hr> Подготовили: группа гидробиологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

10 февраля 2021

Содержание тяжелых металлов в воде

Тяжелые металлы – это токсичные и крайне опасные элементы, способные значительно ухудшить здоровье человека и даже привести к гибели. Биогенные элементы – это исключение среди тяжелых металлов, которые необходимы всем живым организмам. Атомный вес тяжелых металлов составляет более 50. Загрязнение тяжелыми металлами является одним из значимых показателей токсикологического состояния водоема, поскольку помимо прямого токсического воздействия на водные организмы они оказывают влияние на кислородный режим, окислительно-восстановительные процессы. Загрязнение водных объектов тяжелыми металлами связано с их широким использованием в промышленности, особенно при неудовлетворительной очистке сточных вод, в результате чего тяжелые металлы попадают в окружающую среду, в том числе и в водные экосистемы. В настоящее время в России действует ГОСТ 17.4.1.02-83, в соответствии с которым химические вещества, в том числе и металлы, по степени токсического действия на окружающую среду подразделены на три класса: 1 – As, Cd, Hg, Pb, Zn; 2 – В, Со, Ni, Mo, Cu, Sb, Cr; 3 – В, V, W, Mn, Sr; Среди металлов - токсикантов выделяют приоритетную по степени опасности для биоты группу тяжелых металлов, в которую входят кадмий, медь, мышьяк, никель, ртуть, свинец, цинк и хром. Из них ртуть, свинец и кадмий наиболее токсичны. Источники появления тяжелых металлов в воде Содержание тяжелых металлов в воде обусловлено двумя факторами: - антропогенным; - природным. Одним из главных источников поступления тяжелых металлов в водные экосистемы является диффузионный сток с агроценозов интенсивной агротехники, использующих удобрения и пестициды, в состав которых входят тяжелые металлы. Так, источником цинка и меди может быть навоз; свинца и никеля – фосфорные удобрения и известь; кадмия – фосфорные и калийные удобрения. Тяжелые металлы в воде имеют высокую биологическую активность, благодаря чему им не составляет труда внедриться в обменные процессы организма, вытеснить полезные вещества и нарушить метаболизм. Влияние тяжелых металлов на организм человека Медь – приводит к болезням костной системы, печени, анемии; Цинк – приводит к развитию раковых клеток; Ртуть – приводит к головным болям, нервно-психическим нарушениям, нарушениям речи, снижению мозговой активности и памяти; Кадмий – приводит к деформации костей, влияет на почки. Методы определения тяжелых металлов в воде Определить тяжелые металлы в воде можно электрохимическим способом (анализ вольтамперных характеристик) и спектрометрическим. Методы очистки воды от тяжелых металлов: Сорбентный – глубокое очищение за счет связывания химических веществ и примесей на молекулярном уровне; Посредством ионного обмена – очищение происходит за счет процесса обмена между ионами в растворе и на поверхности твердой фазы; Установка мембранного фильтра – действует на молекулярном уровне, относится к системе глубокой очистки; Гальваническая очистка – предотвращение попадания загрязненной производственной воды в окружающую среду; Магнитная очистка – притяжение тяжелых металлов к магнитному полю; Дистилляция – испарение жидкости и последующее ее охлаждение с целью отделения вредных и тяжелых веществ. <img width="900" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/06a/10.02.2021%20(3).jpg" height="224"> <img width="400" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/628/10.02.2021%20(1).jpg" height="266"> <img width="399" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/cbe/10.02.2021%20(2).jpg" height="266"> <hr> Источник: Здрок А.В., начальник Отдела экологической токсикологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

31 января 2021

Соблюдение биологической безопасности при организации работ с ПБА 3-4 групп опасности в лабораториях

Организация работ с ПБА III-IV групп опасности в лаборатории осуществляется в строгом соответствии с требованиями действующих санитарно-эпидемиологических правил. На время проведения экспериментальных или диагностических работ с культурами или материалами доступ в лабораторию ограничивается. Разрешение на посещение лаборатории выдает заведующий лабораторией. Посещение посторонними лицами осуществляется в сопровождении сотрудника лаборатории после прекращения работ и проведения текущей дезинфекции и регистрируется записью в журнале посещений. Не допускается курение, прием пищи, воды, хранение продуктов питания, личных вещей в рабочей зоне. Прием посетителей, хранение пищевых продуктов, прием пищи разрешаются только в специально отведенных местах в "чистой" зоне лаборатории. Персонал должен использовать средства индивидуальной защиты (халаты, шапочки, спецобувь, маски, резиновые перчатки и защитные очки). Дезинфекционная обработка рук осуществляется персоналом после работы с патогенным материалом, после снятия перчаток, перед выходом из «заразной» зоны. Обязательна смена спецодежды при смене зоны работы. Доставка в лабораторию материала для исследований должна осуществляться в маркированных, имеющих международный знак "Биологическая опасность", контейнерах, биксах, сумках-холодильниках. Доставляемые емкости с жидкими материалами должны быть закрыты пробками, крышками, исключающими выливание содержимого во время транспортирования. Дно контейнеров, содержащих емкости с ПБА, должно быть покрыто адсорбирующим материалом. Не допускается доставка материала в хозяйственных сумках, чемоданах, портфелях и других предметах личного пользования. Прием и разборка доставленного материала должны проводиться с соблюдением мер предосторожности на подносе или лотке, покрытом многослойной марлевой салфеткой, смоченной дезинфицирующим раствором. Лабораторное оборудование и средства измерений, предназначенные для исследований, должны быть исправными и поверяться в установленные сроки. Лабораторная посуда, пипетки, шприцы перед использованием проверяются на целостность и исправность. Основным оборудованием для ограничения распространения брызг или аэрозолей, содержащих инфекционный материал и обеспечения физической защиты работающего персонала, воздуха и поверхностей рабочей зоны, а также окружающей среды от исследуемых микроорганизмов, являются боксы биологической безопасности с ламинарным потоком, создающим защитную воздушную завесу. Все работы с патогенными агентами III-IV групп опасности - отбор биологического материала для бактериологических и вирусологических исследований, заражение культуры клеток, приготовление суспензий, ведение коллекционных штаммов, идентификация и изучение выделенных штаммов микроорганизмов и вирусов III-IV групп и пр., осуществляются в боксах биологической безопасности II класса (рис. 1). <img width="250" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/1a6/31.01.2021%201.jpg" height="301"> Рисунок 1 – Ламинарный бокс БМБ II класса для бактериологических исследований в «заразной» зоне Бокс устанавливают в рабочем помещении "заразной" зоны максимально удаленно от путей перемещения персонала, вне возможных возмущений воздушных потоков. Обязательная процедура подтверждения защитной эффективности бокса – валидация проводится после его установки, монтажа и подготовки к использованию на месте эксплуатации, в последующем – при эксплуатации: не реже одного раза в год; после перемещения на новое место эксплуатации; после технического обслуживания бокса (замена фильтра, замена вентилятора и пр.). Техническое освидетельствование и валидация бокса должны осуществляться только специализированной аккредитованной организацией. Все работы в боксах биологической безопасности должны проводиться на поддонах с салфетками, смоченными дезинфицирующим раствором и выполняться ближе к задней стенке бокса. Перед началом работы в боксе должна быть включена вентиляция. Перед загрузкой исследуемого материала в рабочий объем бокса необходимо проверить исправность оборудования в боксе, наличие аварийного запаса дезинфицирующих средств. После удаления контейнеров с ПБА переднюю панель бокса биологической безопасности опускают, внутри бокса включают УФ-бактерицидные лампы. В «заразной» зоне лаборатории не допускается оставлять рабочее место во время работ с патогенными агентами; оставлять нефиксированные мазки и посуду с ПБА после окончания работы на рабочих местах. Не допускается пипетировать ртом, переливать жидкий инфекционный материал через край сосуда (пробирки, колбы, флакона и др.). При пипетировании необходимо пользоваться только резиновыми грушами или дозирующими устройствами. Использованные пипетки полностью (вертикально) погружаются в дезинфицирующий раствор, избегая образования в каналах пузырьков воздуха. Бактериологическая петля должна быть замкнута в непрерывное кольцо и иметь плечо длиной не более 6 см. Допускается использование одноразовых промышленно изготовленных петель с большей длиной плеча. Не допускается сливать жидкие отходы (инфицированные жидкости, исследуемый материал и т.д.) в канализацию без предварительного обеззараживания. После окончания работы все объекты, содержащие ПБА, должны быть убраны в хранилища (холодильники, термостаты, шкафы и т.д.). В обязательном порядке проводится дезинфекция рабочих поверхностей столов с применением раствора дезинфицирующего средства (ДС). При проведении текущей (ежедневно) и генеральной уборок (еженедельно) все поверхности в помещениях, наружные поверхности приборов, оборудования в «заразной» зоне дезинфицируют способом протирания тканевой салфеткой или ветошью, смоченными раствором ДС. Концентрация раствора, его расход, продолжительность и кратность обработки выбираются согласно инструкции по применению ДС. Для дезинфекции допускается использование только разрешенных к промышленному выпуску и применению в Российской Федерации дезинфицирующих средств и оборудования – паровых и воздушных стерилизаторов, распыливающих устройств, бактерицидных облучателей, бактериальных фильтров, стерилизационных коробок и т.д. В лаборатории должен иметься, по меньшей мере, месячный запас средств дезинфекции. Остатки ПБА, использованная посуда, твердые отходы из "заразной" зоны лаборатории должны собираться в закрывающиеся емкости с соответствующей маркировкой и передаваться в автоклавную для обеззараживания или дезинфицироваться на месте. Слив необеззараженных жидкостей в канализационную сеть запрещается. Методы и средства обеззараживания определяются в каждом отдельном случае в зависимости от ПБА и характера обеззараживаемого материала. При проведении дезинфекции предпочтение следует отдавать физическому методу вследствие его надежности и безопасности для персонала. После завершения работы помещение "заразной" зоны лаборатории запирается и опечатывается. При наличии коллекции культур микроорганизмов дополнительно опечатываются их хранилища. Опечатывание и снятие печатей производят сотрудники лаборатории, имеющие разрешение руководителя лаборатории (подразделения). Хранение ПБА, их учет, передачу, транспортирование и уничтожение проводят в соответствии с требованиями действующих нормативных документов. Обязательное обеззараживание перед их удалением из лаборатории эпидемиологически опасных отходов деятельности с ПБА III-IV групп, относящихся к медицинским отходам класса Б, производят на месте образования любым способом, утвержденным действующими санитарными правилами: физическим (паровым методом - автоклавированием, токами сверхвысокой частоты (СВЧ), кипячением), химическим (с применением растворов средств дезинфекции) или сжиганием. Автоклавирование насыщенным водяным паром при избыточном давлении проводят в паровых стерилизаторах (автоклавах) (рис. 2). <img width="250" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/1b6/31.01.2021%20.jpg" height="334"> Рисунок 2 – Автоклав (горизонтальный паровой стерилизатор) для обезвреживания опасных отходов деятельности с ПБА - медицинских отходов класса Б При этом осуществляется обязательный контроль за эффективностью процесса дезинфекции/стерилизации с помощью одноразовых индикаторов: химических – при каждом цикле автоклавирования; биологических – 2 раза в год, после ремонта или при получении неудовлетворительных результатов (рис. 3). Контроль за температурой процесса проводится 2 раза в месяц с использованием максимального термометра. Выбор режима автоклавирования и дезинфекции опасных отходов класса Б осуществляется согласно рекомендациям действующих санитарных правил, в зависимости от вида патогенного агента. <img width="459" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/365/31.01.2021%202.jpg" height="345"> Рисунок 3 – Химические и биологические индикаторы процесса дезинфекции/стерилизации. Пакеты для автоклавирования. Индикаторная клеющая лента При невозможности обеззараживания отходов на месте их образования, они должны быть помещены в прочный герметично закрывающийся контейнер, который перед удалением из лаборатории обрабатывается раствором ДС. Упаковка материалов, которые будут обеззаражены вне лаборатории, должна проводиться согласно соответствующим правилам и инструкциям. Удаление из помещения лаборатории и последующую утилизацию отходов класса Б должна осуществлять специализированная уполномоченная организация. На случай аварии, при которой создается реальная или потенциальная возможность выделения патогенного биологического агента в воздух производственной зоны, среду обитания человека и заражения персонала, в лаборатории должен быть разработан план ликвидации аварии, иметься запас дезинфицирующих средств, активных в отношении возбудителей, с которыми проводят исследования, аварийная аптечка. Состав аварийной аптечки представлен в санитарно-эпидемиологических правилах СП 1.3.2322-08 «Безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней». Правилами предусмотрено проведение плановых тренировочных занятий по ликвидации аварий при работах с ПБА не реже 1 раза в год. В лаборатории на основании действующих нормативных документов (санитарных правил, гигиенических нормативов и др.), должна быть разработана и выполняться программа производственного контроля за соблюдением требований безопасности при работе с ПБА III - IV групп патогенности. В программе устанавливается перечень вредных факторов и объектов производственного контроля, представляющих потенциальную опасность для человека и среды его обитания (контрольных критических точек), в отношении которых необходима организация лабораторных исследований и испытаний, указываются точки отбора проб, периодичность отбора проб и проведения испытаний, ответственные исполнители. Приказом руководителя организации создается комиссия по контролю за соблюдением требований биологической безопасности при работах с ПБА III - IV групп. Комиссия осуществляет проверки соблюдения требований био- безопасности не реже 2-х раз в год, по результатам проверки составляется акт установленного образца. <hr> Источник: Лаборатория ихтиопатологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

21 января 2021

Соблюдение биологической безопасности при работе с ПБА 3-4 групп опасности в замкнутых системах (лабораториях)

Источниками возможного заражения при работах с патогенными агентами являются прямые контакты с любыми объектами и биологическими материалами, подозрительными на их содержание – культуры микроорганизмов, зараженные гидробионты, пробы воды и кормов, потенциально контаминированные ПБА; загрязненное оборудование; уборка помещений зоны проведения работ с ПБА. Возбудители бактериальных, вирусных и паразитарных заболеваний рыб, выявляемые при лабораторных исследованиях, относятся к микроорганизмам III–IV групп опасности – патогенным биологическим агентам (ПБА) умеренного риска, вызывающим у человека заболевания средней тяжести. Целью обеспечения безопасной работы с патогенными агентами III–IV групп опасности в лаборатории является организация эффективной системы биологической безопасности – комплекса обязательных организационных, санитарно-противоэпидемических (профилактических) мероприятий, направленных на обеспечение личной и общественной безопасности и защиту окружающей среды. Принцип биологической безопасности заключается в ограничении распространения или предотвращение утечки инфекционного материала из лабораторной среды, где с ним производят различные манипуляции или поддерживают в культуре. При этом необходимо иметь полное представление о степени риска, существующего при работе с микроорганизмами, вирусами и паразитами, знать механизмы возникновения опасных ситуаций, использовать приемы и способы безопасной работы, которые позволяют уменьшить или исключить возможность воздействия патогенных биологических агентов на человека. Деятельность лабораторий (замкнутых систем) при работе с ПБА III-IV степеней потенциальной опасности осуществляется на основании лицензии. Соответствие государственным санитарно-эпидемиологическим и гигиеническим требованиям факторов среды, условий деятельности, а также территорий, зданий, строений, сооружений, помещений, оборудования, транспортных средств, используемых при работе с патогенными биологическими агентами III-IV групп опасности должно удостоверять санитарно-эпидемиологическое заключение. На основании действующих санитарно-эпидемиологических норм и правил в лаборатории должна быть составлена рабочая инструкция по биологической безопасности проведения работ с ПБА, описывающая все рабочие процедуры и меры безопасности, предназначенные для минимизации или полного исключения возможного контакта с патогенным агентом. Инструкция является методом, ограничивающим распространение ПБА в лаборатории. Требования к допуску персонала, медицинскому наблюдению за его здоровьем, к помещениям лаборатории, лабораторному оборудованию, средствам защиты, обращению с опасными отходами при организации работ в лаборатории с ПБА III-IV групп опасности устанавливаются Федеральными законами, санитарно-эпидемиологическими правилами, техническими регламентами и другими государственными нормативно-правовыми документами. Для получения допуска к работе с ПБА персонал лаборатории должен быть не моложе 18 лет, не иметь медицинских противопоказаний к вакцинации и лечению специфическими препаратами, иметь высшее или среднее медицинское, биологическое, ветеринарное или иное образование, проходить курсы специализации с освоением методов безопасной работы с ПБА III - IV групп не реже 1 раза в 5 лет и инструктажи по биологической безопасности (первичный – при приеме на работу, периодический – не реже 1 раза в год), проходить медицинские осмотры (первичный – при приеме на работу, периодический – ежегодно). Допуск осуществляется приказом руководителя организации после проверки знаний требований биологической безопасности 1 раз в 2 года. Специалист, получивший допуск к самостоятельной работе с ПБА, несет ответственность за проведение работ с любыми инфекционными агентами или инфицированным материалом. Работы по обеззараживанию ПБА, опасных отходов с использованием автоклава, должен выполнять работник, прошедший профессиональное обучение безопасным методам работы с ежегодной проверкой знаний, имеющий удостоверение на право самостоятельной работы и допуск к работе с сосудами, работающими под давлением на основании приказа руководителя организации. Ответственность за выполнение правил биологической безопасности при осуществлении деятельности лаборатории возлагается на заведующего лабораторией. Выделяют первичное и вторичное ограничения распространения патогенных агентов при работах с инфекционными материалами. Первичное ограничение распространения представляет собой защиту персонала и непосредственно среды лаборатории с помощью средств индивидуальной защиты, использования микробиологических методов и специального оборудования, которое гарантирует безопасную работу (боксы биологической безопасности, автоклавы для обеззараживания опасных медицинских отходов, средства ликвидации аварии). Обязательно своевременное проведение дезинфекционных мероприятий. Вторичное ограничение распространения – это защита окружающей среды от воздействия патогенных агентов. В лаборатории предусмотрены: зонирование лабораторных помещений: «заразная» зона, где проводятся работы с ПБА III-IV групп и осуществляется их хранение, «чистая» зона, в которой не проводятся работы с микроорганизмами и их хранение, поточность технологических процессов, разделение путей движения «чистых» и «заразных» объектов. Вторичными барьерами распространения ПБА являются: международный знак «Биологическая опасность» на входных дверях, ограничение доступа (рис. 1); наличие второго входа для приема материала (рис. 2); санпропускник на границе «чистой» и «заразной» зон; передаточный шлюз с УФ- бактерицидными лампами для исключения возможности проникновения опасных биологических агентов из «заразной» зоны в «чистую» зону при передаче объектов (рис.3); автономная система приточно-вытяжной вентиляции (рис. 4) с элементами обеззараживания отработанного воздуха – бактерицидными лампами и фильтрами тонкой очистки на выходе (проверяются на защитную эффективность не реже 1 раз в год), системы аварийной и пожарной сигнализаций. <img width="350" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/b85/21.01.2021%20%D0%B8%D1%85%D1%82%D0%B8%D0%BE%201.jpg" height="261"> Рисунок 1 – Международный знак «Биологическая опасность» и надпись «Посторонним вход воспрещен» на входной двери лаборатории <img width="339" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/9ea/21.01.2021%20%D0%B8%D1%85%D1%82%D0%B8%D0%BE%202.png" height="261"> Рисунок 2 – Второй вход для приема материала <img width="225" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/fc5/21.01.2021%20%D0%B8%D1%85%D1%82%D0%B8%D0%BE%203.png" height="300"> Рисунок 3 – Передаточный шлюз с УФ - бактерицидными лампами для передачи объектов между зонами <img width="248" src="http://vniiprh.vniro.ru/upload/iblock/c53/21.01.2021%20%D0%B8%D1%85%D1%82%D0%B8%D0%BE%204.jpg" height="300"> Рисунок 4 - Конструктивные элементы автономной системы приточно-вытяжной вентиляции <hr> Источник: С.Б. Токарева, главный специалист лаборатории ихтиопатологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ"); М.С. Кукин, ведущий специалист лаборатории ихтиопатологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ"); А.С. Вовк, специалист лаборатории ихтиопатологии Филиала по пресноводному рыбному хозяйству ГНЦ РФ ФГБНУ "ВНИРО" ("ВНИИПРХ")

Читать

11 января 2021

О современном состоянии рыбных запасов в водоемах рыбохозяйственного значения Тверской области

Читать

Вы представитель СМИ?

Для получения комментария учёных, организации интервью или съёмок на объектах института напишите в пресс-службу — ответим в течение рабочего дня.

Запрос в пресс-центр Правила работы со СМИ